Brevet FR2556219A1 — publié le 19850614

La présente invention a pour objet un nouveau médica- ment immunomodulateur, à base de fragments Fc d'immunoglo- bulines G humaines. Ce médicament est utilisable notamment dans le traitement de dysfonctions immunitaires, y compris dans le traitement de maladies auto-immunes, et aussi comme agent inhibiteur de l'immunité de greffe. dans le traitement des malades devant subir ou ayant déjà subi une transplan- tation d'organe. On sait que la pratique des greffes d'organes, notam- ment de reins et de moelle, est actuellement largement répandue. Malgré les progrès dans la connaissance du système d'histocompatibilité majeure, on sait qu'il est toujours nécessaire de provoquer artificiellement une inhibition de l'immunité pour éviter la réaction de rejet par laquelle l'organisme cherche à détruire les cellules étrangères de l'organe greffé. Pour obtenir une telle inhibition des défenses immuno- logiques, on utilise généralement en association, diverses méthodes fondées notamment sur l'emploi de l'irradiation complète, des chimiothérapies (agents alkylants, analogues de bases puriques), de certains antibiotiques, et du sérum antilymphocytaire. Il est bien connu que ces méthodes d'inhibition de l'immunité présentent toutes divers inconvénients; en particulier, elles paralysent non seulement les défenses naturelles de l'organisme contre la greffe, mais aussi les défenses naturelles contre les agents infectieux tels que les virus ou les microbes. Les malades se trouvent donc désarmés devant les infections, et des précautions très contraignantes doivent être prises pour les éviter. La présente invention a pour objet un médicament qui inhibe les réactions de défense immunologique contre l'organe greffé et qui n'inhibe pas, et même au contraire augmente, les réactions de défense de l'immunité humorale dont on sait qu'elles jouent un rôle essentiel dans la lutte contre les infections. Le principe actif du médicament de l'invention est constitué par le fragment Fc des immunoglobulines G humaines, ou ses analogues. On sait que les immunoglobulines (en abrégé = Ig) sont des protéines qui ont été réparties selon divers critères en plusieurs classes: IgG, IgM, IgA, IgD et IgE. Les IgG, qui sont des immunoglobulines majoritaires du sérum, ont, comme les autres immunoglobulines, une structure multicaténaire, et diverses réactions de clivage, notamment enzymatique, ont permis d'isoler divers fragments de cette protéine. C'est ainsi que par hydrolyse avec la papaïne ou la plasmine, la molécule d'IgG donne trois fragments: deux fragments possédant chacun un site anticorps, appelés fragments Fab, et un fragment n'ayant pas de site anticorps, mais ayant diverses fonctions effectrices, appelé fragment Fc. Les méthodes d'obtention du fragment Fc ou de fragments analogues par clivage enzymatique avec la papaine, la plasmine,... sont bien connues et sont décrites par exemple par R.R. PORTER, Biochem. J. 73, p. 119 (1959). Sauf indication contraire, dans ce qui suit, l'expres- sion "fragment Fc" sans autre précision désigne des fragments Fc d'IgG humaines. Les propriétés pharmacologiques des fragments Fc, et leur rôle dans les divers mécanismes de défense immunitaire, étaient encore mal connus jusqu'à présent. Leur étude sur un modèle animal ne permet pas de tirer des conclusions sur l'activité chez d'autres espèces, car il est connu, d'une part, que les immunoglobulines, et notamment IgG, diffèrent selon les espèces, et d'autre part, qu'une immunoglobuline donnée à des actions différentes sur la réponse immunitaire de diverses espèces. Diverses publications ont signalé que les fragments Fc d'immunoglobulines diverses ont une action stimulante sur la réponse proliférative et l'activation polyclonale des lymphocytes murins et humains, en l'absence ou en présence d'antigène. Par contre, sur les lymphocytes de souris, le fragment Fc d'immunoglobulines de chèvre n'a qu'un effet mitogène faible et le fragment Fc des immuno- globulines de lapin ou d'oie n'a aucune action stimulante, quelle que soit la dose; voir par exemple M.A. BERMAN et al, The Journal of Experimental Medicine, 146,pp. 241-256 (1977) et The Journal of Immunology, 122, 89-96 (1979). On sait également que le fragment Fc de myélome humain provoque une augmentation de la prolifération des lymphocytes de la souris dans la réaction lymphocytaire mixte; voir par exemple E.L. MORGAN et al. J. Exp. Med., 153, pp. 1161-1172 (1981). On sait aussi que les fragments Fc et des IgG humaines (de même que les IgG intactes) ont un effet inhibiteur de la cytotoxicité à médiation cellulaire dépendant des anti- corps (ADCC); voir par exemple WislOff et al. Scand. J. of Immunol., 3, pp. 29-38 (1974). On sait enfin que les cellules NK ("natural killer") humaines, qui interviennent dans certaines réactions immu- nitaires, portent des récepteurs pour le fragment Fc des IgC, mais que l'activité cytotoxique des cellules NK n'est pas en rapport avec ce récepteur; voir M.E. Neville, Journal of Immunol., 125, p. 2604 (1980). Compte tenu de la complexité du système de défense immunitaire, et compte tenu de la multiplicité des phéno- menes de régulation de l'immunité, il faut considérer, à la lumière des connaissances actuelles dans le domaine de l'immunologie, que l'utilisation d'un produit actif comme médicament immuno-modulateur ne peut être envisagée qu'après exploration de l'ensemble des activités du produit actif sur les diverses réactions immunitaires humorales et cellulaires, et en particulier sur l'activation ou 25562l l'inhibition des cellules cytotoxiques et suppressives. Cette exploration doit en outre être nécessairement conduite sur un modèle isologue, sans lequel il est absolument impossible d'envisager la moindre activité comme médicament, pour les raisons qui ont été