Brevet FR2562252A1 — publié le 19851004

Procédé de dosage immunoenzymatique sans étape de séparation et réactifs et nécessaires pour sa mise en oeuvre. L'invention a pour objet un procédé de dosage immuno- enzymatique sans étape de séparation du marqueur libre de la fraction de marqueur liée, applicable au dosage de toute en- tité capable de former un complexe immunologique avec une autre entité qui lui est spécifique, ainsi que des réactifs et nécessaires pour essais, ou "kits", pour la mise en oeu- vre de ce procédé. Les dosages immunoenzymatiques connaissent actuelle- ment un essor important et différentes techniques ont été proposées. Elles utilisent soit des immunoabsorbants, comme le système connu sous la dénomination ELISA, soit la modifi- cation de l'activité biologique de l'enzyme utilisée comme marqueur, comme le système connu sous la dénomination EMIT. Cette dernière méthode présente l'avantage de ne pas nécessi- ter d'étape de séparation du marqueur libre de la fraction de marqueur liée, ce qui la rend facilement automatisable. Malheureusement, elle n'est applicable qu'au dosage des hap- tènes et sa sensibilité est relativement faible, ce qui li- mite considérablement son domaine d'application. Pour tenter de remédier à ces inconvénients, on a proposé une méthode, en principe généralisable et ne néces- sitant pas de séparation des formes libres et liées, qui consiste en la concentration de plusieurs enzymes au niveau d'un support, par l'intermédiaire d'une réaction immunologi- que. Dans un tel système, la substance produite par l'une des enzymes sert de substrat à une autre enzyme et on dose le produit final des différentes réactions mises en jeu (voir notamment Analytical Biochemistry 106, 223-229 (1980), de- mande de brevet EP 0 032 286 et Immunoenzymatic Techniques, S. Avrameas et Coll., Elsevier Science Publishers B.V., (1983), page 247 et suivantes) . Cependant, le signal obtenu selon cette technique évolue en fonction du temps. Par consé- quent, toutes les mesures doivent être effectuées après un temps de réaction rigoureusement identique pour tous les do- sages, dans une même série d'essais. Du fait des difficultés de mise en oeuvre rencontrées ainsi que de la faible sensi- bilité et du manque de reproductibilité observés, cette mé- thode n'a pu être appliquée à des dosages de routine. Dans ces documents, il n'est ni décrit, ni même sug- géré, d'avoir recours, pour l'émission du signal, à un sys- tème de bioluminescence utilisant un nucléotide en tant que substance produite par la première enzyme. On a par ailleurs [Analytical Biochemistry, 122, 385- 393 (1982)] proposé une technique de dosage du dinitrophénol (DNP) ou du trinitrophénol (TNP) selon laquelle, au cours d'une première étape, on incube un conjugué de la glucose- 6-phosphate deshydrogénase (G-6-PDH) et de l'haptène à doser modifié avec l'anticorps correspondant immobilisé et le com- posé libre à doser, on sépare la matière non liée, lave et ajoute du nicotinamide dinucléotide (NAD) et du glucose-6- phosphate (G-6-P). I1 se forme du NAD réduit (NADH) selon la réaction: G6-P + NAD+ G-6-PDH) acide 6-phosphogluconique + NADH + HU Le NADH formé est dosé après incubation, au moyen de la lumière émise dans une réaction ultérieure, en ayant re- cours au système enzymatique bactérien de bioluminescence NADH:FMN (flavine mononucléotide) oxydo-réductase-lucifé- rase, en présence de FMN et d'un aldéhyde à longue chaîne. La lumière mesurée est produite selon les réactions suivantes: NADH + H+ + FMN oxydo-réductase > NAD+ + FMNH2 et FMNH2 + RCHO + 02 luciférase_ FMN + RCOOH + H20 + hv. Dans ce procédé, on dose le NADH en solution. Pour augmenter le rendement de bioluminescence, il est nécessaire de laisser réagir au moins trente minutes pour que la quan- tité de NADH formée conduise à l'apparition d'une biolumi- nescence suffisante dans l'étape suivante. Ce système donne des résultats décevants car le si- gnal de bioluminescence obtenu est peu stable dans le temps, ce qui oblige à prendre des précautions particulières et constitue une source d'erreur importante. Au surplus, ce procédé est difficilement automatisable dans la mesure o il est nécessaire d'effectuer une séparation des composants non fixés avant d'effectuer le dosage par bioluminescence. L'invention a pour but de remédier aux inconvénients des procédés de l'état de la technique en fournissant un procédé de dosage immunoenzymatique très sensible et présen- tant une bonne reproductibilité, applicable à tous les sys- tèmes immunologiques et facilement automatisable, car ne né- cessitant pas d'étape de séparation de la fraction contenant le marqueur en excès de la fraction contenant le complexe immun. Ce but a été atteint selon l'invention qui, selon l'un de ses aspects, fournit un procédé qui satisfait aux exigences posées. Selon l'invention, on a établi que, de façon surprenante, on pouvait obtenir un signal de bioluminescence stable pendant une longue durée (plusieurs heures) avec un très bon rendement de.bio- luminescence, et partant une grande sensibilité, tout en ob- servant une bonne reproductibilité, en concentrant, par l'intermédiaire d'une réaction immunologique, les différentes enzymes mises en jeu au niveau d'un support, et en travaillant dans des conditions particulières. Plus précisément, l'invention fournit un procédé pour le dosage immunoenzymatique, dans un milieu aqueux, d'une entité X capable de former un complexe immunologique