Brevet FR2530028A2 — publié le 19840113

FR 2530028 A2 19840113 FR 8212074 A 19820709 La présente Addition est relative à des perfed- tionnements apportés au-procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies qui fait l'objet du Brevet principal; elle est plus particulière- ment relative à des perfectionnements apportés aux milieux de séparation utilisés pour recueillir les cellules baso- philes qui constituent ledit réactif. Conformément au Brevet principal, la centrifuga- tion d'un échantillon de sang prélevé chez un patient humain ou animal supposé allergique ou atteint d'une parasitose, provoque la séparation d'une couche leucocytaire et d'un plasma surnageant; après rejet du plasma, la couche leucocytaire est reprise par un tampon non destructeur à l'égard des cellules basophiles, avantageusement constitué par du tampon Hépès CM ou Pipès, après quoi un liquide de densité 1,079-1,085 est injecté sous la suspension ainsi obtenue, pour permettre la séparation des basophiles et l'obtention finale du réactif de diagnostic constitué par une suspension riche en cellules basophiles Une composition du tampon utilisé pour reprendre la couche leucocytaire, donnée à titre d'exemple dans le Brevet principal, est la suivante Hépès, solution molaire 25 ml K Cl 10 % 0,932 ml Ca Cl 2 10 % 0,550 ml Mg C 12 10 % 0,510 ml Na Cl 9 %O ( 7,6 g) 844,11 ml H 20 distillée qsp 1000 ml p H 7,4-7,6 Le liquide de densité 1,079-1,085 mis en oeuvre pour la séparation des cellules basophiles est défini comme présentant une osmolarité comprise entre 280 et 320 milliosmoles et étant avantageusement constitué par un mélange de métrizoate de sodium et de "Ficoll" (qui est un polymère de saccharose et d'épichlorhydrine) ou de "rerco 1 I" (qui est une solution colloïdalc de silice enrobée de polyvinylpyrrolidone) et ayant de préférence la composition suivante: Métrizoate de sodium 15 g "Ficoll" 12, 867 g Eau qsp 165,8 ml Le Premier Certificat d'Addition a proposé une composition quelque peu modifiée pour ledit milieu tampon, laquelle est la suivante, à titre d'exemple: Hépès, solution molaire 4 à 25 ml K Cl 10 % 0,932 ml Ca Cl 2 10 % 0,550 ml Mg C 12 10 % 0,510 ml Na Ci 9 %O 850 à 900 ml Eau qsp 1000 ml p H 7,4-7,6, la composition du liquide de densité utilisé pour la séparation des cellules basophiles n'étant pas modifiée par rapport au Brevet principal. D'autre part, le Premier Certificat d'Addition a proposé des perfectionnements au procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies conforme au Brevet principal Alors que selon le Brevet principal, la couche leucocytaire qui s'est séparée à la suite d'une opération de centrifugation effectuée sur du sang total, est reprise, après rejet du plasma, par un milieu tampon tel qu'indiqué cidessus, après quoi les cellules basophiles sont séparées au moyen d'un liquide de densité 1,079-1,085 injecté sous la suspension de leucocytes dans le milieu tampon, selon le Premier Certi- ficat d'Addition, il est possible d'obtenir la séparation des basophiles sans avoir à procéder à la centrifugation préalable du sang total: en effet, la séparation des cellules basophiles au moyen du liquide de densité sous- jacent est effectuée à partir d'un mélange volume/volume de sang total et d'un tampon Répès de composition appro- priée contenant de l'héparine, le sang total ayant avanta- geusement été prélevé sur de l'éthylèned aminetétraacétate de potassium (EDTA K 3) Le tampon utilisé en pareil cas présente avantageusement la composition suivante Hépès, solution molaire 4 à 25 ml K Cl 10 % 0,932 ml Na Cl 9 %, 850 à 900 ml Héparine 5 à 20 unités/ml et de préférence 10 unités/ml Eau qsp 1000 ml p H 7,4-7,6 L'utilisation d'un tampon Hépès contenant de l'héparine a permis de supprimer une première étape de centrifugation destinée à séparer la couche leucocytaire du plasma pour la traiter par le liquide de densité en vue de la séparation des basophiles, et de simplifier, par