évoquées ci-dessus. On a maintenant découvert, par l'étude des propriétés du fragment Fc des IgG humaines sur un modèle isologue, des propriétés pharmacologiques intéressantes qui permettent de préconiser l'utilisation de ce fragment comme médicament immunomodulateur permettant notamment de traiter les maladies auto-immunes et permettant aussi d'éviter les réactions de rejet des greffes d'organes, ou d'en diminuer les effets. Les fragments Fc des IgG humaines, stimulants de la réponse proliférative lymphocytaire, n'ont pas d'action sur la réaction allogénique primaire. Par contre, les fragments FaB et les IgC intactes ont une action inhibitrice sur la réaction allogénique primaire et n'ont pas d'action sur la réponse proliférative. Le fragment Fc des IgG humaines, tout comme le fragment Fab et l'IgC intacte, n'a ni action stimulante ni action inhibitrice sur la réponse lymphocytaire en présence d'antigène. Les fragments Fc des IgG humaines n'ont pas d'action inhibitrice ni stimulatrice du phénomène de génération de cellules cytotoxiques dans la réaction lymphocytaire mixte primaire (CML I). Toutefois,on a découvert que les fragments Fc ont une activité inhibitrice de la cytotoxicité dans la réaction lymphocytaire mixte secondaire (CML II), comme l'IgG intacte et le fragment Fab. La découverte de cette dernière propriété a conduit à étudier l'influence éventuelle du fragment Fc sur la stimulation ou la prolifération de cellules suppressives, et les études reproduites ci-après dans la partie favorisant le développement des lymphocytes suppresseurs ainsi qu'une activité adjuvante de la stimulation des cellules pré- suppressives. Enfin, l'étude de l'influence des fragments Fc sur la production des immunoglobulines totales dans une réaction de type mitogénique a permis de montrer une augmentation de la production des immunoglobulines totales, alors que le Fab est inactif et que les IqG intactes conduisent au contraire à une inhibition de la production des immuno- globulines totales; voir A. Durandy et al, J. Clin. Invest., 67, pp. 867-877 (Mars 1981). Il convient de noter que dans l'inhibition de l'acti- vité cytotoxique anticorps - dépendance (ADCC) et dans la différenciation des cellules suppressives, on observe un effet proportionnel à la dose de produit étudié. Cela permet de penser que le fragment Fc agit directement sur certaines sous-populations lymphocytaires T. Ces diverses propriétés des fragments Fc des IgG humaines permettent donc de les utiliser comme des médica- ments immunomodulateurs qui inhibent l'immunité cellulaire tout en favorisant l'immunité humorale, et qui sont donc avantageusement utilisables dans le traitement des malades recevant des greffes d'organes ou souffrant de dysfonctions immunitaires, et notamment de maladies auto-immunes. Le médicament de l'invention est caractérisé par le fait que son principe actif est constitué par des fragments Fc d'IgG intactes et/ou de fragments Fab ou qu'il n'en contient pas plus de 2 % en poids, et en particulier pas plus de 1 % en poids, par rapport au poids total (Fc+Fab+IgG). Dans la présente demande on désigne par l'expression "analogues des fragments Fc d'IgG humaines" tous fragments ou sous-fragments de Fc, et tous peptides synthétiques ou semi-synthétiques contenant des séquences peptidiques présentes sur le fragment Fc, ainsi que tous dérivés de ces fragments, sous-fragments ou peptides, à condition que ces fragments, sous-fragments, peptides ou dérivés satis- fassent aux conditions suivantes: - ils ont des propriétés d'activateurs de la diffé- renciation des cellules suppressives; - ils ont des propriétés d'inhibiteurs de la cyto- toxicité anticorps-dépendante; - ils n'ont pas de propriétés d'activateurs des cel- lules NK. Le médicament de l'invention peut être administré par voie orale, intraveineuse ou intramusculaires. A cet effet, il est présenté notamment sous la forme de capsules, de gélules, de dragées, de solutions injectables ou de poudre lyophilisée pour solutions injectables. Pour l'administration par voie orale, la forme phar- maceutique doit comporter un enrobage acido-résistant permettant le passage de la barrière stomacale. Dans le cas d'une transplantation d'organe, l'adminis- tration du médicament de l'invention peut être effectuée selon des modalités diverses en fonction des techniques de dépression immunitaire utilisées par le médecin avant et après la greffe. Le médicament de l'invention peut être administré avant la transplantation d'organe pour provoquer la dépression de l'immunité de greffe, ou après la transplan- tation, en relais ou avec d'autres médications suppressives de l'immunité, il faut tenir compte du fait qu'avec le médicament de l'invention, l'effet immunomodulateur n'est obtenu généralement qu'au bout de 6 à 10 jours. La posologie dépend notamment du mode d'administration et de la phase du traitement. Elle varie généralement de 1 mg à 10 g de principe actif par jour chez l'adulte. Par exemple, par voie intraveineuse, pour le fragment Fc, elle peut varier de 1 g à 10 g par jour chez l'adulte. L'invention a également pour objet l'utilisation du fragment Fc des IgG humaines ou de ses analogues, dans la préparation d'un médicament immunomodulateur capable >5S6219; notamment de traiter les maladies auto-immunes et de prévenir les réactions de rejet, ou d'en diminuer les effets, chez les-malades devant subir ou ayant subi une greffe d'organe; cette utilisation comprend notamment la mise sous une forme pharmaceutiquement convenable, selon les méthodes usuelles. Bien entendu, le médicament de l'invention peut être utilisé en association avec d'autres médicaments immuno- dépresseurs ou corticoïdes. Les exemples suivants illustrent l'invention sans tou- tefois la limiter. Dans ces exemples, on a utilisé les diverses abrévia- tions