Brevet FR2560996A1 — publié le 19850913

Procédé de dosage immunologique d'antigènes d'anticorps ou d'haptènes, son utilisation pour le dosage des lipoprotéines et de l'c-foetoprotéine et trousses de dosage pour la mise en oeuvre de ce procé- dé. La présente invention a pour objet un procé- dé de dosage immunologique d'antigènes, d'haptènes ou d'anticorps, utilisable en particulier pour le dosage des protéines plasmatiques telles que les lipoprotéi- nes. Depuis quelques années le dosage des lipo- protéines s'est developpé afin de mieux apprécier l'existence d'une dyslipidémie et en particulier les risques cardiovasculaires liés aux hyperlipidémies. Dans ce but, on a tout d'abord dosé les li- pides totaux (triglycérides et cholestérol) en circu- lation dans le sang, mais des études épidémiologiques ont très vite montré que la mesure de ces paramètres était imprécise. On s'est alors intéressé à certaines fractions de ces lipides portés par des apoprotéines particulières, et on a dosé par exemple le HDL choles- térol et le LDL cholestérol qui peuvent donner une indication plus précise sur l'existence d'une dyslipi- démie. Les lipoprotéines sont des complexes molé- culaires composés de lipides et de protéines. Une de leurs particularités essentielles est d'avoir une den- sité plus faible que les autres protéines sériques, ce qui permet justement de les isoler des autres protéi- nes et même de les classer par ultracentrifugation. On peut donc classer ces lipoprotéines selon leur densité et isoler les fractions suivantes: 1 les chylomicroms de densité inférieure à 0,94 g/l qui sont les particules les plus grandes et les moins denses composées à environ 98% de lipides; 2 les lipoprotéines de très faible densité, ayant une densité de 0,94 à 1,006; 3 les lipoprotéines de faible densité, ayant une den- sité de 1,006 à 1,063; 4 les lipoprotéines de haute densité ayant une densi- té de 1,063 à 1,21; et les lipoprotéines de très haute densité. Cependant, cette classification empirique basée sur les caractéristiques physicochimiques des lipoprotéines donne des classes très hétérogènes de par leur composition en protéines. Ainsi, les lipopro- téines de faible densité contiennent pour l'essentiel des apoprotéines B mais également des apoprotéines C et des apoprotéines E, et la fraction de lipoprotéines de haute densité contient en majorité des apoprotéines A1 et des apoprotéines A2 mais également des apopro- téines C, des apoprotéines D et des apoprotéines E. On s'est alors intéressé au rôle joué par ces apoprotéines dans le transport des lipides pour essayer de progresser dans la compréhension du métabo- lisme assez complexe de ces lipides. On s'est appliqué à démontrer que le dosage de certaines de ces protéi- nes vectrices pouvait être un indicateur bien supé- rieur pour la détection des dyslipidémies. Aussi, d'autres techniques de dosage se sont développées pour déterminer plus précisément la teneur du plasma sanguin en certaines apolipoprotéines. Cependant, ces techniques de dosage posent certains problèmes en raison de la concentration éle- vée en apolipoprotéines du plasma sanguin et de la faible variation du taux de lipoprotéines entre les états dits normaux et les états dits pathologiques. A titre d'exemple, on donne ci-après les concentrations plasmatiques des lipoprotéines et apo- lipoprotéines chez des sujets normolipidémiques de sexe masculin entre 25 et 40 ans. LIPOPROTEINES APOLIPOPROTEINES mg/100 ml mg/100 ml VLDL..........80 Apo-B....... 80-100 LDL........... 276 Apo-AI...... 120-150 HDL2..........86 Apo-AII..... 20-80 HDL 3........ 254 Apo-E....... 10 HDL2/HDL3..... 0,36 Apo-CI...... 5-10 Apo-CII..... 3-5 Apo-CIII.... 15-20 Apo-D....... 10-20 Apo-F...... 15..DTD: Aussi, pour obtenir une sensibilité satis- faisante, on a développé des procédés de dosage immu- nologique par exemple par immunodiffusion radiale, par immunoturbidimétrie et par immunonephélémétrie par rayons laser, ou encore par radioimmunologie ou par enzymoimmunologie comme cela est décrit par M. Rosse- neu, R. Vercaemst, K.K. Steinberg et G.R. Cooper dans CLIN. CHEM. 29/3, 427-433 (1983). Cependant, la plupart des techniques déve- loppées jusqu'à présent se heurtent à des inconvé- nients qui rendent leur usage mal aisé pour la routine d'un laboratoire de biologie clinique. Ainsi, l'immunoélectrophorèse est une mé- thode difficilement automatisable. De plus, les prises d'échantillons recommandées (2u1) ne sont pas compati- bles avec des dosages en série. La néphélémétrie par rayons laser n'oblige plus qu'à une dilution au l/100è des échantillons à doser mais elle suppose l'acquisition d'un matériel spécifique et coûteux. De plus, des problèmes se po- sent lorsqu'on veut doser des échantillons particuliè- rement chargés en lipides. Les dosages par radioimmunologie ou par en- zymoimmunologie permettent d'obtenir une bonne sensi- bilité puisque ces dosages ont été mis au point pour détecter des quantités très faibles d'antigènes, mais ils sont mal adaptés au dosage des lipoprotéines qui se trouvent au contraire en quantité importante dans le sang (de l'ordre du gramme par litre). Aussi, le dosage des lipoprotéines par ces techniques oblige à des dilutions importantes de l'échantillon, qui sont incompatibles avec un travail en laboratoire d'analy- ses de routine. De plus, ces dilutions ne peuvent être que la source d'erreurs importantes. On a toutefois développé un procédé de dosa- ge enzymoimmunologique des apolipoprotéines B, qui permet de ne diluer les échantillons que 200 fois, mais la stabilité des réactifs utilisés dans cette mé- thode n'étant pas assurée au delà de quelques jours, ceci la rend incompatible avec un travail de routine. Cette méthode est décrite dans Journal of Immunologi- cal Methods, 21(1978) p. 317-324. La présente invention a précisément pour objet un procédé de dosage immunologique qui