avec une entité Y, spécifique de l'entité X, selon lequel on effectue la concentration d'au moins deux enzymes au niveau d'un support au moyen d'une réaction immunologique à laquelle participent les entités X et Y, ce grâce à quoi un composé intermédiaire est formé au niveau du support par une première enzyme et selon lequel ce composé intermédiaire sert de substrat à une deuxième enzyme pour donner un autre composé qui, direc- tement ou indirectement, produit au niveau du support un phénomène mesurable, dans des conditions telles qu'une re- lation puisse être établie entre le résultat de la mesure de ce phénomène et la concentration de l'entité X, caracté- risé en ce qu'il comprend essentiellement les étapes con- sistant à: a) amener une première enzyme, en tant que mar- queur de l'entité X ou de l'entité Y, au moyen d'une réac- tion immunologique de type "compétition" ou "sandwich" en- tre les entités X et Y, au niveau du support sur lequel est fixée, de façon préalable ou concomitante, l'entité Y, pour y produire un composé nucléotide intermédiaire susceptible de subir, au contact des composants d'un système de bioluminescence com- portant une ou plusieurs enzymes également fixées sur le support, une transformation conduisant à l'émission de lu- mière, dans des conditions telles qu'une relation puisse être établie entre la. lumière émise et la concentration de l'entité X dans le milieu aqueux, b) laisser reposer jusqu'à obtention d'un signal stable, c) mesurer la lumière émise et d) à partir de la mesure effectuée, déterminer la concentration de l'entité X dans le milieu aqueux ou l'échantillon étudié, à l'aide d'un système d'étalon- nage. L'entité à doser X peut être tout composé pour lequel on sait préparer une entité spécifique Y avec laquelle il est capable de former un complexe immunologique. Dans le procédé selon l'invention, les entités X et Y peuvent en principe jouer des rôles symétriques, c'est-à-dire qu'en principe, une entité donnée X ou Y peut, selon le cas, être dosée au moyen de l'autre entité, ou servir à la doser. Plus précisément, l'entité X est par exemple un antigène ou un haptène et l'entité Y est alors un anticorps spécifique de cet antigène ou de cet haptène, ou l'inverse. Selon un mode avantageux de réalisation de l'in- vention, l'entité Y n'est elle-même fixée sur le support qu'au cours de la mise en oeuvre du procédé selon l'inven- tion, par l'intermédiaire d'une réaction immunologique avec une entité Z autre que l'entité X, fixée au préalable sur le support. Cette variante est particulièrement intéressante dans le cas du dosage d'un antigène ou d'un haptène. On uti- lise alors un support sur lequel est fixé au préalable un système permettant l'immobilisation ultérieure d'un anti- corps, par exemple des anticorps anti-y-globulines (on a alors un système dit "à double anticorps"), de la protéine A (pro- téine obtenue à partir de microorganismes tels que Staphylo- coccus aureus et utilisée pour la reconnaissance univer- selle des immuncglobulines) et analogues. L'anticorps spé- cifique de l'entité à doser est dans ce cas introduit d a n s 1 e milieu aqueux au cours de la mise en oeuvre du procédé et participe à une réaction immunologique avec d'une part l'entité Z fixée sur le support et d'autre part l'entité à doser X. Le procédé selon l'invention peut être mis en oeuvre en utilisant une réaction immunologique soit de type "compétition", soit de type "sandwich". Ces deux expressions sont expliquées ci-après en relation, pour simplifier l'ex- posé, avec le dosage d'un antigène (composé X). Réaction de tv e "compétition": la première enzy- me (marqueur) est fixée sur de l'antigène X plus ou moins modifié mais gardant des sites actifs reconnaissables par l'anticorps Y fixé sur le support (au préalable ou au cours de la réaction - voir plus haut). L'antigène X marqué par l'enzyme est mis en compétition avec l'antigène X à doser présent dans le milieu réactionnel, pour occuper les sites actifs de l'anticorps Y sur le support. Réaction de type "sandwich": dans ce cas, la pre- mière enzyme (marqueur) est fixée sur un anticorps spécifi- que de l'antigène à doser, cet anticorps est le même que celui fixé sur le support, ou il est différent. L'antigène à doser forme un complexe immun avec d'une part l'anti- corps spécifique fixé sur le support et d'autre part l'anti- corps spécifique marqué par l'enzyme. Dans ce cas, la quan- tité d'enzyme ainsi fixée au voisinage du support, et par- tant la quantité de composé nucléotide intermédiaire formée et la quantité de lumière émise, sont en relation directe avec la concentration de l'antigène dans le Milieu réaction- nel. On peut donc parler ici de "dosage direct". Le composé nucléotide intermédiaire, appelé ci- après "composé intermédiaire", est formé directement ou in- directement par réaction de la "première enzyme" sur un substrat présent dans le milieu, de préférence en solution. On entend ici par "système de bioluminescence" un système qui comprend essentiellement au moins une enzyme, luciférase, d'origine biologique et est capable de produire une émission de lumière par action sur le composé intermé- diaire formé par la première enzyme. Ce système comprend également, si nécessaire, les constituants, composés chimi- ques ou enzymes, notamment, qui permettent de transformer le composé intermédiaire en substrat de la luciférase. La luciférase et les autres enzymes éventuelles du système de bioluminescence