suivantes: - ADCC: Cytotoxicité à médiation cellulaire dépendant des anticorps; - BSA: Sérum albumine bovine; - CML: Cytotoxicité à médiation lymphocytaire; - F(ab')2:Fragment obtenu par clivage des IgG avec la pepsine; - GRP: Globules rouges de poulet; - Haplotype DR: Déterminant "D-related" du système HLA; - HLA Dr, HLA A, B,HLA D: Déterminants antigéniques du système d'histocompatibilité leucocytaire humain; - Ig: Immunoglobuline; - MLR: Réaction lymphocytaire mixte; - PBS: Solution de tampon phosphate; - PHA-M; Phytohémagglutinine - M; - PWM (pokeweed mitogen): Mitogène de phytolaque - SVF: Sérum de veau foetal; - SrAB: Sérum AB. EXEMPLE 1: ETUDE DES PROPRIETES PHARMACOLOGIQUES DU FRAGMENT Fc DES IMMUNOGLOBULINES HUMAINES I - ETUDE DE LA PROLIFERATION LYMPHOCYTAIRE Recherche d'une activité proliférative lymphocytaire des fragments Fc et Fab des IgG et de l'IgG. Z5562 194 MATERIEL ET METHODE 1. Préparation des différentes populations lymphocy- taires a. Obtention des lymphocytes Les lymphocytes de sang veineux périphérique de 60 donneurs volontaires de sang ont été séparés sur un gradient de Ficoll-radioselectan (d: 1077) suivant la technique de B5yum A. (Scand. J. Clin. Lab. Invest. Suppl. 97, 1968, 21, P. 1). b. Obtention d'une population lym _ ire enrichie enrnacrophages la séparation des monocytes d'une population lympho- cytaire précédemment obtenue a été effectuée sur un gradient de Percoll (d: 1064) suivant la technique d'Ulmer and Flad (J. Immunol. Methods, 1979, 30 p. 1). c. Obtention des lymphocytes déplétés en cellules adhérentes La population de lymphocytes obtenues précédemment (a) a été incubée pendant 1 heure à 37 C dans un flacon (type Falcon); des cellules non adhérentes ont été récupérées. Ces trois types (a, b, c) de populations cellulaires ont été conservés à - 260 C et décongelés au moment du test. d. Réaction de _peroxydas Le pourcentage des monocytes dans chaque population lymphocytaire a été déterminé par la réaction de peroxydase canobinée d'après SATO (Traite de biologie appliquée, 1964, vol. 3, p.95) sur une numération totale de 400 cellules par frottis pour chaque individu. 2. Fragments Fc-Fab et IcG Les préparations des différents sous-fragments ont été effectuées selon les méthodes connues au départ d'une IgG humaine plasmatique traitée à la plasmine. Les IgG (PRG) sont de type yl (30 %) et y2 (70 %). Le Fab présente une contamination de 4,1 % de Fc, par contre le Fc est pur. 3. Mise en culture a. Le test de transformation lymphocytaire a été réalisé sur des microplaques à fond rond (96 godets par plaque) avec du RPMI additionné de 20 % de sérum autologue décomplémenté. Dans chaque godet sont réparties 200.000 cellules sous pml de RMPI 20 % de sérum autologue et 50 p1 de Fc ou Fab ou IgC ou PWM (Gibco), dilués en RPMI. Chaque dilution de chaque fragment a été testée par triplicate. b. Incubation: Les plaques ont été incubées 6 jours dans une étuve à 37 C, saturée d'humidité, sous une atmos- phère de 5 % CO2 pour 95 % d'air. c. Marquage à la thymidine tritiée: à la 144ème heure, on a ajouté dans chaque puits 1 microcurie de thymidine tritiée. L'arrêt de l'incorporation se fait après 16 heures à 18 heures par refroidissement à + 4 C. d. Précipitation: Les cellules ont été recueillies par précipitation sur skatron et comptées à l'aide d'une solu- tion scintillante dans un compteur Béta. RESULTATS Sur 60 individus testés, 43,4 % ont été des hauts répondeurs ( > 10.000 cpm), 18,3 % des bas répondeurs ( ( Le critère de haut ou de bas répondeur a été établi suivant la réponse proliférative pour la culture cellulaire avec le frafgment Fc (Tableau 1). Le pourcentage de cellules peroxydase positive a été dans les trois groupes de 32 %. Par contre, dans la popula- tion de lymphocytes déplétés en cellules adhérentes, il était de 1 à 2 %. Les fragments Fc, Fab et l'IgG ont été testés à 6,12 et 24 pg par culture; 50 et 100 Ug ne donnent pas de diffé- rences significatives avec le groupe précédent (D - N - S). Les résultats sont résumés dans le tableau 1. CONCLUSIONS Ces essais mettent en évidence l'action stimulante du fragment Fc dans la réponse proliférative lymphocytaire, en comparaison au fragment Fab ou à l'IgG entière, ainsi que la présence indispensable des macrophages nécessaire pour cette activité. Ces résultats sont à rapprocher des travaux réalisés par Weigle sur les lymphocytes de souris (J. Exp. Med. 1977, 146, p. 241) o la réponse proliférative maximale est à 5 jours et à 10 pg par culture. De même, la dêplétion en cellules adhérentes entraîne une absence de réponse proli- férative des lymphocytes de souris (J.Exp. Med. 1979, 150, p. 256). II. ETUDE DE LA PROLIFERATION LYMPHOCYTAIRE ALLOGE- NIQUE Recherche d'une activité adjuvante ou inhibitrice des fragments FcFab et de l'IgG des IgG dans la réponse proliférative allogénique primaire. Matériel et méthode Les techniques de séparation des lymphocytes, des monocytes et d'obtention des différents fragments ont été décrites ci-dessus. - Obtention des _ hces T La séparation des lymphocytes T a été effectuée sur une colonne de laine de nylon (d'après la technique de JULIUS M. et al., Eur. J. Immunol., 1973, 3, p. 645). millions de lymphocytes ont été incubés pendant 30 mm à 37 C avec 0,6 g de laine de nylon dans une seringue de 10 ml. Les cellules non adhérentes ont été récupérées. Des contrôles de coloration de peroxydases et rosettes E ont été faits pour bien confirmer l'enrichissement en lympho- cytes T. Ces cellules ont été utilisées comme cellules répon- dantes de la culture mixte. - Récupération des surnaqeants de cultures de lym phocytesenprésence des différents fragments de l'Ig, (Vol. 128, p. 590) Suivant la technique de Marylin THOMAN (J. Immunol., 1982) des lymphocytes enrichis en monocytes (1 x 106/ml) ont été incubés pendant 24 h à 37 C en