permet d'obtenir une très bonne sensibilité sans exiger des dilutions élevées des échantillons à doser. Le procédé selon l'invention, de dosage im- munologique d'une substance à l'aide d'au moins un réactif immunoactif se caractérise en ce qu'il com- prend les étapes suivantes: 1) mettre en contact un échantillon conte- nant la substance à doser avec un réactif immunoactif marqué spécifique de ladite substance, la quantité de réactif immunoactif étant telle que la substance à do- ser se trouve en excès par rapport au réactif immuno- actif marqué; 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur laquelle est fixé un réactif immunoactif spécifi- que de la substance à doser; 3) séparer le milieu réactionnel de la phase solide; et 4) déterminer la teneur en réactif immunoac- tif marqué de la phase solide. Selon une variante de mise en oeuvre du pro- cédé de l'invention, on réalise simultanément les éta- pes 1) et 2) en mettant en contact la substance à doser simultanément avec le réactif immunoactif marqué et avec la phase solide sur laquelle est fixé le réac- tif immunoactif. Selon l'invention, la substance à doser est un antigène, un haptène ou un anticorps, et le réactif immunoactif est un réactif possédant une activité im- munologique, qui est capable de reconnaître la subs- tance à doser et de se combiner avec elle. Lorsque la substance à doser est un antigène ou un haptène, le réactif immunoactif est un anticorps spécifique de l'antigène ou de l'haptène. Dans ce cas, le réactif immunoactif marqué est un anticorps marqué qui peut être un anticorps marqué soit par un radioélément, soit par un élément fluorescent, soit par une enzyme, par exemple un com- posé conjugué d'une enzyme et d'un anticorps spécifi- que de l'antigène ou de l'haptène à doser. Le réactif immunoactif fixé sur la face so- lide est également un anticorps qui peut être le même anticorps que celui constituant l'anticorps marqué. Toutefois, l'anticorps marqué et l'anticorps fixé sur la face solide peuvent provenir de sources différen- tes, à condition qu'ils soient tous deux capables de reconnaitre le même antigène. Selon un mode préféré de mise en oeuvre du procédé de l'invention pour le dosage d'antigènes ou d'haptènes, l'un au moins des anticorps utilisés est un anticorps monoclonal. On décrit plus en détail, ci-après, la mise en oeuvre du procédé de l'invention pour le dosage immunologique d'un antigène. Dans ce cas, dans la pre- mière étape du procédé de l'invention, on réalise un marquage de l'antigène à doser par réaction de celui- ci avec l'anticorps marqué spécifique de cet antigène qui est présent en quantité constante mais telle que l'antigène soit en excès par rapport à l'anticorps. Aussi, à la fin de cette étape, on obtient un milieu réactionnel comprenant, d'une part, des molécules d'antigène libre en excès, et, d'autre part, des molé- cules d'antigène lié à l'anticorps marque. Dans la deuxième étape, lorsqu'on met en contact ce milieu réactionnel ou une partie de celui- ci avec une phase solide sur laquelle est fixé un an- ticorps spécifique des antigènes à doser, il y a com- pétition entre les molécules d'antigène lié à l'anti- corps marqué et les molécules d'antigène libre pour les sites anticorps fixés sur la phase solide. A la fin de cette étape, les sites d'anticorps disponibles sur la phase solide seront pour l'essentiel occupés par les molécules d'antigène libre et par les molécu- les d'antigène lié à l'anticorps marqué et le rapport entre les molécules d'antigène libre fixées et les mo- lécules d'antigène lié à l'anticorps marqué fixées sur cette phase solide dépendra de la quantité d'antigène libre présent dans le milieu réactionnel. Ainsi, plus -_ 2560996 la quantité d'antigène libre sera importante, plus la quantité d'antigène libre fixé sur la phase solide à la fin de la deuxième étape sera importante. Comme on l'a vu précédemment, on peut aussi réaliser ces deux étapes simultanément en mettant en contact l'antigène avec l'anticorps marqué spécifique de cet antigène et avec la phase solide sur laquelle est fixé un anticorps spécifique de l'antigène à do- ser. Ainsi, on réalise au cours de la même étape le marquage de l'antigène à doser et la fixation de l'an- tigène sur la phase solide. Dans la dernière étape du procédé, on déter- mine la teneur en anticorps marqué de la phase solide. Cette détermination dépend en particulier du marqueur utilisé. Lorsque le marqueur est un élément radioac- tif, on détermine la radioactivité de la phase solide ou éventuellement la radioactivité du milieu réaction- nel séparé de la phase solide. Lorsque le marqueur est une enzyme, on révèle par une méthode colorimétrique la quantité d'enzyme fixée sur la phase solide et on détermine la densité optique du milieu dans un spec- trophotomètre. Après cette mesure, on connaît ainsi la quantité d'antigène lié à l'anticorps marqué, qui est fixé sur la phase solide et comme cette quantité dé- pend de la quantité d'antigène libre restant à la fin de la première étape, on peut en déduire la teneur en antigène de l'échantillon. Pour obtenir cette valeur, on procède tout d'abord à un dosage d'échantillons ayant des concen- trations connues en antigène, afin d'établir une cour- be standard et on se reporte ensuite à la courbe stan- dard pour déterminer la teneur en antigène de l'échan- tillon. Le procédé de l'invention est particulière- ment avantageux pour le dosage d'antigènes constitués par des protéines présentes dans un fluide biologique en concentration relativement importante. En effet, le fait de réaliser, dans le pro- cédé de l'invention, une compétition entre des protéi- nes libres et des protéines liées à un anticorps mar- qué pour les sites d'un anticorps spécifique des pro- téines, nécessite d'opérer avec un excès de ces pro- téines dans la première étape. De ce fait, ce procédé est adapté au