Brevet FR2526661A1 — publié le 19831118

La présente invention concerne plus parti- culièrement l'élaboration d'un vaccin contre la rage. La rage est une maladie,,provoquée par le virus rabique,qui se présente sous forme d'une encéphalomyélite gravissime qui peut être fatale en quelques jours. La rage est une zoonose Tous les animaux à sang chaud, qu'ilssoient mammifères ou oiseaux, sont réceptifs Le principal vecteur est en général constitué par des mammifères mordeurs, qu'ils soient domestiques ou sauvages. Les principales victimes de la rage sont essentiellement l'homme et le bétail. Les mesures de prévention efficaces ont permis de limiter les cas de rage humaine,qui se réduisent à quelques cas accidentels dans les pays fortement industrialisés. Néanmoins, la rage reste encore une maladie très importante dans certains pays d'Amérique du Sud, en Afrique et en Asie. L'arme essentielle de la lutte contre la rage est la prévention par la vaccination. Les vaccins actuellement utilisés sont essentiellement constitués par des virus inactivés. Toutefois, pour être reproduits industrielle- ment, ces virus doivent être cultivés sur des milieux tels que des cerveaux de souriceaux nouveau- nés, sur des embryons d'oiseaux ou sur des cellules rénales animales ou sur des cellules diploïdes humaines, après quoi ils sont complètement inactivés par action de a-propiolactone par exemple. Toutefois, les risques d'accidents neuro- paralytiques liés à l'utilisation de ces vaccins ont grandement limité les possibilités de la vaccination, au moins au niveau humain. En outre, bien que les nouveaux substrats utilisés pour la culture des virus aient beaucoup réduit le risque neurologique, celui-ci n'est pas complètement supprimé De plus, l'utilisation de vaccins inactivés pose toujours le problème du risque d'une inactivation insuffisante Enfin la nature particulière des milieux de culture conduit à de nombreuses difficultés au stade industriel qui font que le vaccin antirabique reste actuellement un vaccin très cher. Le but de la présente invention est la préparation d'une protéine antigénique vaccinante exempte de risque d'accident neuroparalytique et qui, en outre, peut être préparée dans des conditions industrielles telles qu'elle assure un coût très faible du vaccin. Le virus de la rage est un rhabdovirus. Ce rhabdovirus est constitué d'une nucléocapside hélicoïdale contenant un ARN inclus dans une enveloppe lipoprotéinique ayant la forme d'un obus. Ce virion comprend cinq protéines qui sont codées par le génome: G (glycoprotéine), N (nucléocapside), M 1 et M 2 (matrice) et L (large, transcriptase) Comme la couverture membranaire provient de l'hôte, le seul antigène efficace présent sur la surface est la glycoprotéine Cette protéine transmembranaire a un poids moléculaire d'environ 000 daltons et possède une activité hémagglutinante. La glycoprotéine purifiée est environ six fois plus active dans les essais d'hémagglutination que le virus intact. Comme son nom l'indique, la glycoprotéine du virus de la rage est glycosylée, bien que le rôle de cette glycosylation soit inconnu. La séquence d'ADN complémentaire du m ARN de la glycoprotéine du virus de la rage a été décrite dans l'article de A Anilionis et ai, Nature 294; 275-278 ( 1981). Ce gène a été utilisé dans le cadre des expérimentations qui seront décrites ci-après et est représenté schématiquement sur la figure 1 ci- annexée. La présente