milieu RPMI 1640 % SrAB avec 60 pg de Fc, Fab ou Ig. Après 24 heures, les surnageants ont été récupérés par centri- fugation. - Culture mixte de lymnhocytes Les cellules répondantes (cellules non adhérentes) ont été dénombrées et ajustées à la concentration de 1 x 106/ml. Les cellules stimulantes (population lympho- cytaire totale ou lymphocytes enrichis en monocytes) ont été traitées avec 25 pg de mitomycine C par ml et par million de cellules (d'après la technique de BACH, Science, 1966, Vol. 153, p. 545) pendant 30 mm à 37 C. Après traitement, les cellules ont été lavées deux fois avec RPMI 10 % SrAB. La suspension cellulaire a été ajustée à différentes concentrations: 1 x 106/ml, 12 x 104/ml, 6 x 104/ml et 3 x 104/ml. La distribution de celulles stimulantes et répondantes a été faite dans des microplaques à fond conique à l'aide d'une seringue Hamilton, à raison de: 0,05 ml de cellules répondantes, 0,05 ml de cellules stimulantes, 0,05 ml de RPMI, 20 % SrAB. Les microplaques ont été incubées 5 jours à l'étuve à 37 C - 5% C02. A la 96ème heure, on a ajouté 2 pCu de thymi- dine tritiée par godet pendant 18 heures. Les cultures ont été recueillies par précipitation sur des filtres FLOW à l'aide d'un microprécipitateur Skatron. Chaque filtre après séchage a été placé dans un tube plastique; 3 ml de solution scintillante ont été ajoutés dans chaque tube et ensuite mis à compter dans un compteur à scintillation liquide. Les ré- sultats ont été exprimés en coups par minute (cpm). - Résultats - BMLR et Fc tFab etIq à différentes concentrations *w Les différents fragments: Fc, Fab, Ig à différents concentrations ont été ajoutés à une MLR I. Le fragment Fc à différentes concentrations (12, 25, 50 et 100 pg/culture) n'a pas montré d'action adjuvante ou inhibitrice de la MLR I, en comparaison avec RPMI. Par contre, le fragment Fab à la concentration de 100 pg/culture montrait une inhibition de la MLR I. Les IgG aux concentrations de 50 et 100 pg entraînaient une inhibi- tion de la MLR I. - FFab et IgG sur une MLR avec différentes concentra- tions de cellules stimulantes Cette technique a été effectuée pour mettre en évidence l'action des différents fragments dans des conditions sous- optimales de la réponse proliférative. Aucune différence significative en comparaison avec le RPMI n'a été observée; seule l'IgG à la concentration de 50 pg donnait une inhibi- tion de la MLR I. - FL Fab et Ig sur une MLR avec des cellules stimu- lantes enrichies en monocytes Etant donné que l'activation des lymphocytes T par l'induction du fragment Fc se fait à travers les macrophages, on a essayé de se placer dans un système plus propice, en conservant les conditions sous-optimales de culture. Aucun effet adjuvant aux différentes doses testées n'a été observé. Un effet inhibiteur a été remarqué pour l'IgG à 24 pg/culture. - MLR et surnageants de cellules incubées avec Fcú Fab ou Ig. Comme la réponse proliférative se déclenche dans les premières heures qui suivent le contact entre cellules sti- mulantes et répondantes et comme la production de sous fragments Fc par les macrophages se fait pendant les 24 pre- mières heures, on a ajouté dans une MLR les surnageants pro- venant des lymphocytes enrichis en monocytes, incubés pendant 24 h à 37 C avec les différents fragments. Ces surnageants ont été préparés à partir de cellules autologues de la cellule répondante et testés-dans une MLR I dans des conditions optimales et sous-optimales de prolifé- ration. Aucun effet inhibiteur ni adjuvant n'a été observé avec les fragments Fc, Fab ou Ig. Conclusion Avec le fragment Fc, aucune activité significative adju- vante ou inhibitrice n'a été observée, pour les lymphocytes humains, aux concentrations de 6, 12, 24, 50 et 100 pg pour 50000 cellules dans la réaction lymphocytaire allogénique primaire. Le choix des doses employées a été déterminé lors de la mise en évidence de l'action proliférative du fragment Fc sur les lymphocytes T (protocole I ci-dessus). Par contre, l'immunoglobuline entière et le fragment Fab donnent une inhibition de la réponse allogénique pri- maire dans tous les modèles testés. III - ETUDE DE L'ACTIVITE SUR LES LYMPHOCYTES CYTOTOXIQUES (CML I ET CML II) Exploration de l'activité des fragments Fc, Fab et de l'IgG dans les différents types de cytotoxicités. Matériel et méthodes Les techniques de séparation de lymphocytes de sang périphérique de donneurs colontaires et l'obtention des dif- férents fragments ont été décrites ci-dessus. Fc, Fab et IgG Gamma placentaire digérée à la plasmine. IgG sous-classes: IgGl = 57 % IgG2 = 39 % IgG3 = 0,2 % IgG4 = 3,7 % Cytotoxicité anticorps dépendante à médiation cellu- laire (ADCC). La technique utilisée est celle décrite par F. WISLOFF, T.E. MICHAELSEN, S.S. FR0LAND, Scand. J. Immunol., 3, pp. 29-38, 1974. Les cellules cibles sont des GRP sensibilisés avec des IgG de lapin anti-GRP et marqué au Chrome 51. Test ADCC Les cellules effectrices (lymphocytes de sang périphé- rique) ont été dénombrées et ajustées à une concentration de x 10 /ml en RPMI 10% SVF. A l'aide d'une seringue Hamilton, on a distribué dans les microplaques à fond rond 100 pl de cellules effectrices p1 des produits à tester à différentes dilutions par triplicate. Après une incubation de 20 mn à 37 C, 50 p1 de GRP sensibilisés et marqués ont été distribués, donnant un rapport final de 50 cellules effectrices contre une cellule cible (50: 1). Le relargage spontané a été déterminé en incubant les GRP avec du milieu RPMI 10% SVF, le relargage maximum en ajoutant aux GRP de l'acide chlorhydrique 1 N. Comme témoin de l'activité de l'antisérum, les cellules effectrices ont été mises en face de GRP préincubés avec du sérum de lapin normal. Les plaques, après une incubation de 18 h à 37 sous 5% C02 en atmosphère humide, ont été centrifugées 10 min. à 800 rpm et la récupération de surnageant a été effectuée sur des tampons filtres (Flow, Ref. 78-21-005). Cytotoxicité "Natural Killer" (NK) La technique utilisée est celle décrite par B.M. VOSE, F. WANKY, S. ARGOV et E. KLEIN, Eur. J. Immunol. 