dosage d'échantillons ayant des concen- trations relativement importantes en protéines à doser et il permet d'obtenir une sensibilité satisfaisante sans qu'il soit nécessaire de diluer de façon impor- tante les échantillons à doser. En revanche, lorsqu'on utilise les techni- ques de dosage immunologique dites par excès, la né- cessité de travailler au cours de la première étape avec un excès d'anticorps, alors que cet anticorps fixé sur le support solide est en quantité limitée, oblige à des dilutions de l'antigène d'autant plus élevées que cet antigène est en quantité importante dans l'échantillon à doser. Par ailleurs, dans le procédé de l'inven- tion, on peut travailler avec des réactifs stables, et lorsqu'on utilise un anticorps marqué par une enzyme, il n'est pas nécessaire d'utiliser un appareillage particulier et onéreux puisqu'il suffit d'un spectro- photomètre pour effectuer la mesure finale. De plus, cette méthode permet d'obtenir une sensibilité équiva- lente à la néphélémétrie et supérieure à la plupart des autres méthodes de dosage. Le procédé de l'invention s'applique au do- sage de différentes protéines, en particulier au dosa- ge des protéines plasmatiques telles que les lipopro- téines, les immunoglobulines, les facteurs du complé- ment et les glycoprotéines du sérum. A titre d'exemple, les lipoprotéines peu- vent être les apolipoprotéines B, A1, A2, C, D,E etc... et leurs combinaisons; les immunoglobulines peuvent être IgG, IgA, IgM, IgD, IgE, etc...; et les facteurs du complément peuvent être Clq, C3c, C4, C5 ou C3a. Les glycoprotéines du sérum peuvent être l'orosomucoide, l'haptoglobuline, l'alpha-2-macroglo- buline, la coeruléoplasmine, la préaIbumine, l'albu- mine, la transférine, la protéine liant le rétinol, l'alpha-l-antitrypsine, l'antithrombine-III, l'inhi- biteur antitrypsine, l'hoemopescine, le fibrinogène et la bêta SP. On peut aussi utiliser le procédé de l'in- vention pour doser le complexe Immun circulant, l'haptoglobine, la protéine C réactive, les hormones lactogènes placentaires, l'afoetoprotéine, la C1 estérase, le C1 estérase inhibiteur et l'a1-antichymo- trypsine. Le procédé de l'invention se révèle particu- lièrement intéressant pour réaliser le dosage des li- poprotéines présentes dans le plasma sanguin. Dans ce cas, le procédé comprend les étapes suivantes. 1) mettre en contact un échantillon de plas- ma sanguin contenant les lipoprotéines à doser avec un composé conjugué d'un anticorps spécifique de ces li- poprotéines et d'une enzyme en quantité telle que les lipoprotéines à doser se trouvent en excès par rapport à l'anticorps, 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur laquelle est fixé le même anticorps spécifique des lipoprotéines à doser; 3> séparer le milieu réactionnel de la phase solide; et 4) déterminer la teneur en enzyme de la pha- se solide. Selon une variante de mise en oeuvre de ce procédé, on réalise simultanément les deux étapes 1) et 2) en mettant en contact l'échantillon de plasma sanguin contenant les lipoprotéines à doser avec le composé conjugué de l'anticorps spécifique de ces li- poprotéines et d'une enzyme et avec la phase solide sur laquelle est fixé le même anticorps spécifique des lipoprotéines à doser. L'enzyme utilisée est de préférence la peroxydase de Raifort. Pour la réalisation du dosage, on commence tout d'abord, par effectuer le dosage d'échantillons dont on connaît la teneur en lipoprotéines afin d'éta- blir la courbe étalon ou courbe standard qui donnera la densité optique (déterminée en fin d'opération) en fonction de la concentration en lipoprotéine. En se reportant ensuite à cette courbe stan- dard, on peut déterminer à partir de la valeur de la densité optique mesurée sur l'échantillon à doser la teneur en lipoprotéine de cet échantillon. Les différents réactifs utilisés pour met- tre en oeuvre le procédé de l'invention sont préparés par. des procédés classiques. Ainsi, les échantillons standard ayant une concentration connue en lipoprotéines sont obtenus par dilution à partir de plasma humain normal, du point de vue du bilan lipidique, provenant d'un nombre limité de donneurs. On isole les lipoprotéines voulues par ultracentrifugation séquentielle en utilisant les mé- thodes décrites par Havel, R.J. and Coll (1955), J.Clin Bioch 34,1, 345353, Chapman and Coll (1976) Atherosclerosis 25, 267-291. Généralement le sang est collecté à partir de différents sujets à jean dans des tubes contenant de l'éthylène diamine tétraacétate de sodium à 1 mg/ml. On sépare ensuite le plasma par centrifuga- tion pendant 20 min à 2500 g et on ajuste la densité du solvant à 1,050 avec du NaCl solide. On centrifuge alors dans une ultracentrifugeuse en effectuant plu- sieurs étapes de façon à obtenir les fractions de den- sités allant de 1,025 à 1,050. A partir de ces frac- tions, on isole les lipoprotéines voulues par des mé- thodes classiques, par exemple par ultracentrifuga- tion dans le cas des lipoprotéines B, et on calibre la solution de lipoprotéines par une méthode analytique précise. L'anticorps spécifique des lipoprotéines est préparé à partir des lipoprotéines isolées précé- demment qui sont utilisées pour obtenir par immunisa- tion chez un animal tel que le lapin, le mouton, * etc... des immunoglobulines spécifiques antilipopro- téines humaines. Les immunoglobulines sont obtenues à partir du sérum de l'animal immunisé, purifiées par précipitation à l'acide caprylique et séparées par centrifugation. Le surnageant est récupéré par filtra- tion et dyalisé une nuit à 4 C contre un tampon acéta- te. La solution est ensuite filtrée et sa pureté est testée par électrophorèse. Le composé conjugué de l'enzyme et de l'an- ticorps spécifique des lipoprotéines à doser est fa- briqué selon des techniques classiques, par exemple en utilisant la technique au périodate décrite par Wilson B.M. et Nakane