conséquent, le procédé de séparation des basophiles en traitant directement un mélange de sang total et de tampon Hépès hépariné par le liquide de densité. La présente Addition a pour but de simplifier encore le procédé de séparation des basophiles selon le Brevet principal et la Première Addition, tout en conser- vant les avantages et plus particulièrement l'avantage représenté par la concentration élevée en polynucléaires basophiles du réactif et l'avantage représenté par le taux élevé de dégranulation observé dans le test de diagnostic des allergies et des parasitoses réalisé à l'aide du réactif. Conformément à la présente Addition, le procédé de préparation du réactif de diagnostic des parasitoses et des allergies conforme au Brevet principal consiste à déposer un échantillon de sang total prélevé de préférence en milieu d'acide éthylènediaminetétraacétique ou de l'un de ses sels, chez un patient humain ou animal sup Dosé atteint d'une parasitose ou d'une allergie,mélangé à un volume égal du tampon Hépès hépariné décrit ci-dessus, sur un milieu de séparation des basophiles qui contient principalement du tampon Hép's, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1, 077-1,085, puis à centrifuger cette composition pendant une durée et à une vitesse appropriées, pour obtenir un anneau contenant les basophiles et les lympho- cytes, lequel est prélevé et lavé soigneusement avec du tampon-Hépès de composition appropriée qui est ensuite rejeté pour ne conserver que le culot cellulaire qui, après remise en suspension, est prêt à être déposé dans les puits d'une lame ou d'une boîte de lecture de diagnostic dans certains desquels a été préalablement introduit du tampon et dans certains autres desquels ont été préalablement introduits des dilutions d'allergène(s) ou d'antigène(s) parasitaire(s). Selon un mode de réalisation avantageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre confor- mément à la présente Addition, celui-ci contient de préfé- rence de l'héparine, de préférence sous la forme de l'un de ses sels alcalins et plus particulièrement de son sel de sodium. Selon un autre mode de réalisation avantageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre confor- mément à la présente Addition, le sel d'un acide iodo- benzénique hydrosoluble qu'il comprend, est avantageuse- ment pris dans le groupe qui comprend des sels d'acides triiodo ou hexaiodobenzéniques hydrosolubles et plus particulièrement l'ioxitalamate de sodium et/ou de méglumine, l'ioxitalamate de méglumine et de-monoéthanol- amine, l'ioxaglate de sodium et/ou de méglumine, etc Selon encore un autre mode de réalisation avan- tageux du milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre conformément à la présente Addition, celui-ci est constitué par une solution aqueuse contenant principale- ment de 3,5 à 55 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de polyvinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre de sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble. Le milieu de séparation des basophiles conforme à la présente Addition présente avantageusement la compo- sition suivante Hépès, solution molaire 3,5 à 5,5 ml K Cl 10 % 0,49 ml Na Cl 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 25007500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220-250 ml Eau qsp 1 litre Densité 1,079-1,085 p H 7,35-7,50 à 370 C Conformément à la présente Addition, le kit prêt à l'emploi pour la réalisation du test de diagnostic des parasitoses et des allergies conforme au Brevet principal comprend un ensemble de composants pour la séparation des cellules basophiles, constitués par une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée d'un milieu de séparation des basophiles conforme à la présente Addition, et une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée de tampon Hépès selon la Revendication 10 de la Première Addition, pour le lavage de l'anneau lymphocytaire séparé par le milieu