1977, 7, pp. 753-757. Les cellules cibles sont des cellules K 562 (lignée myéloide humaine) marquées au chrome 51. Test NK Les cellules effectrices (lymphocytes de sang périphé- rique) ont été ajustées à une concentration de 5.106/ml, 2,5.106/ml, 1,2.106/ml et 6.105/ml. Leur distribution et leur traitement ont suivi la même méthodologie que pour la technique ADCC. Les cellules cibles ont été distribuées sous 50 pil donnant un rapport final de 2556219. cellules effectrices contre une cible (50: 1, 25: 1, 12: 1 et 6: 1). Le relargage spontané ainsi que le relar- gage maximum, et la récupération des surnageants sont effec- tués dans les mêmes conditions que dans le test ADCC. * Cytotoxicité à médiation lymphocytaire primaire I (CML I) et secondaire (CML II) Cette étude est effectuée selon la méthode de LIGHTBODY et al, Gen. Bact. Virol. Immunol., 1971, Vol. 64, -p. 243. Cellules effectrices La phase de sensibilisation allogénique correspond à une culture mixte identique à celle précédemment décrite (voir II cidessus). Dans les deux tests, la sensibilisation s'est effectuée contre un seul haplotype D r en tenant compte de la diffé- rence entre HLA A, B des cellules répondantes et stimulantes. Cellules cibles Dans les deux tests on a utilisé comme cellules cibles la cellule stimulante qui a servi à la sensibilisation des MLR respectives. Ces cellules stimulées pendant 72 h par la PHA-M (Gibco) ont été marquées par du chrome 51 18 heures avant le test, à raison de 200 pi pour 10.106 cellules. Après des lavages successifs, les cellules ont été dénombrées au bleu trypan et ajustées à 200.103/ml. Le test de CML est alors réalisé dans des microplaques à fond rond. Les cellules effectrices sous 100 pl, traitées comme il a été décrit précédemment, sont incubées avec 50 p1 de cellules cibles pendant 4 heures à 37 C sous 5% C02 en atmosphère humide, donnant un rapport de 50: 1 dans le cas de la CML I et de 50: 1,25:1, 12: 1,6:1 dans le cas de la CML II. Le relargage spontané ainsi que le relargage maximum et la récu- pération des surnageants sont effectués dans les conditions décrites précédemment. Dans les quatre tests de cytotoxicité, le relargage de chrome 51 a été mesuré sur un compteur gamma pendant 2 mino Les résultats ont été exprimés en pourcentage de cytotoxicité suivant la formule: Pourcentage de relargage = cpm relargage Test - cpm relargage spontané cpm relargage maximum - cpm relargage spontané de Cr 51 On considère comme positive toute cytotoxicité supé- rieure à 10%. RESULTATS Cytotoxicité anticorps dépendant Une inhibition de la cytotoxicité anticorps dépendant avec le fragment Fc et l'Ig a été observée chez tous les individus testés. Cette inhibition augmente de façon propor- tionnellement directe avec la concentration de fragment Fc ou d'IgG (tableau 2). L'inhibition de l'activité Killer s'est révélée toujours plus importante avec le fragment Fc qu'avec les IgG, c'est ainsi que 6 pg de Fc donnent une inhibition égale à celle de l'Ig à 50 pg. Par contre, aucun effet inhibiteur n'a été observé avec le fragment Fab, même à des doses très élevées. Activité "Natural Killer" Aucune inhibition de l'activité NK n'a pu être mise en évidence avec les fragments Fc - Fab ou l'Ig, même à des doses très importantes. Pour confirmer ces résultats et à deux doses extrêmes (6 pg et 100 pg) l'activité NK a été testée dans différents rapports cellules effectrices - cellules cibles. Aucune différence significative, à aucune dose ni à aucun rapport, n'a été observée (Tableau 3). Cytotoxicité à médiation cellulaire primaire et secon- daire. La CML I n'a pas été modifiée par l'action des fragments Fc, Fab et de l'IgG testés à différentes doses. Par contre, la CML II a été inhibée par les fragments Fc et Fab à la dose de 25, 50 et 100 pg; les IgG ont montré une inhibition significative à toutes les doses employées (tableau 4). V. ETUDE DE L'ACTION DES FRAGMENTS Fc-Fab ET Ig HUMAINES SUR LES ACTIVITES DE LA CELLULE SUPPRESSIVE ET PRESUPPRESSIVE DE LA REPONSE ALLOGENIQUE PRIMAIRE. Objet Exploration de l'activité des fragments Fc, Fab et de l'Ig sur des cellules T suppressives de la réponse prolifé- rative allogénique et dans la différenciation des cellules présuppressives. Matériel et méthode Les techniques de séparation des lymphocytes du sang périphérique de donneurs volontaires et l'obtention des: différents fragments ont été décrites ci-dessus. Gamma placentaire digérée à la plasmine: pureté des fragments utilisés par gel filtration ACA 44: Fc: 100%, Fab: 94,6 %, (5,4 % 7S), Ig (PRG) 7S: 95,4 % 10S: 2,8 % 10S: 1,8 %, IgGl: 57 %, IgG2: 39 %, IgG3: 0,2 %, IgG4: 3,7 %. Les donneurs volontaires du sang ont été étudiés pour les principaux déterminants du complexe HLA-Dr, par sérolo- gie et lymphotoxicité classique ou modifiée (suspension lymphocytaire enrichie en cellules B). Allosensibilisation: M.J. SHEENY, F.H. BACH, Tissue Antigens, 1976, 8, pp. 157-171. Pour la sensibilisation allogénique in vitro, 10.106 lymphocytes utilisés comme répondeurs sont mis en présence de 10.10 cellules allogéniques mitomycinées, incompatibles pour un.Ag HLA-Dr (25 Vg/10 cellules/ml), utilisées comme stimulateurs. La culture est réalisée dans des bouteilles Falcon (CA 3013) avec 20 ml de milieu RPMI 1640 additionné de 10% d'un pool de sérum AB dans une étuve humidifiée à 37 C, en présence de 5% de C02, pour une période de 10 jours. Test de Supression (J. DAUSSET, Nature, 1978, 267,pp. 502). L'activité suppressive des lymphocytes allosensibilisés in vitro a été évaluée dans une MLR I avec présence de trois 25562 19 populations