P.K. dans "Recent developments in the periodate method of conjugating horseradish peroxida- se (HRPO) to antibodies"- In Knapp W, Holubar K. and Wick G. (eds)- "Immunofluorescence and related stai- ning techniques" New-York: Elsevie/North-Holland Biomedical Press, 1978, p.215, lorsque l'enzyme est la peroxydase de Raifort, puis purifié par filtration sur gel. Pour la mise en oeuvre du procédé de l'in- vention, la phase solide sur laquelle est fixé l'anti- corps est généralement constituée par un dispositif à ailettes disposé à l'intérieur d'un tube en matière plastique. Ce dispositif à ailettes est généralement réalisé en polyamide, et on fixe l'anticorps sur celui-ci en introduisant dans le tube une solution des immunoglobulines purifiées antilipoprotéines humai- nes, obtenues par exemple chez le mouton, et en lais- sant cette solution au contact des ailettes pendant environ 4 heures. De préférence, on a activé avant les immunoglobulines selon la méthode décrite par Eiji Ishikawa, Yoshitaka Hamaguchi, Masayoshi Imagawa (III,8preparation of antibody coated polystyrene balls for sandwich enzyme immunoassay-pp 119-122 Enzyme Immunoassay Ishikawa, Kawai, Miyai Igahu- Shoin, Tokyo (1981)). Plusieurs tubes contenant la quantité vou- lue d'anticorps peuvent être préparés de cette façon. Lorsque l'enzyme utilisée pour le marquage de l'anticorps est la peroxydase de Raifort, on utili- se pour la révélation enzymatique un chromogène qui est reconstitué au moment de l'emploi à partir d'une poudre obtenue par lyophilisation d'une solution d'orthophénylène diamine dans du phosphate de sodium. Pour la première étape du procédé de l'in- vention, on peut utiliser un tube en plastique ne com- portant pas de dispositif à ailettes, ou le tube com- portant un dispositif à ailettes décrit précédemment qui a été modifié de façon à présenter à sa partie supérieure une cupule en matière synthétique située au-dessus du dispositif à ailettes sur lequel est fixé l'anticorps. Cette cupule doit être facilement perfo- rable afin de permettre l'écoulement du milieu réac- tionnel en fin de première étape sur la phase solide, c'est-à-dire sur le dispositif à ailettes présent à la partie inférieure du tube. Des tubes comportant un dispositif à ailettes utilisables dans le procédé de l'invention sont décrits en particulier dans le brevet français EN 78/050040 déposé au nom du Commissariat à l'Energie Atomique). Les différents réactifs et matériels utili- sés pour le dosage immunologique de l'invention peu- vent être disposés dans une trousse qui comprendra: - un système de tubes comportant chacun une phase so- lide, par exemple un dispositif à ailettes, revêtue dans les mêmes conditions d'immunoglobulines anti lipoprotéines humaines. Ces tubes sont conservés à l'abri de l'humidité dans des emballages adéquats du type blister; - une série de flacons contenant des échantillons standard qui couvriront la gamme de 0,1 à 0,005 g/l de lipoprotéines. Ces échantillons peuvent être con- ditionnés soit sous forme liquide avec adjonction de stabilisateurs adéquats tels que des antibiotiques, des antioxydants et un inhibiteur de protéase, soit sous forme lyophilisée, la lyophilisation étant ef- fectuée en présence de sucrose; - un flacon contenant le composé conjugué provenant du couplage des immunoglobulines antilipoprotéines humaines avec une enzyme telle que la peroxydase de Raifort. Ce composé peut être prédilué dans un tam- pon borate contenant du sérum de mouton délipopro- téiné et un conservateur tel que le thimérosal, sous forme liquide ou lyophilisée; et - un flacon contenant un chromogène pour la révélation enzymatique. Le chromogène peut être présenté sous forme lyophilisée; et, dans ce cas, la trousse com- prend de plus un flacon contenant un tampon de dilu- tion du chromogène. Ainsi, la trousse comportera tous les élé- ments nécessaires pour établir la courbe standard d'étalonnage et le dosage des échantillons. Le procédé de l'invention peut également être utilisé pour le dosage immunologique de l'a-foe- toprotéine. L'a-foetoprotéine est une glycoprotéine synthétisée par les cellules du foie foetal et du sac vitellin. C'est le constituant majeur du sérum foetal. On en trouve également dans le liquide amniotique, et dans le sérum maternel. Dans le liquide amniotique, le taux maximum est atteint vers la 15è semaine (20 à lg/ml>, et dans le sérum maternel vers la 34è se- maine (>200 ng/ml). L'utilisation du dosage de l'a- foetoprotéine est particulièrement utile dans les cas suivants. En obstétrique l'l-fétoprotéine permet le diagnostic anténatal des malformations du tube neural par des dosages sur sang maternel, puis sur liquide amniotique réalisés vers les 16 à 18 semaines de ges- tation. Par ailleurs, un taux exagéré d'a-foetoprotéi- ne peut être indicateur de souffrance foetale, de grossesse multiple, tandis qu'un taux faible peut faire suspecter une toxémie, un retard de croissance ou une tumeur placentaire. En cancérologie, l'a-foetoprotéine aide au diagnostic et permet le suivi post-thérapeutique des carcinomes hépatocellulaires notamment sur cirrhose, des tératocarcinomes de toutes localisations mais sur- tout ovariens, testiculaires et sacrococcygiens, et des métastases hépatiques de différents autres cancers notamment digestifs. En hépatologie, l'a-foetoprotéine témoigne du processus de régénération intense dans les hépati- tes virales. En pédiatrie, l'a-foetoprotéine permet de différencier l'atrésie biliaire et hépatite néonatale et d'affirmer cané Fvrnr nrocz hâe 4,;d Le procédé, selon l'invention, de dosage de l'a-foetoprotéine présente dans un échantillon de li- quide amniotique, de sérum ou de plasma, se caractéri- se en ce qu'il comprend les étapes suivantes: 1) mettre en contact l'échantillon contenant l'a-foetoprotéine à doser avec un composé conjugué d'un anticorps spécifique de l'a-foetoprotéine