sont fixées sur le support. Les composés chimiques éventuellement nécessaires sont apportés, de préférence en solution, au cours de la mise en oeuvre du procédé. Dans ce procédé, le choix de la luciférase du sys- tème de bioluminescence détermine le choix de la ou des autre(s) enzyme(s) et de leurs substrats. Cette notion sera explicitée ci-après à l'aide d'exemples. Ainsi, la luciférase de luciole utilise en tant que nucléotide de 1'ATP pour émettre de la lumière, selon les réactions simplifiées: LH2 + ATP luciférase (E). E. LH2AMP + PP E. LH2AMP + 02 - E.P + CO2 + AMP + il faut donc dans ce cas que l'enzyme fixée au niveau du support par la réaction immunologique, en présence des substrats appropriés, produise de 1'ATP en tant que composé intermédiaire. Ainsi, par exemple, dans ce cas, la "première enzyme" peut être la pyruvate kinase et son substrat est 1'ADP. Par ailleurs, on a vu que les luciférases bactérien- nes utilisent du NADH et du FMN en présence d'une oxydo- réductase et d'un aldéhyde à longue chaîne. Ces luciférases peuvent également utiliser du NADPH. Lorsqu'on utilise une luciférase bactérienne, il faut donc disposer d'un système qui produise du FMN, ou, de préférence, du NADH ou du NADPH en tant que composé intermédiaire. Dans ce cas, la "première enzyme" peut, suivant une forme de mise en oeuvre de l'in- vention, être la glucose-6-phosphate deshydrogénase qui produit du NADH (ou du NADPH) à partir de glucose-6-phos- phate et de NAD+ (ou respectivement NADP+) en solution comme indiqué plus haut. Suivant une variante, la "première enzyme" peut être la malate déshydrogénase ayant pour sub- strats du malate et du NAD+ (ou NADP+). La réaction mise en jeu est alors: malate + NAD+ [ou NADP+] malate oxalacétate + deshydrogénasu NADH [ou NADPH] + H+. D'autres systèmes peuvent être imaginés par l'hom- me du métier sur la base de ses connaissances en la matière sans sortir du cadre de l'invention. En particulier, dans les cas indiqués plus haut, des systèmes plus complexes peuvent être imaginés pour produire le composé intermédiaire ATP, NADH ou NADPH. Dans tous les cas, les conditions du dosage (réactifs et proportions notamment) doivent être telles qu'une relation existe entre la quantité de composé intermédiaire formée et la quantité d'enzyme utilisée comme "marqueur" (première enzyme) fixée au niveau du sup- port par l'intermédiaire de la réaction immunologique. Le support peut être constitué de tout matériau qui n'absorbe pas, ou n'absorbe que très peu, la lumière et sur lequel il est possible de fixer, sans perte d'activité notable, la ou les enzyme(s) choisie(s) autre(s) que l'en- zyme servant de marqueur, et l'entité Y ou une entité Z capable de fixer ultérieurement, au moyen d'une réaction immunologique, l'entité Y. Il peut ainsi par exemple être constitué de cel- lulose, d'acrylamide, de résine acrylique, d'agarose, de dextrane. Ce support peut se présenter sous forme d'une surface sensiblement plane (film, paroi d'un tube par exem- ple) ou sous forme de microbilles ayant jusqu'à environ 1 mm, de préférence environ 200 p, de diamètre. Dans le cas o on utilise des microbilles, les différents éléments (enzyme(s) et entité Y ou Z) peuvent être fixés sur des microbilles différentes, à condition toutefois que ces différents éléments soient dans la proxi- mité immédiate les uns des autres grâce à un mélange intime. Dans ce cas, bien que cela ne présente pas a pri- ori un grand intérêt, on peut prévoir d'introduire les mi- crobilles portant la ou les enzyme(s) du système de biolu- minescence après avoir effectué la réaction immunologique et avant l'introduction des différents substrats. Les matériaux à base d'agarose modifiée, se pré- sentant sous-forme de microbilles, commercialisés sous la dénomination de Sépharose par la Société Pharmacia, consti- tuent des supports avantageux pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention. Quand tous les participants aux différentes réac- tions ont été ajoutés au milieu aqueux (leur ordre d'intro- duction dépend essentiellement des types de réactions enzy- matiques et immunologiques mises en jeu), on laisse reposer jusqu'à obtention d'un signal stable (en général un repos de 10 minutes environ suffit), puis on effectue la mesure de la lumière émise. Cette mesure peut être effectuée au moyen d'un luminomètre tel que, par exemple, celui commercialisé sous la dénomination LKB 1251 par la Société LKB. Le système d'étalonnage peut être, entre autres, une courbe d'étalonnage représentant les variations de l'in- tensité de la lumière émise ou d'une valeur qui en dérive, en fonction de la concentration en entité X. Une telle courbe peut être obtenue à partir de mesures avec des échantillons de concentration connue en entité X, effectuées dans des conditions similaires à celles du dosage. La première enzyme est fixée sur l'entité X ou Y selon des méthodes usuelles bien connues de l'homme du mé- tier. Plus de détails seront donnés à ce sujet dans les exemples qui suivent. Le composé intermédiaire produit au niveau du support à l'aide de la première enzyme alimente directement les réactions de bioluminescence. Le même composé produit dans la solution aqueuse par la même enzyme non liée au support est en général suffisamment éloigné de la ou des enzyme(s) du système de bioluminescence pour ne pas inter- férer avec le dosage, ou n'interférer que d'une façon négli- geable. Toutefois, selon un mode préféré de