invention concerne un vecteur d'expression de la protéine antigénique de la rage caractérisé en ce qu'il comporte au moins: la séquence d'ADN efficace suivante AGA GGC CTA TAT AAG TCT TTA AAA GGA GCA TGC AAA CTC AMG TTA TGT GGA GTT CTA GGA CTT AGA CTT ATG GAT GGA ACA TGG GTC GCG, un promoteur de l'expression de cette séquence dans une bactérie. Les expériences effectuées ont montré que seuls les vecteurs comportant la séquence d'ADN efficace précédemment mentionnée étaient susceptibles de conduire à l'expression d'une glycoprotéine précipitant avec un antisérum correspondant à la glycoprotéine de la rage purifiée. Dans certains cas, il peut être intéressant ou nécessaire d'utiliser des fragments d'ADN efficace de dimension plus importante, en particulier il peut être intéressant d'utiliser les fragments d'ADN du gène dela rage limités par les sites de restriction Hind III Hind II, Hind III Aos II, Hind III Nru I D'autres fragments sont également utilisables, en particulier Hind III Pst I et Stu I Pst I, bien que dans ce cas la séquence d'ADN correspondante code dans sa partie terminale pour le peptide transmembranaire dont le caractère hydrophobe peut constituer un inconvénient dans l'obtention d'une protéine hydrosoluble. De façon générale, il est intéressant d'utiliser comme séquence d'ADN efficace une séquence limitée en 5 ' par le site Hind III. Les vecteurs selon la présente invention peuvent, bien entendu, comporter d'autres fragments d'ADN destinés en particulier à assurer l'attachement des ribosomes correspondants ou bien à donner une configuration au vecteur facilitant l'expression de la protéine antigénique de la rage. En particulier, les vecteurs selon la présente invention peuvent comporter tout ou partie de l'ADN d'un phage, notamment du phage M 13, le promoteur du vecteur selon la présente invention étant d'ailleurs de préférence le promoteur de l'operon lactose. Parmi les phages M 13 utilisables, il faut citer plus particulièrement les phages: M 13 tgl O 2 M 13 tgli O M 13 tglll M 13 tgl 12 M 13 tg 115 M 13 tg I 16 M 13 tg 117 M 13 tgl 18 M 13 tgl 2 O M 13 tgl 2 l. Il est bien entendu possible d'utiliser un autre type de promoteur comme par exemple un promoteur contrôlé tel que celui du bactériophage lambda et également d'introduire un site d'initiation de la traduction puissant tel que celui du gène c II-du phage lambda. La présente invention concerne également l'application de ces vecteurs à la préparation de glycoprotéines antigéniques de la rage par culture sur un milieu de culture approprié de souches bactériennes incorporant un vecteur selon l'invention. Parmi les souches bactériennes utilisables, il faut citer en particulier Escherichia coli, notamment lorsque l'ADN support est l'ADN du phage M 13, mais d'autres souches bactériennes sont utilisables comme par exemple Bacillus subtilis. Bien entendu les conditions de culture et les milieux à utiliser ne constituent pas des caractéristiques du procédé selon la présente invention et peuvent être déterminés pour chaque souche par l'homme de métier. La présente invention concerne également les protéines obtenues par la mise en oeuvre du procédé selon la présente invention et en particulier les protéines comportant la séquence suivante d'acide aminé RGLYKSLRGACKLKLCGVLOLRLMDGTWV I I Les protéines ainsi obtenues immunoprécipitent avec les anticorps spécifiques correspondant à l'antigène majeur de la rage et peuvent donc