à doser et d'une enzyme, en quantité telle que l'a-foetopro- téine à doser se trouve en excès par rapport à l'anti- corps; 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur la- quelle est fixé un anticorps spécifique de l'a-foeto- protéine à doser; 3) séparer le milieu réactionnel de la phase soli- de; et 4) déterminer la teneur en enzyme de la phase soli- de. Selon une variante de mise en oeuvre de ce procédé, on réalise simultanément les étapes 1) et 2) en mettant en contact l'échantillon contenant l"=-foe- toprotéine à doser avec le composé conjugué de l'anti- corps spécifique de l'a-foetoprotéine et d'une enzyme et avec la phase solide sur laquelle est fixé un anti- corps spécifique de l'a-foetoprotéine à doser. Selon un mode préféré de mise en oeuvre de ce procédé, l'anticorps du composé conjugué est un an- ticorps monoclonal, et l'anticorps fixé sur la phase solide est une immunoglobuline anti a-foetoprotéine. De préférence, l'enzyme utilisée est la peroxydase de Raifort. Comme dans le cas du dosage des lipoprotéi- nes, les éléments nécessaires pour réaliser ce dosage peuvent être disposés dans une trousse qui comprend: - un système de tubes comportant chacun une phase so- lide revêtue dans les mêmes conditions d'immunoglo- a560996 - une série de flacons contenant des échantillons standard couvrant la gamme de 50 à 1000 ng/ml d'a- foetoprotéine; - un flacon contenant le composé conjugué provenant du couplage d'un anticorps monoclonal spécifique de l'a-foetoprotéine avec une enzyme; et - un flacon contenant un chromogène pour la révélation enzymatique. Comme pour le dosage des lipoprotéines, les tubes peuventcomporter une phase solide constituée par un dispositif à ailettes et le chromogène peut être conditionné sous forme lyophilisée. Dans ce der- nier cas, la trousse comprend de plus, un flacon con- tenant un tampon de dilution du chromogène. Les exemples suivants donnés bien entendu à titre non limitatif en référence aux figures annexées illustrent la mise en oeuvre du procédé de l'invention pour le dosage d'apolipoprotéine B et pour le dosage d'afoetoprotéine. - la figure 1 représente schématiquement en coupe verticale un dispositif de dosage selon l'inven- tion, - les figures 2 et 3 représentent les cour- bes standard de dosage des lipoprotéines B obtenues selon le procédé de l'invention, - la figure 4 représente la courbe standard de dosage des lipoprotéines B obtenue par un procédé l'art antérieur, et - la figure 5 représente la courbe standard de dosage de l'a-foetoprotéine obtenue en utilisant des anticorps monoclonaux conformément au procédé de l'invention. Sur la figure 1, on voit que le dispositif de dosage utilisé dans les exemples qui suivent, est constitué par un tube transparent 1 presque cylindri- que de section circulaire qui est fermé à sa base par un fond plat 3. Ce tube comprend successivement depuis sa base une première zone de réaction A dans laquelle est engagée et immobilisée une pièce 5 destinée à fixer l'anticorps spécifique de la protéine à doser. Cette pièce comprend un manchon cylindrique plein 5a dont l'extrémité inférieure repose sur le fond 3 du tube 1 et des ailettes longitudinales 5b dont les bords externes viennent en contact avec la surface interne la du tube 1, ce qui permet d'assurer l'immobilisation de la pièce dans le tube puisque cet- te pièce est réalisée en matériau élastique, par exem- ple, en polyamide. La hauteur de cette pièce 5 déter- mine la hauteur de la zone de réaction A du tube 1. Comme on peut le voir sur le dessin, le fait d'avoir un fond plat 3 permet de limiter les quantités de réactif à utiliser, qui doivent être juste suffi- santes pour immerger totalement la pièce 5. Au-dessus de la première zone de réaction A, le tube comporte une seconde zone de lecture B, puis une zone C de hauteur plus importante permettant de réaliser les étapes de lavage. Dans la seconde zone de lecture B, le tube présente une très bonne qualité optique qui est obtenue en particulier grâce au fait que la surfa- ce interne la et la surface externe lb de la paroi du tube 1 sont bien centrées l'une par rapport à l'autre, dans cette zone. Ainsi, dans cette zone du tube, l'épaisseur e de la paroi est homogène et constante. Le tube 1 est réalisé en matière plastique, par exemple en polyméthacrylate de méthyle et il est obtenu de préférence par moulage par injection. Exemple 1. Dosage des apolipoprotéines B. Pour réaliser ce dosage, on prépare tout d'abord une gamme de 6 échantillons standard ayant des concentrations connues en lipoprotéines B allant de 0,5 mg/ml à 0,005 mg/ml par dilution au 1/2, 1/10, 1/20, 1/50, 1/100 et 1/200 d'une solution mère de li- poprotéines B à 1 g/1 dans un tampon borate 0,05 M pH=8, NaCl 150 mM, KC1 20 mM, contenant en outre 15% (v/v) de sérum de mouton normal délipoprotéiné par ul- tracentrifugation. L'anticorps spécifique des lipoprotéines B humaines est obtenu chez le mouton par immunisation d'un mouton au moyen de lipoprotéines B humaines ana- logues à celles utilisées pour la préparation des échantillons standard. Les immunoglobulines sont ob- tenues à partir du sérum du mouton immunisé et on les purifie par précipitation à l'acide caprylique, sépa- ration par centrifugation, récupération du surnageant par filtration, puis dialyse du surnageant pendant une nuit à 4 C contre un tampon acétate 0,1 M à pH 5,7. On met ensuite la solution en contact pendant 15 min avec du gel DEAE A 50 à raison de 8 g de DEAE A 50 tamponné (dans la même solution) par gramme de protéines. On recueille ensuite par filtration une solution conte- nant des immunoglobulines dont la pureté peut être testée par électrophorèse. On prépare ensuite le composé conjugué de l'anticorps spécifique des lipoprotéines B et d'une enzyme en couplant les immunoglobulines ainsi obtenues et l'enzyme constitué par la peroxydase de Raifort de Boehringer (Grade 1 R.Z.