de séparation; et un ensemble de composants pour la réalisation du test de diagnostic, constitués par une pluralité de lames ou de boîtes de lecture de diagnostic, présentant chacune un certain nombre de puits dont la majeure partie, à l'exception des puits témoins, sont destinés à recevoir des quantités prédéterminées variables d'un ou de plusieurs antigènes spécifiques d'une ou de plusieurs allergies ou d'une ou plusieurs parasitoses à diagnostiquer ou à dépister, une pluralité d'ampoules ou de tubes renfermant des quantités prédosées d'une solution de fixation et de coloration rapides, simultanées, du type des solutions selon l'une quelconque des Revendications 1 à 7 de la Première Addition, un tube de milieu de monta- ge optique destiné à être disposé entre les lames de lecture préparées pour le diagnostic et des-lamelles de protection, et une pluralité de lamelles de protection. Grâce à la mise au point d'un milieu de sépara- tion approprié, c'est le sang prélevé (avantageusement sur du sel de potassium de l'acide éthylènediaminetétra- acétique) préalablement mélangé avec du tampon Hépès, qui est directement déposé, sans centrifugation préalable, sur le milieu de densité qui réalise la séparation lors d'une centrifugation postérieure, ce processus simplifié étant rendu possible par la présence dans le milieu de densité, d'un composé iodé qui favorise la séparation de l'anneau contenant les basophiles et les lymphocytes. Outre les dispositions qui précèdent, l'inven- tion comprend encore d'autres dispositions qui ressorti- ront de la description qui va suivre. L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à un exemple de mise en oeuvre du procédé objet de la présente Addition. Il doit être bien entendu, toutefois, que cet exemple de mise en oeuvre est donné uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont il ne constitue en aucune manière une limitation. MXEMPLE I Préparatio r i de diansti parasitoses et d'allergies 1 On prélève chez un patient à jeun, supposé atteint d'une ou de plusieurs parasitoses ou allergies, ml de sang veineux sur de l'EDTA K 3 pour avoir une concentration finale de 1,5 mg d'EDTA K 3 par ml de sang; on le mélanga à 5 m I de tampon Ilépès contenant de l'héparine. 2 Dans un tube ( 1) à fond rond centrifugeable, on place 5 ml d'un milieu de séparation de basophiles dont la composition est la suivante: Hépès, solution molaire 0,369 ml K Cl 10 % 0,049 ml Na Cl 9 % 4,63 ml Héparinate de sodium 263 unités ( 1,65 mg) Polyvinylpyrrolidone 2 g Ioxaglate de sodium et de méglumine (diffusé sous la 23,7 ml marque "HEXABRIX" des Laboratoires GUERBET) H 20 qsp 95 ml + 5 ml environ pour ajuster la densité à 1,080 g/ml p H 7,42 à 37- C 3 On dépose doucement dans ce tube ( 1) à la surface du milieu de séparation, à l'aide d'une pipette Pasteur,le mélange volume à volume d'échantillon de sang et de tampon Hépès contenant de l'héparine,préparé en 1 - ci-dessus. 4 On centrifuge ce tube pendant 30 minutes, à 400 g Le tampon Hépès contenant le K Cl et le Na Cl se sépare du milieu de séparation proprement dit constitué par le mélange de 'l"HEXABRIX" et de polyvinylpyrrolidone dans un tampon Hépès,et à la limite entre les deux, il se forme un anneau blanchâtre que l'on prélève en totalité ( 1 à 3 ml) à l'aide d'une pipette Pasteur montée sur seringue ou poire. Le milieu cellulaire ainsi obtenu est déposé dans un tube ( 2) à centrifuger contenant du milieu tampon Hépès hépariné présentant la composition suivante Hépès, solution molaire 4 à 25 ml K Cl 10 % 0,932 ml Na Cl 9 % 85 à 90 ml Héparinate de sodium 5000 à 10000 unités Eau qsp 1000 ml - p H 7,4-7,6 à 37 C à l'aide duquel il est lavé au cours d'une centrifugation de 10 minutes à 150 g Le surnageant est prélevé jusqu'à la rupture de pente du tube (volume restant 0,5 ml), ou bien on peut, en variante, de façon tout aussi efficace, éliminer le surnageant en retournant le tube 3 secondes et reprendre le culot cellulaire