réalisation, on introduit dans le milieu un système.,de préférence enzymati- que soluble, capable de transformer le composé intermé- diaire présent dans la solution en un composé non suscep- tible de donner lieu à l'émission de photons en présence du système de bioluminescence, sans modifier de façon im- portante le composé intermédiaire formé au niveau du support. A titre illustratif, on peut indiquer par exemple que lors- que le composé intermédiaire est du NADH, on peut le réoxy- der dans la solution par un système enzymatique soluble tel que par exemple le système lactate deshydrogénase(LDH)-pyru- vate. La réaction qui intervient est la suivante: NADH + pyruvate LDH NAD + lactate. Selon un mode préféré de réalisation de l'in- vention, le composé nucléotide intermédiaire est choisi parmi l.'ATP, le NADH ou le NADPH. Selon un mode tout particulièrement préféré de réalisation de l'invention, - la luciférase utilisée est d'origine bactérienne, - le composé intermédiaire est du NADH et - la première enzymeest la glucose-6-phosphate- deshydrogénase. Selon un mode préféré de mise en oeuvre du procédé selon l'invention, pour le dosage d'un antigène ou d'un hap- tène, a) on fait incuber ensemble: - l'échantillon tI doser, - une solution de l'entité à doser marquée par la première enzyme, et - une solution d'anticorps spécifique de l'entité à doser; b) on laisse réagir; c) on ajoute une suspension de Sépharose portant un système permettant l'immobilisation de l'anticorps en solution et la ou les enzyme(s) du système de bioluminescence et un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti- y-globulines ou une protéine A; d) on laisse de nouveau réagir; e) on ajoute, en solution dans un tampon, les substrats d'enzymes autres que le composé intermédiaire et de préfé- rence les agents nécessaires à l'élimination eu composé intermédiaire en solution; f) on laisse reposer jusqu'à obtention d'un signal stable de bioluminescence, g) on effectue la lecture de bioluminescence et h) on détermine la concentration de l'entité à doser au moyen d'un système d'étalonnage. On entend ici par "anticorps universel" un sys- tème permettant de fixer ultérieurement l'anticorps dans le but d'adapter ensuite ce système au dosage envisagé. Ce sys- tème améliore en outre la reproductibilité du dosage. Il peut être avantageux d'utiliser,en tant qu'an- ticorps spécifique, un anticorps monoclonal. Selon un mode tout particulièrement préféré de mise en oeuvre du procédé selon l'invention,pour le dosage d'un antigène: a) on fait incuber ensemble: - l'échantillon à doser, - un anticorps spécifique de l'entité à doser, mar- qué par la première enzyme, - un support portant, immobilisés, un anticorps spécifique de l'entité à doser,de préférence différent du précédent, et la ou les enzyme(s) du système de biolumines- cence; b) on laisse incuber, c) on ajoute, en solution dans un tampon, les substrats d'enzymes autres que le composé intermédiaire et, de préfé- rence, les agents nécessaires à l'élimination du composé intermédiaire en solution; d) on laisse reposer jusqu'à obtention d'un signal stable de bioluminescence; e) on effectue la lecture de bioluminescence et f) on détermine la concentration de l'entité à doser au moyen d'un système d'étalonnage. Ce mode de réalisation de l'invention permet de réaliser un dosage très sensible car la relation entre la concentration de l'entité à doser et l'intensité lumineuse est pratiquement linéaire. De préférence, on utilise dans ce dosage deux anticorps différents, spécifiques de deux parties diffé- rentes de la molécule d'antigène. Il peut être dans certains cas avantageux que l'un des anticorps soit monoclonal, voire les deux. L'invention a également pour objet des réactifs pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention. Un tel réactif est caractérisé en ce qu'il se pré- sente sous la forme d'un solide, de préférence à l'état de microbilles de Sépharose, comportant, fixées à sa surface, une entité capable de former un complexe immunologique avec une autre entité et la ou les enzyme(s) d'un système de bioluminescence. Le solide peut être par exemple la paroi d'un tube dans lequel sera effectuée la réaction, ou une "languette" que l'on plonge dans la solution aqueuse o est effectué le dosage. De préférence cependant, il se présente sous forme de microbilles de Sépharose. Ces microbilles peuvent avantageusement être agglomérées sous forme de comprimé enrobé, délitable dans l'eau, ou de suspension dans l'eau. La fixation de l'entité capable de former un com- plexe immunologique avec une autre entité et des enzymes sur le support est de préférence effectuée de façon cova- lente, sur la base des connaissances usuelles de l'homme du métier en cette matière. Une description plus précise * d'une telle fixation est donnée dans les exemples qui sui- vent. - Selon un mode préféré de réalisation, l'entité ca- pable de former un complexe immunologique avec une autre entité est un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti-y-globulines ou une protéine A. Selon un mode tout particulièrement préféré de réalisation, l'invention fournit un réactif, caractérisé en ce qu'il est constitué de microbilles de Sépharose por- tant, fixés à leur surface sur les mêmes microbilles ou sur des microbilles différentes, un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti-y-globulines ou une pro- téine A, une luciférase d'origine bactérienne et une oxy- doréductase. Cette