être utilisées pour provoquer une immunostimulation permettant le traitement ou la prévention de la rage. C'est pourquoi la présente invention concerne également des vaccins utiles aussi bien pour la prévention que pour le traitement de la rage comportant à titre de principe actif immunostimulant au moins une protéine telle que décrite précédemment. De préférence, la protéine antigénique selon la présente invention se présente sous forme d'une solution aqueuse lorsqu'elle doit être utilisée comme vaccin. Bien entendu, la séquence d'acide aminé de cette protéine peut être synthétisée par voie chimique à l'aide de procédés connus. De même, s'il est préférable que cette séquence soit incorporée dans une protéine plus importante, il n'est pas forcément indispensable que les acides aminés de part et d'autre correspondent à ceux du gêne complet de la protéine antigénique de la rage, il est possible de prévoir d'autres acides aminés qui améliorent l'efficacité du composé, en particulier qui modifient sa solubilité Il est même possible de prévoir que certains éléments différents des acides aminés soient greffés sur la chaîne. Avant de décrire en détail les procédés mis en oeuvre pour la préparation des vecteurs selon la présente invention, il convient de résumer ci-après le schéma des manipulations correspondantes. Les vecteurs selon la présente invention ont été préparés par insertion dans les sites appropriés de phages M 13 de différentes séquences de restriction obtenues à partir du plasmide p RG décrit dans A Anilionis et al, Nature 294, 275-278 ( 1981). La structure du gêne codant pour la glyco- protéine de la rage est représentée à la figure 1. Sur cette figure on a également représenté les différents sites de restriction présents sur ce gène ainsi que les acides aminés codés par cette séquence. Les séquences de protéines encadrées corres- pondent aux régions hydrophobes de la glycoprotéine, quant aux régions entourées elles correspondent aux sites de glycosylation de la glycoprotéine. Il semble que cette glycoprotéine soit traduite sous forme d'un précurseur comportant un peptide signal hydrophobe de 19 acides aminés, ce peptide est noté de 1 à 19 sur la figure 1. Il est intéressant de noter que la protéine contient deux autres régions hydrophobes, le peptide transmembranaire situé en fin de séquence,et une petite zone hydrophobe centrale dont la fonction est actuellement inconnue. Comme on peut le remarquer sur la figure 1, le départ de la séquence qui code pour la glycoprotéine mature est suivi très rapidement par un site Hind III. Il est donc intéressant de pouvoir cloner des fragments du gène débutant au site Hind III. Afin de pouvoir cloner de façon satisfaisante une telle séquence d'ADN, il a été nécessaire de construire un vecteur avec un signal de traduction- initiation immédiatement suivi par un site Hind III en phase correcte. A cette fin, on construit des vecteurs à partir du phage M 13 dans lesquels le site Hind III est en phase 1, 2 ou 3 suivant les vecteurs afin d'être certain de l'expression correcte de la protéine. Comme cela a été indiqué précédemment, et afin d'obtenir de préférence une protéine soluble, on essaiera d'éliminer la protéine transmembranaire située après le site Hind II. Par digestion du plasmide p RG avec les enzymes correspondantes, on isole les séquences de restriction suivantes: 1 Hind III Pst I 2 Hind III Xho I 3 Hind III Stu I 4 Hind III Nru