de cellules: les lymphocytes répondeurs, les cellules stimulantes mitomycinées et les cellules allosensi- bilisées également mitomycinées (ces cellules sont autologues aux cellules répondantes). Le comptage est effectué dans un compteur à scintilla- tion liquide. Le pourcentage de suppression est évalué selon la for- mule: % suppression = 1 Valeur médiane expérimentale (CPM) % suppression=1- Valeur médiane témoin (CPM) Etude de l'activité des différents fragments sur les cellules pEré-sure iessives et supressives Pour mettre en évidence une action stimulante des cel- lules pré-suppressives, deux modèles différents ont été essayes. Le premier consiste à la pré-incubation pendant une heure des lymphocytes totaux de sang périphérique avec les différents fragments de Fc, Fab ou IgG. Apres plusieurs la- vages, ces cellules ont été mitomycinées et mises comme troisièmes cellules dans une MLR I dans les conditions pré- cédemment décrites. Le groupe témoin a été pré-incubé avec RPMI. Le deuxième protocole permet de mettre en évidence un effet adjuvant éventuel sur le développement des cellules suppressives. Dans l'étape d'allosensibilisation, les frag- ments Fc, Fab et IgG ont été ajoutés au jour 0 à différentes doses. Apres 10 jours de sensibilisation, ces cellules sont ajoutées comme troisièmes cellules dans une MLR I dans les conditions précédemment décrites. Enfin, pour décrire l'activité de ces fragments sur les cellules suppressives, différentes doses de Fc, Fab, Ig ont été ajoutées dans le test à trois cellules. 2556219. Résultats (tableau 5) 1. Activité des fragments Fc, Fab et Ig dans incubation de cellules non sensibilisées et ajoutées comme troisièmes cellules Lors du test de suppression, différentes doses de frag- ments Fc, Fab ou Ig ont été incubées pendant une heure avec les cellules sensibilisées, avant d'être lavées et mito- mycinées. Les cellules préalablement incibées avec le frgament Fc donnent une augmentation de l'inhibition de la MLR I proportionnelle à la dose de Fc utilisée. Cette augmentation est significative pour les doses de 15 et 30 pg/ml. On retrouve une inhibition significative de la MLR avec les cellules pré-incubées en présence de l'Ig à la dose de 15 pg. Par contre, les cellules pré-incubées avec le fragment Fab ne révèlent pas d'inhibition significative de la réponse allogénique. 2. Activité du fragment Fc, Fab IgG dans l'allosensi- bilisation Différentes doses de fragments Fc, Fab et IgG intacte ont été ajoutées au jour 0 de l'allosensibilisation. Les cellules suppressives sensibilisées en présence du fragment Fc montrent une activité inhibitrice de la MLR I significativement plus élevée que les cellules témoins aussi bien à 1,5 ig qu'à 100 pg par culture. D'autre part, les cellules incubées avec l'Ig intacte montrent une augmentation significative de l'inhibition de la MLR I, à des doses supé- rieures à 3 pg. Par contre, les cellules sensibilisées en présence du fragment Fab, ne donnent aucune différence significative. Dans le cas o le pourcentage de suppression a été très élevé, il est par consequent difficile d'évaluer l'augmenta- tion. Une expérience supplémentaire a été réalisée. Les cel- lules allosensibilisées et mitomycinées ont été ajoutées à différentes concentrations donnant un rapport de: 1:1, 2:1, 4:1, cellules répondantes/cellules suppressives. Dans ce cas-là, on retrouve une augmentation significative de l'acti- vité suppressive à la dilution 8:1 sur les cellules qui ont été sensibilisées en présence du fragment Fc. 3. Activité des fragments Fc. Fab, Ic dans le test de suppression de la réponse allo2 nigueI Différentes doses de fragments Fc, Fab, Ig ont été introduites dans la MLR I à trois cellules au moment du test. Aucune activité adjuvante ni inhibitrice n'a été observée. Conclusions: La première indication de l'existence de cellules sup- pressives développées au cours de la réponse secondaire est venue de l'observation que des cellules allosensibilisées deux fois contre le même alloantigène donnaient une réponse proliférative moindre que celle obtenue dans le cas d'une seule allosensibilisation et la démonstration d'un processus actif a été apportée par l'addition dans une MLR classique primaire de ces cellules allosensibilisées, irradiées. Les cellules suppressives sont spécifiques de l'antigène HLA-Dr présenté par la cellule stimulante. Elles apparaissent comme des lymphocytes T, puisqu'au bout de 10 jours de cul- ture, 95 % des cellules allosensibilisées forment de rosettes E, moins de 3 % ont des IgG de surface et moins de 2 % des monocytes. Le mécanisme de suppression provoqué par une hyperimmunisation allogénique in vitro parait très proche du processus multitransfusionnel pratiqué avant une greffe rénale, lequel aboutit à une survie améliorée de la greffe, comme il a été rapporté par Opelz et Teroski (Transplanta- tion, 1980, 2, p. 153). Les expériences précédemment décrites ont eu comme objectif la mise en évidence de l'activité des fragments Fc, Fab, IgG dans le développement des lymphocytes pré- suppresseurs, ainsi que l'activité directe sur les cellules suppressives. V. ETUDE DE LA PRODUCTION DES IMMUNOGLOBULINES TOTALES A PARTIR DES FRAGMENTS Fc, Fab, IgG Objectif: Mise en évidence de la production des immuno- globulines après stimulation par le Fc, Fab et IgG. Matériel et méthodes 1. Préparation des différentes populations lymphocy- taires. Techniques de séparation de lymphocytes du sang péri- phérique de donneurs volontaires et l'obtention des diffé- rentes sous-populations, comme l'obtention des différents fragments voir ci-dessus. Gamma placentaire digérée 1 la plasmine (pureté et caractéristiques: voir V ci-dessus). 