oxydoréductase est avantageusement la FMN oxydoréductase ou une diaphorase microbienne. Selon un autre mode tout particulièrement préféré de réalisation, l'invention fournit un réactif caractérisé en ce qu'il est constitué de microbilles de Sépharose por- tant, fixés à leur surface, sur les mêmes microbilles ou sur des microbilles différentes, un anticorps spécifique de l'antigène à doser, une luciférase d'origine bactérienne et une oxydoréductase. De plus, la présente demande vise un "nécessaire" ou "kit" pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention. Ce nécessaire comprend essentiellement: - le réactif selon l'invention décrit plus haut, à l'abri de la lumière, et - un flacon contenant l'entité à doser ou une entité spécifique de celle-ci, marquée par une enzyme. Selon un mode tout particulièrement préféré de réalisation, le nécessaire selon l'invention comprend: - ut flacon contenant, à l'abri de la lumière, d u Sépharose, en suspension dans l'eau, ou sous forme de comprimé délitable dans l'eau, muni à sa surface d'un "anticorps universel",d'une luciférase d'origine bactérienne etd'une oxydoréductase, - un flacon contenant un anticorps spécifique de l'antigène à doser, - un flacon contenant '1 antigène à doser marqué par une oxydoréductase, et - du tampon, du NAD ou du NADP, du FMN, un al- déhyde à longue chaîne, un système capable de détruire le NADH ou le NADPH en solution ainsi que le substrat de l'oxydoréductase servant de marqueur. Selon encore un autre mode tout particulièrement préféré de réalisation, le nécessaire selon l'invention com- prend: - un flacon contenant, à l'abri de la lumière, du Sépharose en suspension dans l'eau ou sous forme de com- primé délitable dans l'eau, muni à sa surface d'une entité spécifique de l'entité à doser, d'une luciférase d'origine bactérienne et d'une oxydoréductase, - un flacon contenant l'entité à doser ou une entité spécifique de l'entité à doser, marquée par une oxydoréductase, et - du tampon, du NAD ou du NADP, du FMN, un aldéhyde à longue chaine, un système capable de détruire le NADH ou le NADPH en solution, ainsi que le substrat de l'oxydoréductase servant de marqueur. D'autres caractéristiques de l'invention apparai- tront à la lecture des exemples qui suivent donnés à titre purement illustratif. EXEMPLE 1 Préparation du réactif selon l'invention Les enzymes du système de bioluminescence utilisées, luciférase et NADH [ou NADPH] réductase- FMN spécifique, appelée ci-après FMN oxydoréductase, d'origine bactérienne, sont préparées par culture de Beneckea Harveyi selon le procédé décrit par A.H.Farghaly dans J. Cell. Comp.Physiol.36, (1969), 165-184 et puri- fiées selon la méthode de A. Gunsalus-Miguel et coll. décrite dans J. Biol.Chem.247, (1972), 398-404, telle que modifiée par T.O. Baldwin et coll. dans J. Biol.Chem. 250, (1975), 2763-2768. On couple 5 g d'agarose modifiée se présentant sous forme de microbilles, commercialisée par la Société Pharmaci sous la dénomination Sépharose 4B, activée par le bromure de cyanogène avec 10 mg de luci- férase, 5 U.I. de FMN oxydoréductase et soit 5 mg de protéine A, soit 5 mg d'anticorps anti-y-globulines, soit encore la quantité d'anticorps spécifique de l'antigène ou du haptène à doser, ou de l'antigène correspondant à l'anticorps à doser, suffisante pour 1000 dosages. Par exemple, dans le cas du dosage de la progestérone,on fixe 1 ml d'anticorps anti-progestérone correspondant à la quantité commercialisée pour 1000 dosages. Apres réaction, la phase solide est lavée avec un tampon phosphate O,lM, pH6,8, contenant 10-3M de dithiothréitol(DTT) et 0,1% de NaN3. Ce réactif peut être conservé à l'abri de la lumière,en suspension dans l'eau ou sous forme de comprimé délitable dans l'eau. EXEMPLE 2 Préparation d'un haptène marqué par une enzyme: Couplage de la progestérone à la G-6-PDH. a. Principe De nombreux conjugués protéine-stéroide ont été synthétisés par réaction d'un stéroide alcoylant avec un résidu de cystéine. Cependant, la faible quantité de groupements SH dans la plupart des protéines présente un sérieux handicap pour le couplage. I.M. Klotz et coll (Arch.Biochem.Biophys. 96, (1962), 605-612) ont décrit une méthode pour augmenter le nombre de groupements sulfhydryle par l'intermédiaire de résidus lysine, c'est cette méthode qui est utilisée. De plus, une faible quantité d'haptène doit être liée à l'enzyme et l'activité enzymatique conservée. Généralement la modification de quelques groupements aminés des enzymes n'affecte pas leur activité spécifique. Enfin, pour augmenter la sensibilité du dosage, le bras reliant l'haptène à l'enzyme doit être différent de celui utilisé pour la préparation de l'immunogène (haptène fixé sur de la sérum albumine de bovins (BSA) par exemple) utilisé pour produire les anticorps spécifiques participant au dosage. b. Introduction de résidus thiol sur l'enzyme On incube pendant 1/2 h 1 mg de G-6-PDH dans 1 ml de tampon phosphate 0,05M,pH 7,2 dans 5.10 3M d'anhydride S-acétyl mercaptosuccinique (SAMSA) en présence de NADP 10- 5pour protéger l'activité enzy- matique. Le pH du milieu est suivi au cours de la réac- tion. La solution enzymatique est incubée pendant deux heures à 4 C en présence de 300 p1 de DTT 5.10 Met d'hydroxylamine 10 -1M, préparés avec du tampon phos- phate 0,05 M, pH 7,2. L'enzyme thiolée est déposée sur une colonne de support pour chromatographie commercialisé sous la dénomination de Séphadex G 25, équilibrée avec du tris, HC1 pH8 0,2M à 20% de glycérol pour éliminer l'excès de réactif et amener l'enzyme modifiée à pH = 8. Le nombre de groupements thiol libre est dé- terminé par la technique de G.L. Ellman et coll. (Arch. Biochem.Biophys. 