I Hind III Aos II 8 Stu I Pst I Hind III Hind II Ces séquences sont insérées dans les sites correspondants des phages M 13. La figure 2 rassemble les différentes séquences de restriction qui ont été clonées, avec à la partie inférieure la mention du phage M 13 utilisé ainsi que le site de restriction correspondant du phage. La souche E coli JM 103 est infectée avec les phages comportant lesdites insertions et cultivée sur des milieux appropriés, en particulier supplémentés avec du succinate de sodium comme source de carbone de façon à limiter la répression catabolique du promoteur lac. L'expression de ce promoteur est induite par addition de IPTG, la synthèse de la protéine étant suivie par incorporation de méthionine marquée. Les bactéries sont ensuite collectées puis la glycoprotéine en est extraite et purifiée par incubation avec un antisérum correspondant à la protéine purifiée Les complexes antigènes-anticorps sont récupérés par chromatographie d'affinité, lavés puis dissociés de façon à isoler la protéine antigénique. Les poids moléculaires des protéines ainsi obtenues après purification sont cohérents avec ce qui était attendu, c'est-à-dire une protéine hybride comportant une partie e-galactosidase et une partie de la glycoprotéine antigénique de la rage corres- pondant à la séquence clonée. Les résultats observés sont rassemblés dans le tableau I ci-après TABLEAU I Exp Fragment clonê Clone Poids moléculaire des différentes Total Polds parties de la protéine moléculaire Petide lac E Poly 2 eptide 21 de observée N-terminal la 5 lycoprotéine C-terminal centrale (k = kilodaltons) 1 Hind III-Pst I rg 7 1,2 k 54,5 k _ (a) 55,7 k 56,0 k rg 2 2 Hind III-Xho I r 14 1,2 k 15,5 k 16,3 k(b) 33,0 k _ (e) rg 5 o 3 Hind III-Stu I rg 15 1,2 k 22,4 k 16,3 k(b) 39,9 k (e) r 52 4 Hind III-Nru I rg 53 1,2 k 25,4 k 5,7 k(c) 32,3 k 31,0 k rgl l O Hind III-Aos II rg 18 1, 2 k 31,8 k 5,7 k(c> 38,7 k 38,5 k ( 7 'r rg 27 8 Stu I-Pst I rg 123 1,2 k 32,0 k (a) 33,2 k 35,0 k rg 124 Hind III-Hind II rg 151 1,2 k 46,2 k 3,7 k (d) 51,1 k 51,0 k (Bam HI) rg 158 Les calculs ont été effectués en admettant que le poids moléculaire moyen d'un acide aminé est de 110 daltons. (a) la fin de la traduction se produit au codon stop de la glycoprotéine naturelle (b) la fin se produit au codon stop de l'a-peptide egalactosidase (c) traduction hors phase du segment distal de l'a-peptide (d) traduction hors phase de la séquence distale codant pour la glycoprotéine. (e) aucune bande n'a été observée lors de l'immunoprécipitation. il Ces résultats sont rappelés sur la figure 3 afin de mieux comprendre les enseignements que l'on peut tirer de ces expériences. Sur cette figure 3 on a noté G le fragment de restriction Pst I Pst I du gène de la rage sur lequel ont été représentés les principaux sites de restriction qui ont été mis en oeuvre. On a ensuite représenté par P le schéma de la glycoprotéine antigénique de la rage, les chiffres représentant le nombre d'aminoacides comptés à partir de l'origine de la glycoprotéine mature. On a représenté également par des cercles noirs ou blancs les sites de glycosylation. Dans les mêmes conditions que pour P, on a représenté en H la séquence de la glycoprotéine antigénique sur laquelle figurent, représentées par des carrés, les régions hydrophobes. On a ensuite schématisé par i P les différents fragments de restriction clonés Les fragments de restriction notés i P+ et représentés