=3) selon la technique au pe- riodate de sodium décrite par Wilson et Nakane. On purifie ensuite le composé conjugué ainsi obtenu par filtration sur gel en utilisant comme gel l'Ultrogel Ac A 44 et en réalisant l'élution par un tampon PBS (50 mM; pH = 7,2). Cette purification permet essen- tiellement d'éliminer les traces d'enzyme libre qui pourraient fortement interférer dans le dosage. Le composé conjugué ainsi obtenu est ensuite dilué au 1/200 dans un tampon borate 0,05 M; pH = 8,0, NaCl 150 mM, KC1 20 mM contenant en outre 15% (v/v) de sérum de mouton normal délipoprotéiné par ultracentri- fugation. Pour réaliser le dosage, on utilise les tu- bes en polyméthacrylate de méthyle représentés sur la figure 1, au fond desquels sont engagés et immobilisés des dispositifs à ailettes réalisés en polyamide sur lesquels sont fixés les anticorps spécifiques des li- poprotéines B. Pour fixer ces anticorps sur la phase solide constituée par le dispositif à ailettes du tube, on introduit dans le tube 1 ml d'une solution d'immuno- globuline à 50 lg/ml dans un tampon phosphate (0,05 M; pH = 7,0) pendant 4 heures à la température ambiante, en utilisant les immunoglobulines obtenues chez le mouton après les avoir activées selon la mé- thode décrite par Eiji Ishikawa, Yoshitaka Hamaguchi, Masayoshi Imagawa. Au bout des 4 heures, le tube est lavé trois fois avec le tampon phosphate, puis séché sous vide à 37 C et conservé ensuite à 40C à l'abri de l'humidité. On réalise ensuite le dosage de la façon suivante. On introduit dans un premier tube en plasti- que sans dispositif à ailettes, 0,5 ml d'échantillon standard ou d'échantillon à doser et 0,5 ml du composé conjugué prédilué au 1/200 dans le tampon borate et on laisse incuber à la température ambiante. Après incu- bation pendant lh30min, on verse le contenu de ce premier tube ou tout au moins une partie de ce contenu (au moins 0,450 ml) dans l'un des tubes en plastique dont le dispositif à ailettes est revêtu de l'anti- corps spécifique des lipoprotéines B, et on maintient le milieu liquide au contact des ailettes pendant deux heures, à la température ambiante. On aspire alors la phase liquide du tube et on-lave le tube tout d'abord à l'eau permutée contenant 0,1% de Tween 20, puis deux fois à l'eau permutée. Ces lavages se font en remplissant le tube de 2 ml de liquide et en le vidant par aspiration. Après ces lavages, on verse dans le tube 0,5 ml de la solution de chromogène reconstituée extemporanément par addition de 16 ml d'un tampon substrat contenant 0,92% (p/v) d'acide citrique mono- hydraté, 0,01% (p/v) de thimérosal et 0,02% (v/v) de H202 à 30% (Merck) à un mélange obtenu par lyophilisa- tion d'une solution à 10 mg/ml d'orthophénylène diami- ne, 2HCl (Sigma) dans 3,2 ml de phosphate (Na2HPO4, 2H20 à 100 mg/ml). On laisse se développer la réaction enzymatique pendant une demi-heure à la température ambiante, et on arrête le processus par addition de 2 ml de solution d'acide oxalique 1 N. On détermine alors la densité optique de la solution par spectro- photométrie à 492 nm, en introduisant le tube 1 dans le spectrophotomètre 2 de telle sorte que le faisceau lumineux L traverse le tube 1 au niveau de la zone de lecture B du tube 1. On répète les opérations de dosage pour tous les échantillons standard et les résultats obtenus sont donnés dans le tableau 1 qui suit et sur la figu- re 2 qui représente la courbe standard donnant les densités optiques en fonction de la teneur en lipopro- téines B des échantillons. On réalise également les mêmes opérations de dosage sur l'échantillon à doser et on repère alors sur la courbe standard à quelle concentration-en lipo- protéines B correspond la densité optique mesurée sur cet échantillon. TABLEAU 1 Dilution Concentration D.O. (en mg/ml) 1/2 0,5 0,28 1/5 0,2 - 0,49 1/10 0,1 0,74 1/20 0,05 1,01 1/50 0,02 1,42 1/100 0,01 1,60 Exemple 2. Dosage des apolipoprotéines Pour réaliser ces dosages, on prépare comme dans l'exemple 1, une gamme de six échantillons stan- dard ayant des concentrations connues en lipoprotéines B allant de 0,5 à 0,01 mg/ml par dilution au 1/2, 1/5, 1/10, 1/20, 1/50 et 1/100 d'une solution-mère de lipo- protéines B à 1 g/1 dans un tampon-borate 0,05 M, pH=8, NaCl 150 mM, KC1 20 mM, contenant en outre 15% (V/V) de sérum de mouton normal délipoprotéiné par ul- tracentrifugation. Pour ce dosage, on utilise les mêmes tubes, le même anticorps et le même composé conjugué que dans l'exemple 1, l'anticorps étant fixé sur la phase soli- de constituée par le dispositif à ailettes du tube. On réalise ensuite le dosage de la façon suivante. On introduit dans le tube comportant le dis- positif à ailettes sur lequel est fixé l'anticorps, 1l d'échantillon standard et 1 ml du composé con- jugué prédilué au 1/2000 et on laisse incuber pendant 2 h à 37 C. On aspire alors la phase liquide du tube et on lave le tube comme dans l'exemple 1. On effectue également une opération de révélation. enzymatique de la phase solide dans les mêmes conditions que celles de l'exemple 1 en utilisant les mêmes produits. On répète les opérations de dosage pour tous les échantillons standard. Les résultats obtenus sont donnés dans le tableau 2 qui suit et sur la figure 3 qui représente la courbe standard donnant les densités optiques en fonction de la teneur en lipoprotéines B des échantillons. On réalise également les mêmes opé- rations de dosage sur l'échantillon à doser mais en utilisant 10 1il d'échantillon et 1 ml du composé con- jugué prédilué au 1/2000. TABLEAU 2 Dilution Concentration D.O. (en mg/ml) 1/2 0,5 0,35 1/5 0,2 0,58 1/10 0,1 0,84 1/20 0,05 1,24 - 1/50 0,02 1,850 1/100 0,01 2,000 Exemple 3. Dosage des lipoprotéines B A titre comparatif, on donne, ciaprès, les résultats obtenus avec une méthode de dosage immunoen- zymatique classique utilisant les mêmes réactifs mais comprenant les étapes suivantes. 