82 (1959),70-77). Le 5,5'-dithiobis 2-nitrobenzoate (DTNB) réagit avec les groupements thiol de la G-6-PDHdans les conditions décrites ci-dessous. Le coefficient d'absorption molaire du chromophore est égal à 13600M/cm-1. Les mesures d'absorp- tion sont réalisées à 412 nm. Le dosage est réalisé sur 50l de solution enzymatique éluée du Séphadex G 25 dans 1 ml de tampon tris, HC1 0,2M pH 8.100 ulde DTNB(10-2M) sont ajoutés au mélange. L'absorbance de cette solution est déterminée à 412 nm contre un tampon tris, HCl 0,2 M pH 8, en présence du réactif d'ELLMAN. c. Couplage de la G-6-PDH avecdu ll_-bromoacétate de progestérone A sa sortie de la colonne de Séphadex G 25, la G-6-PDH thiolée est immédiatement couplée au Iliu-bromoacétate de progestérone (10-4 M) préparé par couplage de la 11lo-hydroxyprogestérone avec l'acide bromoacétique activé par un carbodiimide. Cette étape doit être effectuée sans attendre pour éviter l'oxydation des groupements SH. La réaction dure une nuit. Tout le stéroide non lié est éliminé par passage de la solution enzymatique sur une colonne de Séphadex G 25. EXEMPLE 3 Préparation d'un anticorps marqué par une enzyme: couplage d'un anticorps avec la G-6-PDH - a. Principe_ Le couplage entre ces deux protéines est réalisé selon la méthode de M.J. O'Sullivan et coll. (Analytical Biochemistry, 100 (1979), 100-108) en utilisant un réactif bifonctionnel, l'ester Nhydroxysuccinimide de l'acide méta maléimido benzoïque (MBS) b. Traitement des anticorps par le MBS Le MBS est dissous dans le diméthylformamide (2 mg/ml), 200 P1 de cette solution sont ajoutés à 1,5 mg d'anticorps en solution dans 1,5 ml de tampon phosphate, pH 7,2 et incubés 1 heure à 28 C puis filtrés sur colonne de Séphadex G-25. c. Couplage de l'anticorps avec la glucose-6- phosphate deshydrogénase - La deshydrogénase enrichie en groupements SH selon la méthode indiquée à l'exemple 2 (2mg) est incubée pendant 2 heures à pH 7 avec les anticorps traités par le MBS. Après incubation, les différents conjugués sont séparés par chromatographie sur Ultrogel ACA34 (produit commercial de la Société IBF). EXEMPLE 4 Préparation d'un antigène marqué par une enzyme. 3d Le couplage entre ces deux substances protéiques est réalisé selon la méthode décrite à l'exemple 3. EXEMPLE 5 Dosage d'un antigène ou d'un haptène par compétition - Le milieu d'incubation est composé de: - 100 pl d'échantillon à doser, 100 "1 de solution de l'antigène ou du haptène à doser marqué par la G-6PDH (0,06 mU.I.) et - 100 pl de solution d'anticorps spécifiques de l'antigène ou respectivement du haptène à doser, permettant de lier environ 50% de l'entité marquée. Après 15 minutes de réaction, 100 à 500 pi d'une suspension de réactif préparé à l'exemple 1, muni d'un "anticorps universel", sont ajoutés et la réaction est poursuivie pendant encore 15 minutes. La lecture de bio- luminescence est réalisée sur un luminomètre du type de celui commercialisé sous la dénomination LKB 1251, 10 minu- tes après addition de 1 ml de tampon phosphate 0,1 M, à pH 7,contenant 10 5Mde FMN, 5.10-5M de décanal, 2.10-3M de glucose-6-phosphate, 10 3M de NAD, 10 3M de pyruvate et 10 m U.I. de lactate deshydrogénase. Les réactions mises en jeu sont: dans la solution A-:- Dn' AG + Ac > Ac AG-s D'H Ac--As GLUCOSE 6 P NAD LAC-A Ac- VH LDI GLUCONOLACTONE I'ADH PYRLVATE 6P au niveau du support: G UCONOLACTONE N.ASD FMIN RCOOrH hv ri Li / 10 GLUCosE 6 P G A ' AD FMNH2 RCHO ''.. *'SEPHAROSE B * *. ... v Ac.-- DH =ANTIGENE MARQUE PAR LA GLUCOSE 6 P DESHYDROGENASE OR = NlT-lMN OXYDOREDUCTASE LU = LUCIFERASE LDH = LACTATE DESHYDROGENASE Ac = ANTICORPS SPECIFIQUE RCH'O DECANAL - Application au dosage de la progestérone - Resultats- Dans ce cas, l'échantillon est, par exemple, un extrait de plasma ou de la salive. L'étude est effectuée avec le réactif selon l'exemple 1 portant des anti-y-globulines de lapin. Le signal obtenu augmente rapidement en fonction du temps après addition du réactif, puis se stabilise. La concentration du marqueur G-6-PDH au niveau du gel d'aga- rose par l'addition d'un anticorps spécifique, conduit à une augmentation importante du signal lumineux: le signal est augmenté de 20 fois, mais, dans ce cas, seulement 20% de l'activité enzymatique sont liés par l'anticorps; le facteur d'amplification de luminescence obtenu est donc'de: 20/0,2 = 100. Lorsqu'on ajoute au tampon de la lactico-deshy- drogènase qui, en présence de pyruvate,détruit le NADH formé par la G-6PDH en solution, on obtient un signal Stable pendant plusieurs heures du fait que les deux réactions d'oxydation et de réduction du NAD s'équilibrent rapi- dement en-solution, évitant une augmentation de la quan- tité de NADH. Avantageusement, la lactico-deshydrogénase est présente dans le milieu en large excès. Le tableau I montre les résultats obtenus pour différentes quantités de réactif selon l'exemple 1: à partir de 6mg, le signal maximum est atteint. TABLEAU I Quantité de Sépha- Luminescence Luminescence rose portant Ac.L.R. maximale minimale (NS) (mg de gel essoré) (pas de compéti- (pas d'anti- tion) (mV) corps spécifi- ques)(mV) 12,5 5700 470 6,25 5624 250 2,5 4443 160 1,25 3335 80 Ac: anticorps L: luciférase R: réductase NS: non