en traits doubles correspondent à des fragments de restriction qui, après clonage, ont donné naissance à une protéine immunoprécipitante, par contre les fragments de restriction notés i P et représentés par un seul trait n'ont pas donne lieu à une immunoprécipitation. Les essais effectués sur i P et i P conduisent donc par recouvrement à isoler une zone représentée dans le schéma i Z par un carré qui est la zone indispensable pour qu'apparaisse dans la protéine correspondante une propriété immunoprécipitante. On a représenté sous i Z la protéine codée par ce fragment de recouvrement situé entre Stu I et Nru I. Les abréviations utilisées dans cette description correspondent aux codes internationaux et en particulier les codes à une seule lettre pour les acides aminés sont les suivants: R = Arg C= Cys G = Gly V = Val L = Leu M = Met Y = Tyr D = Asp K = Lys T = Thr S = Ser W = Trp A = Ala Les exemples suivants sont destinés à mettre en évidence d'autres caractéristiques et avantages des procédés et des produits selon la présente invention. Exemple 1 Construction de nouveaux vecteurs M 13 La construction de ces vecteurs est indiquée dans le tableau II ci-après sur lequel figurent les références du phage de départ, la nature de l'enzyme de restriction avec laquelle il a été découpé, le traitement particulier qu'ont subi les fragments ainsi obtenus et la nature de l'insert qui a été fixé dans les sites ainsi révélés. Le phage M 13 mp 7 est commercialisé par la société BRL. M 13 mp 701 est obtenu à partir de M 13 mp 7par remplacement du fragment Pst I Eco RI à droite (CTG CAG GAA TTC) par la séquence: CTG CAG CAA TTC. Le principe de la construction est décrit dans le schéma suivant: AIG ACC AIG ATT ACG AAT TCC CCG GAI CCG TCG ACC TGC AGC AAT ICA CTG GCC Bam Hi,1 AT GACCAT GAITAC GAAT TCCCCG TACTGGTACTAATGCTTAAGGGGCCTAG GATCCGTCGACCTGCAGCAAI TCACI GGCC GCAGCTGGACGTCGTTAAGTGACCGG DNA polyserase ATGACCAIGAITACGA Ai TCCCCGGATC TACTGGI ACTAATGCT TAAGGGGCCTAG Linker Hind Il I ATGACCATGATTACGAATICCCCGGATCCCAAGCTTGG TACTGGTACJ AATGCTTAAGGGGCCTAGGGTTCGAACC Hind II{ Al GACCAIGATTACGAATTCCCCGGATCCCA IACTGGTA'C 1 AAT GCTTAAGGGGCCTAGGGTTCGA GAI CC GTC GA CCT GCA GCAATT CAC G GCC CTAGGCAGCTGGACGTCGTIAAGTGACCGG CCAAGCTTGGGATCCGTCGACCTGCAGCAAT TCACTGGCC GGT TCGAACCCTAGGCAGCTGGACGTCGTTAAGT GACCGG AGCTTGGGATCCGTCGACCTGCAGCAATTCACTGGCC ACCCTAGGCAGCI GGACGTCGTTAAGTGACCGG T 4 ONA ligase AIG ACC A 7 G ATT ACG AAT f CC CCG GAI CCC AAG CII GGG ATC CGT CGA -CCI GCA GCA ATT CAC IGG CC Eco RI Bam HI Hind III Bam HI Sal 1 pstt MI 3 mp 7 Ol is asegionu el aed quewai Traq 'Div aud ab'ess'r Tduiai 'II-4 sd a-4 Ts a I suep irne-4 uldiepe T GP u OT:eb TT (-;) sdtuúlw op imue R mo Ds qu Guifipag (a) edtuúlw op I 4 sd-liipg TH;uawbea; (p) DIDIVDVD 09 T Aaoqdso Md uou Il Tb U aouanbas op anaqeldvpu (D) JJIPUTH anaqvqdepel juv Aie asvq aunp aqequods uo Tqglpp (q) DDIIDDVVD De 9 T 2 otldsotld III Pu TH G Ouanb G-s op anaquidepe (P) lqsd IHWVE IIIPUTH Tuqueaed DOUT OP P -i-p op 4 aesu T quawal Teai WEZATTO op aq 1 S MON uo Tqeluewgldwo D aseqd asletid aset 1 d v- % O % O 1 NO C%à Ln eu Zo Tbq op 14 sd-ildocs quau 6 e 2 j ( 9) va=VD znaquldupu (V)IIIPUTH aouanb 9 s IHW'e El (p) i,4 Sd -IIIPUTH (O) Ii Tb E vouanbas (q)IIIPUTH aouanbes (v)IIIPUTH a Duenbgs (v) IIIPUTH aouanb 9 s e)IIIPUTH aouanbgs I il I I I il Ili il I I II III I Ili I I I Ili il III II il III Ili I ozlbqúTw LdwúTN Io Ldwclw olibic 1 w ollb,4 úTw Oi TbqúTw Zo