1 Incubation de l'échantillon standard ou de l'échantillon à doser avec la phase solide sur la- quelle est fixé l'anticorps. Dans des tubes comportant le dispositif à ailettes revêtu des anticorps spécifiques des lipopro- téines B, on met à incuber 0,5 ml de standard prédilué au 1/100, 1/500, 1/1000, 1/2000, 1/4000, 1/5000, 1/10000, 1/20000 pendant une heure à la température ambiante. On aspire alors le contenu du tube et on le lave une première fois avec une solution de Tween 20 à 0,1%, puis une deuxième et une troisième fois avec de l'eau permutée. 2 Incubation du composé conjugué. On ajoute alors dans le tube 0,5 ml du com- posé conjugué anticorps antilipoprotéines humaines- peroxydase de Raifort dilué au 1/1500 et on laisse incuber pendant deux heures à la température ambiante. On aspire ensuite la phase liquide et on lave le tube comme précédemment, une première fois avec une solu- tion de Tween 20 à 0,1% et deux fois avec de l'eau permutée. 3 Dosage de l'enzyme fixée sur la phase so- lide. La révélation enzymatique se fait par addi- tion du même chromogène et dans les mêmes conditions. On réalise également la lecture à 492 nm. Les résul- tats obtenus sont donnés dans le tableau 3 qui suit et sur la figure 4 qui représente la courbe standard ob- tenue dans ces conditions. Avec cette méthode classique, un échantil- lon à doser doit être dilué au 1/5000 ou 1/10000 alors que, dans le procédé de l'invention, l'échantillon peut ne pas subir de dilution préalable si la prise d'essai est de 20 l1 ou être seulement dilué au 1/25 ou au 1/50 pour des prises d'essai de 1 mlo. *TABLEAU 3 Dilution Concentration D.O (en lg/ml) 1/100 10 Lg/ml 1,70 1/500 5 1,65 1/1000 1 1,50 1/2000 0,5 1,32 1/4000 0,25 1,05 1/5000 0,2 0,85 1/10000 0,1 0,51 351/20000 0,050 0,37 blanc 0,16 256-0o9 96 Exemple 4. Dosage de l'a-foetoprotéine. Cet exemple illustre le dosage d'alpha-foe- - toprotéine par le procédé de l'invention en utilisant comme premier anticorps un anticorps monoclonal spécifique de l'a-foetoprotéine et comme deuxième an- ticorps fixé sur la phase solide des immunoglobulines anti a-foetoprotéine humaine obtenues chez la chèvre. On prépare tout d'abord une gamme de 4 échantillons standard ayant des concentrations con- nues en a-foetoprotéines allant de 50 ng/ml à 1000 ng/ml obtenus par dilution de liquides amnioti- ques dans un tampon phosphate (50 mM; pH = 7,4) et contenant en outre 5% (v/v) de sérum de mouton normal et 0,01% (v/v) de thimérosal. On utilise un anticorps monoclonal K6B1 obtenu par fusion de splénocytes de souris BALB/C immunisées avec de l!a-foetoprotéine d'origine humai- ne et de cellules de myélome selon une technique déri- vée de celle de Kohler G. et Milstein C., décrite par Sertour J., Bellet D., Salard J.L. et Marchand J. "Polyclonal or Monoclonal antibodies in an AFP assay. Protides of the Biological Fluids. 31st Colloquium" Bruxelles 1983 - Ed. Dr H. Peeters-Pergamon Press Oxford and New York. On prépare ensuite le composé conjugué de l'anticorps monoclonal spécifique de l'a-foetoprotéi- ne et d'une enzyme en couplant l'anticorps monoclonal avec Ia peroxydase de Raifort selon la technique uti- lisée dans l'exemple 1. On purifie également le compo- sé conjugué dans les mêmes conditions que celles de l'exemple 1, puis on dilue celui-ci au 1/20000 dans un tampon phosphate (50 mM; pH = 7,4), contenant en ou- tre 5% (v/v) de sérum de mouton normal et 0,01% de thimérosal. -6099 6 Pour réaliser le dosage, on utilise les tu- bes en polystyrène représentés sur la figure 1, au fond desquels est engagé et immobilisé un dispositifà ailettes réalisé en polyamide sur lequel est fixé le deuxième anticorps spécifique de l'a-foetoprotéine. Pour fixer cet anticorps sur la phase solide constituée par le dispositif à ailettes du tube, on introduit dans le tube 1 ml d'une solution d'immuno- globulines à 50 lig/ml dans un tampon phosphate (0,05 M; pH = 7,0) pendant 4h à la température am- biante, en utilisant des immunoglobulines anti-alpha- foetoprotéine obtenues chez la chèvre après les avoir activées selon la méthode décrite par Eiji Ishikawa, Yoshitaka Hamaguchi, Masayoshi Imagawa. Au bout des 4h, le tube est lavé 3 fois avec le tampon phosphate puis séché sous vide à 37 C et conservé ensuite à 4 C à l'abri de l'humidité. On réalise ensuite le dosage de la façon suivante. On introduit dans un premier tube en plasti- que sans dispositif à ailettes 0,5 ml d'échantillon standard ou d'échantillon à doser et 0,5 ml du compose conjugué prédilué au 1/20000 dans le tampon phosphate, et on laisse incuber à 370C. Après incubation pendant lh30 min, on verse le contenu de ce premier tube ou tout au moins une partie de ce contenu (au moins 0,450 ml) dans l'un des tubes en plastique dont le dispositif à ailettes est revêtu de l'anticorps spéci- fique constitué par les immunoglobulines anti-alpha- foetoprotéine obtenues chez la chèvre, et on maintient le milieu liquide au contact des ailettes pendant 1 h à 370C. On aspire alors la phase liquide du tube et on lave le tube tout d'abord à l'eau permutée contenant 0,1% de Tween 20, puis deux fois à l'eau permutée. Après ces lavages, on verse dans le tube 0,5 ml de la solution de chromogènes utilisée dans 2560-996 l'exemple 1 et on effectue la révélation enzymatique dans les mêmes conditions que celles de l'exemple 1. Les résultats obtenus sont donnés sur la fi- gure 5 qui représente la courbe standard obtenue dans ces conditions. 60996' REVENDICATIONS 1. Procédé de dosage immunologique d'une substance, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: 1) mettre en contact un échantillon contenant la substance à doser avec un réactif immunoactif marqué spécifique de la substance à doser, la quantité de réactif immunoactif étant telle que la substance à doser se trouve en excès par rapport au réactif immu- noactif marqué; 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur la- quelle est fixé un réactif immunoactif spécifique de la substance à doser; 3) séparer le milieu réactionnel de la phase soli- de; et 4) déterminer la teneur en réactif immunoactif mar- qué de la phase solide. 