2. Marquage à l'iode 125 de l'antisérum Du F (ab') 2 de chèvre anti Ig totales humaines (labo- ratoires Cappel) est marqué avec l'iode 125 S4. Ensuite, le mélange de F (ab')2 marqué et d'iode en excès est déposé sur une colonne Sephadex G 50. Le premier pic correspond au F (ab')2 (PM 50. 000), le deuxième pic correspond à un volume de 8 à 10 ml suivant les résultats du marquage en tampon phosphate 0,5 M pH 7,5 et comme support protéique 1 % final de sérum de cheval sans gamma- globuline est ajouté. Le rendement de marquage est calculé suivant la formule: - cpm pic F (ab') 2 x 100 cpm pic F (ab')2 + cpm I125 en exces L'activité spécifique se calcule comme suit ______cpm ng F (abr2 marqué vol. prise essai (-1)x qté F(ab')2(WigI vngF (ab')2 marqu =1000x final de F(ab')2 marqué ()-- 3. Titrage des IgG humaines: test RIA Après une nuit à + 4 C, d'absorption du F (ab')2 de chèvre anti Ig humaines dans des cupules interchangeables on procède à l'aspiration et à la saturation de ces cupules avec du PBS - 5 % BSA pendant une heure à 370C. A. Incubation des produits à tester - Dilution de la gamma globuline étalon. Comme étalon, on a utilisé de la gamma globuline pla- centaire à une concentration de 60 pg/ml. On effectue dix dilutions successives de 1/2 en 1/2 de cette solution, en PBS plus 0,5 % BSA, plus 0,05 Tween 20. - Dilution de produits à tester. Après avoir mis en culture pendant 6 jours des cellules de sang périphérique, des cellules non adhérentes et des cellules enrichies en macrophages, à 1,10 /ml en RPMI plus % SVF, en présence soit de Fc, Fab, Ig ou RPMI, à raison de 60 pg/ml, les surnageants sont recueillis après centrifu- gation. Ils sont ensuite utilisés à part, 1/5, 1/25 et 1/125 en PBS 0,5 % BSA plus 0,05 % Tween 20. La distribution de chaque dilution de produit se fait à raison de 100 p1 par cupule en triplicate. Celles-ci sont ensuite incubées 2 h à 37 C, et rincées plusieurs fois. B. Contact antigène - F (ab')2 chèvre anti Ig humaines marsue à l'iode 125 p1 de F (ab')2 marqué et dilué sont distribués dans chaque cupule. Apres 2 h d'incubation à 37 C, plusieurs la- vages sont faits avec du PBS Tween. Suit une aspiration complète de chaque cupule. Le comptage s'effectue sur un compteur gamma. C. Détermination de la iuantité d'Ig dans les surnageants cpm réel = cpm (Fc + lympho + RPMI sérum) - cpm (FC + RPMI sérum) * Fc ou Fab ou Ig. Ensuite, ces cpm sont analysés sur une étude de régres- sion de courbe en fonction de l'étalon. RESULTATS ET CONCLUSIONS (Tableau 6) La production des immunoglobulines totales à partir de différentes sous-populations lymphocytaires, en présence de fragment Fc s'est montré significativement plus élevée qu'avec le fragment Fab. Par contre, les IgG apparaissent plutôt inhibitrices de production des IgG totales que stimulatrices, en comparaison avec la production spontanée des IgG. L'introduction des inmunoglobulines et des sous- fragments dans la technique de RIA oblige à faire des con- trôles parallèles sur des surnageants 5 jours sans cellules pour obtenir des résultats comparables. Cette méthodologie aide à mettre en évidence la produc- tion in vitro des IgG à partir de lymphocytes stimulés avec le Fc. EXEMPLE 2: REALISATION D'UNE COMPOSITION PHARAMACEU- TIQUE Les fragments Fc sont préparés à partir d'IgG humaines purifiées par la technique d'ONCLEY J.L. et coll., J. of Am. Chem. Soc., 1949, 71, p. 541, et traitées par la plasmine humaine selon la technique de PLAN R. et MAKULA M.F., Vox Sanguinis, 1975, Vol. 28, pp. 157-175. Ces IgG pro- viennent de sang prélevé à la veine ou exprimé de placentas. La solution de fragments Fc apyrogêne est filtrée stérile- ment, répartie à raison de 2,5 g de principe actif par flacon et lyophilisée. Au moment de l'utilisation, la solution est reconstituée avec de l'eau employée pour préparations injectables. % asv pixotad en2olo:nu mnas -o -: ---:---: -------- :*:LLLI;GSLLú: túú-689l: úZi'L99L *, -6OL 68:-SúL' 6 * Z : (-)---------_:-------- ::LLLV-SVlLE: VúE-629l: túSE+9OL 8: Lll:lLt-69úL 6: L: : atualaM ': +::: : I-)::.........:-.........."- ---- '-- --- S@lnlla+ *lt+pL ú+689l úú+ú * 6b+0l'úb-5l * 6 * * :s nTTTD:L[L LLú:, IúEú6891. 6:-OLLL 'úLP-99t 6 9 :o u:x tp::: :: À : _ : : %ú'8l.:----------:- _:-------- : *8689+6l+ * 80+ l ú6+9Zl 8Z+56 * 82+8L*l- Z -________:6_9_6L: 8_-OOL-: ---:6LLL---: - LL9-- -8 LL: -: : '. --------:-- :: 8'9699;696úLP: 695-+006: 96SLZ+5Lú:96ZL+S96ú9Z6-+R8LL LL:9 Zl smanpuoda= *. *.Zúb-+8896 996tLV9: 9OGS-OOLOU 696OtlO LC979L9 OOPt+L9:9:: 9 c D--4e * D*,. *e :__ %- ' -----.- *.ZCVt,9999: 69S-0ú69 ú9L7ZOOL:ú60 70L L:Oú9Z60úLZ: 9t: E: + * + + +* + %t''EtV:Z-t7l9999: 69q;OS69:66tZ;SLLEL:6úú;.7L9úL:9ZOZ-7ZE9 9z: E s. napuod : ,:: : s -a n Lpu H a - - - -. - - -___. ------ ------ tV2H:77ú-9999: 9ç06:rI-c 96CQQI99V,9tI:Lob-90ú : 9Z: 9 :,:: - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - -- -- - -- --- --- - --- -- - - -- --- --: - - - - - - -- - -::o siapodd snpuod1 NOIa;v;*OduoDNI IIdD SR 1-NZÀ : flVIa: TABLEAU 2 ADCC et fragaent Pc, Fab, IaG - Test ADCC 50: 1 :: % cytotoxicité RE1 Cr 51 M- ES n= 7 :* - Prod i Prod:: ::: : dose: Fc: Fab: Ig: PI: - ---------- --- ---::: : -:o- - -: :puits z*(éon 6 ug 25,2- 5,5:46,8-8,2 33,1-5,8 47,4+74:4 :* ' >46% * (a) >0,01 >30%*: (h) ::: ::..: 12 gg:19,1-4,56:47,9-7,6:30,6-5,5:47,4-7,4 ::>59% * (b): 0:>35* (e): ::.............::--: ---: 24 Ug:15,5-3,5:46,4-7:28,0-5,7 47,4-7,4 ::>67% * (c):>0,01:>40% * (f):: :- - - - - - - -- - - - - - - - - - -: - - - -- - - -- - -- -- --- -- - ::: ::: ug:12,3-3:45,0-7,5 :24,6-4,5:47,4!7,4 ::>74% * (d):>0,04:>48% * (g):: ::: : _:: n = 6 *% d'inhibition a vs RPMI = p + + * + + i * s i 9'8 + L'E:Z8 + Zt'S: 8 + 0 'Eú 36I i ____________ ______.......... .:.......... _______::...........-............_______ i__ i::: i '8 + Z'6 6'8 + LS:: ' + LLS'Lú i ::.L::ij i 6 + 5'6ú* + L'Lú6'ú +O. L'6E D A i ____ ___ ___--- _---- -- - - - - - - - - - - - - - - - --- --_------------____ __ _ _ _ _ _ _ i I.... : j POd'! 