Tbletw zolbqúlw TO Lduiúlw jo LdwúTw LdwúTW TZI-6 qclw C) E Tbqúlw 91 lb'4 úIW LI 16-4 ET W 9 T 161 E liq ST TbqúTW ZT 16 '4 úTW 1 1 T 64 ET W OT 161 úTW T,51 E TW TO LdwúTW "Toa NOV Bsv 9 T Dnuls lqsd-luooz "TOJ NCV Iqsc I-III Pu TH asuglonui S ildoos *TOJ NCV IHI Ue El T Od NCV IHME 1 Gs V 9 Tc)nu Ts IDDV *T Od NOV IDDV AOT Iu GE d-c u OT-4 ona ISUOD 4- II avalavi Les protocoles d'utilisation des enzymes (restriction, DNA polymérase, T 4 DNA ligase) sont ceux indiqués dans les notices des fournisseurs. Le linker Hind III est un oligonucléotide synthétique de séquence ' 3 ' p CCAAGCTTGG (Collaborative Research, Inc, Waltham, Mass 02154, U S A). La séquence du phage recombinant M 13 tg 18 obtenu a été vérifiée. Le DNA double brin des phages M 13 tgl 18 et mp 701 a été purifié selon la méthode de Ish,Hôrowicz D et Burke J F (Nucl Acids Res 9, 2989 2998, ( 1981)), coupé avec les enzymes de restriction appro- priées et déphosphorylé à l'aide de phosphatase alcaline intestinale de veau (Sigma). La figure 4 représente les différents phages Mi 3 er cause ainsi que les phages mp 7 et mp 701 qui ont servi à les élaborer. Sur la figure 4, on a représenté, outre la séquence d'ADN du phage, la protéine correspondante ainsi que les sites de restriction. Sur la droite de la figure on a également fait figurer l'existence -Qu non d'une a-complémentation pour le gène lac lorsque le phage M 13 est inséré dans un E coli, en particulier dans la souche JM 103. Exemple 2 Préparation des fragments du gène de la glycoprotéine de la rage i Purification du fragment de 1,6 Kb Hind III-Pst I Le jilasmide PRG inclus dans la souche de E coli HB 101, a été purifié selon la méthode de lysat clair de Ish-Horowicz 500 ug de DNA plasmi- dial a été coupé par les enzymes de restriction Hind III et Pst I. Le produit de digest a été déposé sur un gel de "low temperature" agarose (BRL) Après migration, le morceau de gel contenant la bande de 1,6 Kb a été découpé, dissout à 67 C, phénolisé et l'ADN précipité à l'éthanol et appliqué sur une colonne de 1 ml de Sephadex G-50 (Pharmacia) équilibré au TE (Tris/H Cl p H 7,5 10 m M; EDTA 1 m M) Les fractions exclues ont été précipitées à l'éthanol ( 2 vol) et reprises dans 100 ul de tampon TE 200 ug de DNA purifié ont été ainsi obtenus. ii Digestion par des enzymes de restriction Pour le clonage de chaque sous fragment, 5 ug de DNA purifié ont été digérés par les enzymes de restriction appropriées. Exemple 3 Clonage des sous fragments Les sous fragments du gène de la glycoprotéine de la rage ont été ligués dans les vecteurs préparés comme indiqué précédemment La ligation a été effectuée mole à mole, dans les conditions préconisées par le fournisseur. Le produit de ligation a ensuite été transformé dans la bactérie E coli J M 103 La présence et la taille des inserts dans les phages M 13 obtenus ont été testés par la méthode de mini lysat de Birnboim H C. et Doly J (Nucl Acids Res 7, 1513-1523 ( 1979)) Des phages recombi- nants ont été obtenus pour les fragments Hind III-Pst I Hind III-Xho I Hind III-Stu I Hind III-Nru I Hind III-Aos II Hind III-Hind II Stu I-Pst I. Exemple 4 Immunoprécipitation des protéines synthétisées Les phages recombinants ont été cultivés dans 10 ml de milieu minimum M 9 ( Miller J H;, Experiments in Molecular Genetics ( 1972)) avec du succinate de sodium ( 0,5 %) comme source de carbone, jusqu'à une DO 660 de 0,25 A ce stade, de l'IPTG a été ajouté à la