par environ 0,5 ml du même tampon Hépès. Dans les deux cas, le culot cellulaire est-homo- généisé totalement pendant 30-50 secondes par agitation manuelle ou au VORTEX (Marque déposée). II Test de diagnostic 1 Le culot cellulaire mis en suspension est déposé par fractions de 20 "l dans chacun des puits d'une lame de lecture de diagnostic, qui peuvent éventuellement contenir du Ca Cl 2 et du Mg C 12 La lame est ensuite mise dans' une boîte couverte (type boîte de Pétri) contenant un morceau de coton humide L'ensemble est placé à l'étuve à 370 C pendant 20 minutes. Puis le couvercle de la botte et le coton sont enlevés La lame, toujours à l'étuve, est ainsi séchée en environ 15 à 30 minutes On peut aussi sécher les lames au sèche-cheveux. La fixation/coloration est obtenue en recouvrant chacun des puits d'une solution de coloration et de fixation rapides, simultanées, décrite dans l'Art antérieur La lame est ainsi laissée sur la paillasse pen- dant 15 minutes, puis est rincée dans un bain d'eau ( 30 secondes), déshydratée dans un bain d'éthanol absolu ( 20 à 30 secondes) et plongée quelques secondes dans un bain de xylène pour faciliter le montage. Une goutte de milieu de montage est déposée sur une lamelle Celle-ci est ensuite appliquée sur la lame. à 15 minutes sont nécessaires pour sécher l'ensemble (on peut accélérer le séchage en mettant la lame à l'étuve- ou sous un sèche-cheveux),. 2 Lecture du test Elle est réalisée au microscope optique ordinaire Il est préférable de disposer d'objectifs et d'oculaires "grand-champ" et de qualité suffisante pour procurer une mise au point parfaite sur l'ensemble du champ Elle peut avantageusement être pratiquée à l'aide d'une caméra de télévision montée sur le microscope et reliée à un "ordinateur" type "OPTOMAX" -(Marque déposée) en noir et blanc Cette technique de lecture du test est décrite dans "ALLERGY", 1981, 36, 239- 244, F LEYNADIER, H LUCE, A ABREGO et J DRY "Automated Measurement of human basophil degranulation"' Le grandissement utilisé est variable avec le nombre de basophiles En général de 400, il peut être porté à 1000 (immersion) en cas de grande richesse en basophiles, ou au contraire à 250 si l'observateur est habitué. Les basophiles sont reconnus grâce à leur colo- ration foncée par rapport aux autres cellules (essentiel- lement lymphocytes et monocytes) et surtout à la teinte violette parfois rouge différente de la coloration bleue (claire ou foncée) des autres cellules. Les basophiles sont comptés sur chacun des puits Dans la grande majorité des cas, vingt champs microscopiques sont suffisants (dix champs au hasard dans un diamètre vertical et dix champs au hasard dans un diamètre horizontal) L'important est, bien entendu, qu'un même nombre de champs soit examiné sur chacun des puits. En ajoutant les nombres de basophiles trouvés dans les puits identiques A et B, on obtient: T = nombre de basophiles sans antigène ou nombre total de basophiles Ag ( 1,2, 3 ou 4) = nombre de basophiles avec antigène(s) à la dilution 1,2,3 ou 4 On détermine l'index de dégranulation (I D) pour chaque dilution d'antigène(s) par la relation suivante I.D % = T Au 100 T c'est-à-dire le nombre de basophiles ayant dégranulé à une dilution donnée par rapport au nombre total de basophiles présents dans le témoin T (cette valeur étant exprimée en pourcentage). Le Tableau ci-dessous montre que le pourcentage de dégranulation est sensiblement du même ordre lorsqu'il est pratiqué avec du réactif constitué par des basophiles isolés de sujets allergiques en utilisant le procédé de préparation du réactif qui fait l'objet de la Première Addition, et avec du réactif obtenu par le procédé qui fait l'objet de la présente Addition. TABLEAU Test,exprimé en % de dégranulation, effectué avec du réactif constitué par des basophiles isolés à l'aide du milieu de sépara milieu de sépara- Nn du maladeDate tion selon la tion selon la lère Addition présente Addition, contenant 2 % de PVP T % T % PL. Gwenolla L. Francis C. Nicole P. J.Ph S. Jean G. Martine M. Gilles G. Eliane G. Madeleine L. Christian P. Yvonne B. Ibrahima D. Emile S. Claude B. Michel O. Pascal B. Lev. Dupont Gesl. Palv. Ren. 3/12/81 3/12/81 3/12/81 3/12/81 7/12/81 7/12/81 7/12/81 9/12/81 /12/81 /12/81 /12/81 /12/81 29/12/81 /01/82 /01/82 /01/82 7/01/82 /01/82 /01/82 /01/82 /01/82 27/01/82 o o o O o O -O O T = Nombre de basophiles comptés sur 10 champs microscopi- ques en l'absence d'antigène (témoin) - - Le réactif de diagnostic conforme aux disposi- tions de la présente Addition, est utilisable non seule- ment pour la réalisation de tests de diagnostic ou de dépistage de parasitoses et d'allergies, mais également au diagnostic d'autres maladies et notamment d'affections bactériennes, immunopathologiques, virales et mycologiques, en particulier, qui provoquent une augmenta- tion des immunoglobulines spécifiques circulantes, et notamment des Ig E. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'in- vention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite; elle en embrasse, au contraire, toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention. REVENDICATIONS 1 Procédé de préparation du réactif de diag- nostic des parasitoses et des allergies selon la Revendi- cation 1 du Brevet principal, caractérisé en ce qu'au cours d'une première étape, un échantillon de sang total, prélevé, de préférence en milieu d'acide éthylènediamine- tétraacétique à l'état libre ou sous forme de l'un de ses sels, chez un patient humain ou animal supposé atteint d'une ou de plusieurs parasitoses ou d'une ou de plusieurs allergies, mélangé sensiblement volume à volume avec un tampon Hépès, est déposé sur un milieu de séparation des basophiles qui contient principalement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodo- benzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077- 1,085, puis en ce qu'au cours d'une deuxième étape, cette composition est centrifugée pendant une durée et à une vi- tesse appropriées, pour obtenir un anneau contenant les basophiles et les lymphocytes, lequel est prélevé et lavé soigneusement avec du tampon Hépès de composition appro- priée qui est ensuite rejeté pour ne conserver que le culot cellulaire qui, après remise en suspension, est prêt à être déposé dans les puits d'une lame ou d'une boîte de lecture de diagnostic dans certains desquels a été préala- blement introduit du tampon et dans certains autres des- quels ont été préalablement introduits des dilutions d'al- lergène(s) ou d'antigène(s) parasitaire(s). 2 Procédé selon la Revendication 1,caractéri- sé en ce que le milieu de séparation des basophiles mis en oeuvre au cours de la première étape du procédé contient de préférence de l'héparine, de préférence sous la forme de l'un de ses sels alcalins, et plus particulièrement de son sel de sodium. 3 Procédé selon la Revendication 1, caractéri- sé en -ce que le sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble que contient le milieu de séparation susdit, est avanta- geusement pris dans le groupe qui comprend des sels d'acides triiodo ou hexaiodobenzéniques hydrosolubles et plus particulièrement l'ioxitalamate de sodium et/ou de méglumine, l'ioxitalamate de méglumine et de monoéthanol- amine, l'ioxaglate de sodium et/ou de méglumine. 4 Procédé selon la Revendication 1, caractéri- sé en ce que ledit milieu de séparation des basophiles est constitué par une solution contenant principalement de 3,5 à 5,5 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de poly- vinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre de sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble. Procédé selon la Revendication 1, caractéri- sé en ce que ledit milieu de séparation des basophiles présente avantageusement la composition suivante: - Hépès, solution molaire 3,5 à 5,5 ml K Cl 10 % 0,49 ml Na Ci 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 