2. Procédé selon la revendication 1, carac- térisé en ce que l'on réalise simultanément les étapes 1) et 2) en mettant en contact la substance à doser simultanément avec le réactif immunoactif marqué et avec la phase solide sur laquelle est fixé le réactif immunoactif. 3. Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 1 et 2, caractérisé en ce que la substance à doser est un antigène ou un haptène. 4. Procédé selon la revendication 3, carac- térisé en ce que le réactif immunoactif marqué est un anticorps marqué par un radioélément. 5. Procédé selon la revendication 3, carac- térisé en ce que le réactif immunoactif marqué est un composé conjugué d'une enzyme et d'un anticorps spéci- fique de l'antigène ou de l'haptène à doser. 2560 97 6 6. Procédé selon la revendication 3, carac- térisé en ce que le réactif immunoactif marqué est un anticorps marqué par un élément fluorescent. 7. Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 3 à 6, caractérisé en ce que l'un au moins des réactifs immunoactifs est un anticorps monoclonal. 8. Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 1 et 2, caractérisé en ce que la substance à doser est une protéine plasmatique choisie dans le groupe comprenant les lipoprotéines, les immunoglobu- lines, les facteurs du complément et les glycoprotéi- nes. 9. Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 1 et 2, caractérisé en ce que la substance à doser est un anticorps. 10. Procédé de dosage de lipoprotéines dans le plasma sanguin, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: 1) mettre en contact un échantillon de plasma san- guin contenant les lipoprotéines à doser avec un com- posé conjugué d'un anticorps spécifique de ces lipo- protéines et d'une enzyme, en quantité telle que les lipoprotéines à doser se trouvent en excès par rapport à l'anticorps; 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur laquelle est fixé le même anticorps spécifique des lipoprotéines à doser, 3) séparer le milieu réactionnel de la phase solide, et 4) déterminer la teneur en enzyme de la phase soli- de. 11. Procédé selon la revendication 10, ca- ractérisé en ce que l'on réalise simultanément les étapes 1) et 2) en mettant en contact l'échantillon de plasma sanguin contenant les lipoprotéines à doser si- multanément avec le composé conjugué d'un anticorps spécifique de ces lipoprotéines et d'une enzyme et avec la phase solide sur laquelle est fixé le même anticorps spécifique des lipoprotéines à doser. 12. Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 10 et 11, caractérisé en ce que l'enzyme est la peroxydase de Raifort. 13. Trousse pour le dosage de lipoprotéines par mise en oeuvre du procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 12, caractérisée en ce qu'elle comprend: - un système de tubes comportant chacun une phase so- lide revêtue dans les mêmes conditions d'immunoglo- bulines antilipoprotéines humaines; - une série de flacons contenant des échantillons standard couvrant la gamme de 0,1 à 0,005 g/1 de lipoprotéines; - 1 flacon contenant le composé conjugué provenant du couplage des immunoglobulines antilipoprotéines humaines avec une enzyme; et - un flacon contenant un chromogène pour la révélation enzymatique. 14. Procédé de dosage de l'a-foetoprotéine présente dans un échantillon de sérum, de plasma ou de liquide amniotique, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: 1) mettre en contact l'échantillon contenant l'a-foetoprotéine à doser avec un composé conjugué d'un anticorps spécifique de l'a-foetoprotéine à doser et d'une enzyme, en quantité telle que l'a-foetopro- téine à doser se trouve en excès par rapport à l'anti- corps; 2) mettre en contact au moins une partie du milieu réactionnel ainsi obtenu avec une phase solide sur la- quelle est fixé un anticorps spécifique de l'a-foeto- protéine à doser; 3) séparer le milieu réactionnel de la phase soli- de; et 4) déterminer la teneur en enzyme de la phase soli- de. 15. Procédé selon la revendication 14, ca- ractérisé en ce que l'on réalise simultanément les étapes 1) et 2) en mettant en contact l'échantillon contenant l'a-foetoprotéine à doser simultanément avec le composé conjugué d'un anticorps spécifique de l'a.foetoprotéine à doser et d'une enzyme et avec la phase solide sur laquelle est fixé un anticorps speci- fique de l'a-foetoprotéine à doser. 16. Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 14 et 15, caractérisé en ce que l'anti- corps du composé conjugué est un anticorps monoclonal. 17. Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 14 à 16, caractérisé en ce que l'anti- corps fixé sur la phase solide est une immunoglobuline anti a-foetoprotéine. 18. Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 14 à 17, caractérisé en ce que l'enzyme est la peroxydase de Raifort. 19. Trousse pour le dosage de l'a-foetopro- téine par mise en oeuvre du procédé selon l'une quel- conque des revendications 14 à 18, caractérisée en ce qu'elle comprend: - un système de tubes comportant chacun une phase so- lide revêtue dans les mêmes conditions d'immunoglo- bulines anti e-foetoprotéine humaine; - une série de flacons contenant des échantillons standard couvrant la gamme de 50 à 1000 ng/ml d'I- foetoprotéine; - un flacon contenant le composé conjugué provenant du couplage d'un anticorps monoclonal spécifique de l'a-foptonro4n:. ............. - un flacon contenant un chromogène pour la révélation enzymatique. 20. Trousse selon l'une quelconque des re- vendication 13 et 19, caractérisée en ce qu'elle com- prend de plus un flacon contenant un tampon de dilu- tion du chromogène.