concentration de 0,1 m M, ainsi que de la L-( 35 S)-méthionine ( 12 u Ci/ml) et de la L- méthionine à la concentration de 5 ug/ml Après 1 h d'incorporation, les bactéries ont été récoltées et lysées en présence de lysozyme à la concentration de 2 mg/ml pendant 5 mn à 4 C Le surnageant clarifié a été incubé à 4 C pendant 16 h avec des anticorps antiglycoprotéine rabique (fournis par l'Institut Wistar, U S A) puis 1 h à 250 C avec 8 mg de protéine A Sepharose (Pharmacia) selon Lathe R et al, Nature 284, 473-474 ( 1980) Après des lavages abondants, cette protéine A a été déposée sur un gel d'acrylamide 10 % + SDS classique (aemmli U K. Nature 227, 680-685 ( 1970)). Après migration, le gel a été traité au PPO, puis séché et mis à exposer (Bonner W M et Laskey R A, Eur J Biochem 46, 83-88 ( 1974)). * IPTG: Isopropyl thiogalactopyranoside ** Cold Spring Harbor Laboratory REVENDICATIONS 1) Vecteur d'expression de la protéine antigénique de la rage, caractérisé en ce qu'il comporte au moins: la séquence d'ADN efficace suivante: AGA GGC CTA TAT AAG TCT TTA AAA GGA GCA TGC AAA CTC AAG TTA TGT GGA GTT CTA GGA CTT AGA CTT ATG GAT GGA ACA TGG GTC GCG, un promoteur de l'expression de cette séquence dans une bactérie. 2) Vecteur selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence d'ADN efficace est la séquence d'ADN clonant pour la glycoprotéine de la rage limitée par les sites: Hind III Aos II; Hind III Hind II ou Hind III Nru I. 3) Vecteur selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence d'ADN efficace est comprise dans la séquence d'ADN codant pour la protéine de la rage limitée par les sites de restriction: Hind III Pst I ou Stu I Pst I. 4) Vecteur selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence d'ADN efficace est comprise dans une séquence d'ADN limitée en 5 ' par un site Hind III. ) Vecteur selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comporte tout ou partie de l'ADN d'un phage M 13. 6) Vecteur selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il comporte tout ou partie de l'ADN d'un phage choisi parmi: M 13 tgl O 2 M 13 tgll O M 13 tglll M 13 tgl 12 M 13 tgl 15 M 13 tgl 16 M 13 tg 117 M 13 tgl 18 M 13 tg 120 M 13 tgl 21. 7) Vecteur selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que le promoteur de l'expression de la séquence d'ADN efficace est un promoteur de bactériophage lambda. 8) Procédé de préparation d'une protéine antigénique de la rage, caractérisé en ce que l'on cultive sur unmilieu approprié une bactérie incorporant un vecteur selon l'une des revendications 1 à 7 et en ce qu'on isole la protéine antigénique ainsi obtenue. 9) Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que la bactérie est un E coli ou un B subtilis ) Protéine antigénique obtenue par la mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 8 et 9. 11) Protéine antigénique de la rage, caractérisée en ce qu'elle comporte au moins la séquence suivante RGLYRS LKGACKLKLCGVL LRLM DGTWV , l 12) Vaccin destiné au traitement ou à la prévention de la rage, caractérisé en ce qu'il comporte au moins une protéine selon l'une des revendications et 11. 13) Vaccin selon la revendication 12, caractérisé en ce que la protéine est présente sous forme d'une solution aqueuse. 14) A titre de vecteur de clonage d'expression les phages M 13 suivants: M 13 tgl O 2 M 13 tgll O M 13 tglll M 13 tgl 12 M 13 tgl 15 Ml 3 tg 116 M 13 tgl 17 M 13 tg 118 M 13 tg 120 M 13 tgl 21.