2500-7500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220250 ml Eau qsp 1 litre - Densité 1,079-1,085 p H 7,35-7,50 à 37 C. 6 Réactif de diagnostic d'affections qui pro- voquent une augmentation des immunoglobulines spécifiques circulantes, et notamment des Ig E, caractérisé en ce-qu'il est constitué par une suspension de globules blancs porteurs d'Ig E spécifiques, obtenue à partir d'un échan- tillon de sang prélevé chez un patient humain ou animal devant être soumis à un test de diagnostic, laquelle suspension est enrichie en lesdits globules blancs porteurs d'Ig E spécifiques (basophiles) et est obtenue par centrifugation d'une composition constituée par un mélange sensiblement volume à volume dudit échantillon de sang et d'un tampon Hépès de préférence hépariné, déposé sur un milieu de séparation desdits globules blancs, comprenant essentiellement du tampon Hépès, de la polyvinylpyr- rolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077-1,085, le culot cellulaire résultant de ladite centrifugation étant constitué par la suspension de globules blancs porteurs d'Ig E spécifiques (basophiles) qui forme le réactif de diagnostic. 7 Milieu de séparation pour la préparation du réactif de diagnostic selon la Revendication 5 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il contient principalement du tampon Hépès, de la polyvinylpyrrolidone et un sel d'un acide iodobenzénique hydrosoluble, et dont la densité est de 1,077-1,085. 8 Milieu de séparation selon la Revendication 7 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il est constitué par une solution contenant principalement de 3, 5 à 5,5 ml/litre de tampon Hépès, de 5 à 30 g/litre de polyvinylpyrrolidone, de 220 à 250 ml/litre d'un ou plusieurs sels d'acides iodobenzéniques hydrosolubles. 9 Milieu de séparation selon la Revendication 8 ci-dessus, caractérisé en ce qu'il présente avantageu- sement la composition suivante: Hépès, solution molaire 3,5 à 5,5 ml K Cl 10 % 0,49 ml Na Cl 9 % 45-48 ml Héparine sous la forme de l'un de ses sels alcalins 2500-7500 unités Polyvinylpyrrolidone 5-30 g Sel d'acide iodobenzénique hydrosoluble 220-250 ml Eau qsp 1 litre Densité 1,079-1, 085 p H 7,35-7,50 à 37 C Kits prêts à l'emploi pour la réalisation du test de diagnostic des parasitoses et des allergies selon la Revendication 3 du Brevet principal, caractérisés en ce qu'ils comprennent un ensemble de composants pour la séparation des cellules basophiles, constitués par une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédosée du milieu de séparation des basophiles selon la Revendication 5 ci- dessus, et une pluralité de récipients appropriés tels qu'ampoules ou tubes contenant chacun une quantité prédo- sée de tampon Hépès selon la Revendication 10 de la première Addition, pour le lavage de l'anneau lymphocytai- re séparé par le milieu de séparation; et un ensemble de composants pour la réalisation du test de diagnostic, constitués par une pluralité de lames ou de boîtes de lecture de diagnostic, présentant chacune un certain nombre de puits dont la majeure partie, à l'exception des puits témoins, sont destinés à recevoir des quantités pré- déterminées variables d'un ou plusieurs antigènes spécifi- ques d'une ou plusieurs allergies ou d'une ou plusieurs parasitoses à diagnostiquer ou à dépister, une pluralité d'ampoules ou de tubes renfermant des quantités prédosées d'une solution de fixation et de coloration rapides, si- multanées, un tube de milieu de montage optique, et une pluralité de lamelles de protection. 11 Application du réactif de diagnostic selon la Revendication 5 ci-dessus au diagnostic d'une parasito- se ou d'une allergie, au diagnostic simultané de plusieurs parasitoses et/ou allergies et au diagnostic d'autres af- fections qui provoquent une augmentation des immunoglobu- lines spécifiques circulantes et notamment des Ig E, telles que les affections bactériennes, immunopathologiques, virales et mycologiques, en particulier.