significatif. Dans le cadre de cet exemple, on obtient une bonne reproductibilité avec une quantité de gel essoré comprise entre 6 et 12,5 mg environ. On peut tracer une courbe d'étalonnage représentant les variations du rapport B/Bo (B: bioluminescence obtenue en présence de proges- térone; Bo: bioluminescence maximale en l'absence de progestérone)en fonction de la concentration en progesterone et déterminer au moyen de cette courbe une concentration inconnue en progestérone à partir de la mesure de B. Les variations sont inférieures à 10% (repro- ductibilité de la méthode supérieure à 10%). Les extraits de sérum à l'éther ne présentent pas d'interférences avec la réaction de bioluminescence. En effet, en examinant le tableau II suivant on constate que les résultats obtenus pour le dosage de la progestérone dans des extraits éthérés de sérum sont indépendants du volume de l'échantillon. TABLEAU II Volume de Dosage sur extrait éthéré l'échantillon (Pl) (ng/ml) 10... 4,20 0,36 20... 4,1 O... 0,4 50... 4,3 (... 0,38 De plus, en raison de sa grande sensibilité, le dosage peut être réalisé directement, sans extraction, sur 10 à 20 >ul de sérum préalablement inactivé par la chaleur, en présence de 20% d'alcool. Le tableau III montre la reproductibilité des résultats dans cette gamme de volumes. Volume de Dosage sur sérum complet, l'échantillon inactivé par la chaleur (ul) (ng/ml) 10... 4,1 .0,3 4 ?... 0,36 EXEMPLE 6 Dosage d'une protéine par la méthode "sandwich" ou "dosage direct' Le milieu d'incubation est composé de: - 100 pl d'échantillon à doser, pl d'anticorps spécifique de la protéine à doser, marqué par la G-6-PDH, 100 à 500 pl de réactif selon l'exemple 1 portant un anticorps spécifique de la protéine à doser. De préférence, l'anticorps marqué par la G-6-PDH et l'anticorps fixé sur le support reconnaissent des parties différentes de la protéine. Il peut être avantageux que l'un au moins d'entre eux, sinon les deux, soit monoclonal. Après 1 à 2 heures d'incubation, on ajoute 1 ml de tampon phospnate 0,1 M, pH 7, contenant 5M de FMN, 5.10-5 M de décanal, 2.10 -3M de glucose-6phosphate, 10 3M de NAD, 10-3M de pyruvate et mI.U. de lactate deshydrogénase. On laisse reposer 10 minutes et on:lit la luminescence. APPLICATIONS DE L'EXEMPLE 6 a) Dosage de la gonadotrophine chorionique La bioluminescence lue (en mV) varie de façon linéaire en fonction de la quantité de l'hormone dans l'essai (exprimée en mU.I.) jusqu'à 10 mU.I. La limite de sensibilité est de 0,5 mU.I. b) Dosage des 7-globulines de souris: On procède comme indiqué plus haut en utilisant des anticorps anti-y-globulines et en laissant incuber deux heures. On établit une gamme pour des concentrations en T-globulines allant de 5 pM à 100 pM. La luminescence lue varie de 450 mV à 3000 mV, d'une façon linéaire en fonction de la concentration en y-globulines. EN CONCLUSION: Alors que les méthodes de dosage immunoenzymati- ques habituelles sont moins sensibles que les dosages radioimmunologiques, le procédé de dosage immunoenzymati- que selon l'invention est 10 à 50 fois plus sensible, au niveau de la détection, que les méthodes radioimmunologi- ques. Le seul facteur limitant semble être la spécificité de l'entité Y; le recours à des anticorps monoclonaux peut permettre de repousser encore la limite de sensibi- lité. De plus, contrairement aux méthodes décrites jus- qu'à présent, cette technique permet d'obtenir un signal stable pendant plusieurs heures, tout en évitant toute étape de séparation telle que centrifugation et lavage, ce qui permet de faciliter le dosage et d'améliorer la reproductibilité. REVENDICATIONS 1. Procédé pour le dosage immunoenzymatique, dans un milieu aqueux, d'une entité X capable de former un com- plexe immunologique avec une entité Y, spécifique de l'en- tité X, selon lequel on effectue la concentration d'au moins deux enzymes au niveau d'un support au moyen d'une réaction immunologique à laquelle participent les entités X et Y, ce grâce à quoi un composé intermédiaire est formé au niveau du support par une première enzyme et selon le- quel ce composé intermédiaire sert de substrat à une deu- xième enzyme pour donner un autre composé qui, directement ou indirectement, produit au niveau du support un phénomène mesurable, dans des conditions telles qu'une relation puisse être établie entre le résultat de la mesure de ce phénomène et la concentration de l'entité X, caractérisé en ce qu'il comprend essentiellement les étapes consistant à a) amener une première enzyme, en tant que mar- queur de l'entité X ou de l'entité Y, au moyen d'une réac- tion immunologique de type "compétition" ou "sandwich" entre les entités X et Y, au niveau du support sur lequel est fixée, de façon préalable ou concomitante, l'entité Y, pour y produire un composé nucléotide intermédiaire suscep- tible de subir, au contact des composants d'un système de bioluminescence comportant une ou plusieurs enzymes égale- ment fixées sur le support, une transformation conduisant à l'émission de lumière, dans des conditions telles qu'une relation puisse être établie entre la lumière émise et la concentration de l'entité X dans le milieu aqueux, b) laisser reposer jusqu'à l'obtention d'un signal stable, c) mesurer la lumière émise et d) à partir de la mesure effectuée, déterminer la concentration de l'entité X dans le milieu aqueux ou l'é- chantillon étudié, à l'aide d'un système d'étalonnage. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'on ajoute au milieu un système, de préférence enzy- matique soluble, capable de transformer le composé nucléotide inte=rmédialre présent dans la solution en un composé non susceptible de donner lieu à l'émission de photons en présence du système de bioluminescence, sans modifier de façon importante le com- posé nucléotide intermédiaire formé au niveau du support. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caracté- risé en ce que le composé nucléotide intermédiaire est choisi o10 parmi l'ATP, le NADH ou le NADPH. 4. Procédé selon la revendication 3, caracté- risé en ce que: - la luciférase utilisée est d'origine bactérienne, - le composé intermédiaire est du NADH et - la première enzyme est la glucose-6-phosphate- déshydrogénase. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que pour le dosage d'un antigène ou d'un haptène: a) on fait incuber ensemble: - l'échantillon à doser, - une solution de l'entité à doser marquée par la première enzyme, et - une solution d'anticorps spécifique de l'entité à doser, b) on laisse réagir, c) on ajoute une suspension de Sépharose portant un système permettant l'immobilisation de l'anticorps en solution et la ou les enzyme(s) du système de bioluminescence et un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti-y- globulines ou une protéine A, d) on laisse de nouveau réagir, e) on ajoute, en solution dans un tampon, les substrats d'enzymes autres que le composé intermédiaire et de préfé- rence les agents nécessaires à l'élimination du composé intermédiaire en solution, f) on laisse reposer jusqu'à obtention d'un signal stable de bioluminescence, g) on effectue la lecture de bioluminescence et h) on détermine la concentration de l'entité à doser au moyen d'un système d'étalonnage. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que pour le dosage d'un antigène: a) on fait incuber ensemble: - l'échantillon à doser, - un anticorps spécifique de l'entité à doser, marqué par la première enzyme, - - un support portant, immobilisés, un anticorps spécifique de l'entité à doser, de préférence différent du précédent, et la ou les enzyme(s) du système de biolumines- cence, b) on laisse incuber, c) on ajoute, en solution dans un tampon, les substrats d'enzymes autres que le composé intermédiaire et, de pré- férence, les agents nécessaires à l'élimination du composé intermédiaire en solution, d) on laisse reposer jusqu'à obtention d'un signal stable de bioluminescence, e) on effectue la lecture de bioluminescence et f) on détermine la concentration de l'entité à doser au moyen d'un système d'étalonnage. 7. Réactif pour la mise en oeuvre du procédé se- lon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme d'un solide, de préférence à l'état de microbilles de Sépharose, comportant, fixées à sa surface, une entité capable de former un complexe immu- nologique avec une autre entité et la ou les enzyme(s) d'un système de bioluminescence. 8. Réactif selon la revendication 7, caractérisé en ce que l'entité capable de former un complexe immunolo- gique avec une autre entité est un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti-y-globulines ou une pro- téine A. 9. Réactif selon la revendication 7 ou 8, caracté- risé en ce qu'il est constitué de microbilles de Sépharose portant,fixés à leur surface sur les mêmes microbilles ou sur des microbilles différentes, un "anticorps universel", de préférence un anticorps anti-y-globulines ou une pro- téine A, une luciférase d'origine bactérienne et une oxydo- réductase. 10. Réactif selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est constitué de microbilles de Sépharose por- tant, fixés à leur surface, sur les mêmes microbilles ou sur des microbilles différentes, un anticorps spécifique- de l'antigène à doser, une luciférase d'origine bactérienne et une oxydoréductase. 11. Nécessaire pour la mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 1 à 6, comprenant: - le réactif selon l'une des revendications 7 à 10, et - un flacon contenant l'entité à doser ou une entité spécifique de celle-ci, marquée par une enzyme. 12. Nécessaire pour la mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 1 à 4 ou 6, caractérisé en ce qu'il comprend: - un flacon contenant, à l'abri de la lumière, d u Sépharose, en suspension dans l'eau ou sous forme de comprimé délitabledans l'eau, muni à sa surface d'un "anticorps universel",dune luciférase d'origine bactérienne et d'lu oxydoréductase, - un flacon contenant un anticorps spécifique de l'antigène à doser, - un flacon contenant l'antigène à doser marqué par une oxydoréductase, et - du tampon, du NAD ou du NADP, du FMN, un ai- déhyde à longue chaîne, un système capable de détruire le NADH ou le NADPH en solution ainsi que le substrat de l'oxydoréductase servant de marqueur. 13. Nécessaire pour la mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il comprend: - un flacon contenant, à l'abri de la lumière, du Sépharose en suspension dans l'eau ou sous forme de com- primé délitable dans l'eau, muni à sa surface d'une entité spécifique de l'entité à doser, d'une luciférase d'origine bactérienne et d'une oxydoréductase, - un flacon contenant l'entité à doser ou une entité spécifique de l'entité à doser, marquée par une oxydoréductase et - du tampon, du NAD ou du NADP, du FMN, un aldé- hyde à longue chaîne, un système capable de détruire le NADH ou le NADPH en solution, ainsi que le substrat de l'oxydoréductase servant de marqueur.