6n/ OQl: 6n/ bz: 6n/ Zl 6n/ 9 1P d; a: n:.snd/() i: i i 9.tD. txOlOoúD %S3 + W i. : i +i 96I 'qj ':l,uatu5 2J ap sUOL;.L4UaDuO SluaJJaLp e,.LALP Ov g n1ú 'iVl TABLEAU 4: CML II Ratio cellules effectrices - cellules cibles 50: 1 :,:' % Cytotoxicité MES n = 4 :::::: :gg/puits: Fc: Fab: IqG:RPMI n = 7: -------:----_ --:...........:-: 6 g 20,2-+1,5(k):21,0-+0,5:15,0-+1,9(f):24,1-2,6' : ---:-::-- 12 g:21,5-1,75 20,2-1,1 16,7-1,4() 24,12,6 : 2 +:: -+: *25 lg:16,5-2,3(a):14,0-2,9(d) 16,7-1,3(h):24,1-2,6 gg:16,7-+3 (b) 14,7-+ 2,9(e) 15,5+2,3(i):24,1-2,6 :::: :: :: +:: ++: +: B100 p d: II'ci SA a SN d: INWdI SA p:a o 00O'0> d: INdu SA q goo'o> d: Ilia SA e.6 O0/l/i/DuODo + * +**+ _ - - - - - - - - - - - - - -- - ::: -:: :: : : ZE = u: E 'Z + l. *:(a) ú'g +ú'EZ' (D) B'E + ZZ *() 6'E +Z9' LE:0 : OL = U: _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ Da._______ * ' ú'Z S+ L:8b'E + s'OZ- L'b' + 8s: 9'5 + LL: v 'rn *.:: :: : :::: ::aoua: (u Ausanouulaa)anla -.p:x. tI:.:: -. :I a qe,4 'Og SSUaoI S@I DGA sspqnou!-pa]a saInItsO sap 9AT.AO: fislS .L SOO'O> d: IWd ^ SA 6f/ 001 'tz '9 6gI SO'O> d IWdU sA 6n/ E 9I NC%à S'O = d: IWdU SA n/ ú:j soo'o? d: IWdU sA 0n/ OO 'tZ '9 'S'L D: 9/1 '/G = *9W -fl Lt/T =,A^ LIS L/ =,da /1 ltz/ú = 3s aa - L' Z': S -:tS-L 9I 9bl 0 i L'+ Lú9 L'ú + 6L: S L't9 89'l + b8 6n/ 001 i L' - L'E9 ' + ú'68 ' j 9L'Z+ 6n/b ji:= : 6: l=u i L'ú; ' 'E9 6Z'Z 06: b6' +. 99:n S'l i ------------- -- - - - - - -- - - -- - - - --- -- --- - - -- - -- -- -- i I&C Sd"zu: 91. q - iS 6n i...... ...,.......... +. .. ...... . .:.....i -à À iWdU: :51: ai S3 uOltLqL4uL e i g + d q sA e g = u -/iL LIú: JaO i:: :; i (q) 9' bZ S' L + OE S'l + 9 OE: (2) 'bt + E - *000'9 i i + +: -- -- - -- -- - -- -- -6 -- --- - ---------- ---------9 --------- I. . i i OI - 9'lS 9'6 + Lb t,'8+ E'LS: b 8'l 9 ooo 000Z i i __........... __ __ _ _+_ i S'S, S"^9: E'S + E'úS: b'Z.. S'E9 6'ú + L9 *000'SZ i i j.... .+0 L '*.+Z8* ..i i; +*B: L ' + 91L: Zl8: Lg+ g. 00O..DTD: j_:: :: . ........ i I NdU:: 9 I: qe: - i__...:: _ . _________gOQ _..i' S3 + X ddnS %'S + *(+SO) + a D + S + a i sa^ALssaddns sa[nLlaD ap SUOLteJluaDUOD saluea.a.Lp e UOLSSaJddns ap,sa: ( a; Fns5) g e q Cu i IG lO C L/l d S/új dU %0 Z X 5 / 1 /S 9:19 "c l *ld LiL 2d: *!dDd Io C-9/1 *g 9/ * 18 I,o 10 - T C*L/ 8 Z/S +:S *tddnS * La3 i 9'S 'EZS: bZ + L' 9S'9 - S'6S: Z'n + Z: Z. / +.:: :. i i. .'.. 9V- Z55 t' "8 8ú'P tP'8s 66L L't's 5n' / r b + 8 + s + Z * L 0t6t L t L 9't'D Ev - in t2 +.b+ t + ú' + I 96 I * qUS. TI * * o Z9 ú'OzL -. SI Ttc g'8 SI - LTz Bn' 9i *1* + 9 + ' + i.......... ..............::...... i os1 I WdU dxa N: :co' ddns S3 1 anbLuauoItt aSUOdai z-p Puol ssa-Àdoris oP 1 SPM4 iai SUvp 90i 'qej 'Ds;uz)woua saP a},LjL1v I (fS.......'.............'......'....:..... * L'Zú'609 9L -+ú Ol -G'6Z: LL -úL:SZL/L - - - - - - - - - - - - -- - - --± - - - - -- - - :;LL c 9 6L 6l- S'LL -L'Z:- EZ -L9 SZ/L :SEss: 09 OZ -OS L, LL: E9 úEZL S/L :OOOL;OLEL: OOZ:8l -ES OLl -6cZ 09L -O5: L/L : NM6: Iwd: DI: qw: o:: ::: *:::uans: :________________________-------------------------------- a pUL = u I/u T XT UI L u lui/iDU Sa- - VX SÀADoquidA :---------_-:---_------------:------------:------------: ------: úú+;' 08 OZ-9'E1: f -Z'gZ: S' 8e*:lSZL/L LE-SúL OZ L ZZ+9'L L'Zt +L8 6Z g * qz-L :_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _:... .:: _ _: :__ _ _ __:_ _::: : _:__ _ _ L89O06SL: 0E9: OtOOL: OSE -0 090L: 00EL +OOLZL/L :_________---- --:- - - - -- - -- - - ----- - - - -:-----_ :tmd: I::: =::9j ::::: :'ulS : : --- --- - -- - -- - -- =-- U-- - -- --- --- --- --+ --- - -: 'TT :: : pUT p = U TW/au S- x IIoDad saq.'ooqgu q saSTtADOqaU1m/ suoTZTlnaOa-Snos sazuoatTl _p sap aTaq d ç saluoz souTInqoloounMUI sep uolqDnpoad 9,q9WAX TABLEAU 6 ( Suite) Lymphocvtes de sana priphéerique : il:......:-E *X -ES na/ml n = 4 ind. : Dil. - ------------ - - - Surn.: Fc: Fab Ig:RPMI PWM ::: --: - - 1/1: 750-330: 207-30 115-32:485:2320-183 1/5: 132- 31:96,7-15: 73,2-10:185 3901197 : 7:::: : 1/25:58,2- 19:65,7-14 68,5-16:120 74- 21 :. ... ..::::. . .. 1/125:: :. . - 1/125:32-1 44 18:51,7-+16,9:60:43 16: 2556 219 REVENDICATIONS 1. Médicament immunomodulateur, caractérisé par le fait que son principe actif est constitué par des fragments Fc d'IgG humaines, ou par des analogues desdits fragments, et qu'il est exempt d'IgG intactes et/ou de fragments Fab ou qu'il n'en contient pas plus de 2 % en poids par rapport au poids total (Fc+Fab+IgG), étant entendu que lesdites analo- gues des fragments Fc d'IgG humaines sont tous fragments ou sous-fragments de Fc et tous peptides synthétiques ou semi- synthétiques contenant des séquences peptidiques présentes sur le fragment Fc, ainsi que tous dérivés de ces fragments, sous-fragments ou peptides, à condition que ces fragments, sous-fragments, peptides ou dérivés satisfassent aux condi- tions suivantes: - ils ont des propriétés d'activateurs de la différen- ciation des cellules suppressives: - ils ont des propriétés d'inhibiteurs de la cytotoxi- cité anticorps-dépendante; - ils n'ont pas de propriétés d'activateurs des cellu- les NK. 2. Médicament selon la revendication 1, caractérisé par le fait qu'il ne contient pas plus de 1 % en poids de frag- ments Fab et/ou d'IgG intactes. 3. Médicament selon la revendication 1, caractérisé par le fait qu'il est exempt de fragments Fab et/ou d'IgG intactes. 4. Médicament selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que le principe actif est constitué par des fragments Fc. 5. Utilisation du fragment Fc des IgG humaines ou de ses analogues, tels qu'ils sont définis dans la revendication 1, dans la préparation d'un médicament immunomodulateur capa- ble notamment de traiter les maladies autoimmunes et capable de prévenir les réactions de rejet, ou d'en diminuer les effets, chez les malades devant subir ou ayant subi une greffe d'organe.