Brevet FR2490228A1 — publié le 19820319

Procédé de préparation de solutions de lipoprotéines à partir de résidus de délipidation des plasmas et sérums sanguins, et produits ainsi obtenus. La présente invention concerne un procédé de traite- ment des résidus de délipidation des plasmas et sérums sanguins et de stabilisation des solutions de lipoprotéines récupérées à partir de ces résidus. L'obtention et l'utilisation de sérums de contrôle ou de calibration à taux élevé de lipides posent des problèmes complexes. En effet, la présence de lipides entraîne une turbidité élevée de ces sérums les rendant impropres à l'usage diagnostique. Mais la nécessité d'augmenter les taux de lipides et particulièrement de cholestérol des sérums de contrôle et de calibration a suscité un certain nombre de techniques: - "solubilisation" du cholestérol à l'aide d'agents tensio-actifs (FOX.C. Diagnostic aid, brevet des Etats-Unis d'Amérique n0 3 260 648 du 12 juillet 1966); - utilisation de dérivés solubles du cholestérol (B. KLEIN, brevet des Etats-Unis d'Amérique n0 3 859 047 du 7 janvier 1975); - utilisation de lipoprotéines bovines séparées par précipitation par le sulfate de dextrane (G.J. PROKSCH et D.P. BONDERMAN, Clinical Chemistry, 1976, 22/8, 1302-1305); - utilisation de protéines humaines (J.M. WILLIAMS, L. TAYLOR, M. KUCHMCK, R.F. WITTER, Clinica Chimica Acta 1970, (28) 247.253); - utilisation d'échangeurs d'ions tels que poly- saccharides réticulés, sulfatés, insolubles pour la séparation des lipoprotéines (Brevet de la Development Finance Corporation of New Zealand, n0 180 199 du 4 mars 1976). Actuellement, de nombreux auteurs soulignent la nécessité d'utiliser, pour la calibration et le contrôle du bilan lipidique, des sérums ou étalons dont la sensibilité vis-à-vis de l'attaque enzymatique et les propriétés électrophorétiques soient très proches du sérum humain. Les techniques utilisant un cholestérol "solubilisé" ne sont donc pas utilisables dans cette optique. La technique consistant à précipiter les lipopro- téines par le sulfate de dextrane sur un autre polymère soluble a comme inconvénient la difficulté d'éliminer ultérieurement le poly- mère utilisé. L'utilisation d'échangeurs d'ions est difficile à transposer à l'échelle industrielle. Enfin, vu la dénaturation des lipoprotéines lors de la lyophilisation, il importe de trouver un procédé de stabi- lisation des lipoprotéines. La technique de délipidation des sérums par l'acide silicique décrite par W. STEPMAN et L. ROKA (Z. Klin. Chem. u. klin. Biochem., 1968, 6 (3) 186-190) était utilisée pour préparer des sérums dont la composition (hormis les lipoprotéines) est stable et proche de celle d'un sérum non traité. Toutefois, les résidus lipidiques de cette délipidation n'étaient pas utilisés. Aussi, la présente invention a pour but, d'une part, de récupérer ces sous-produits pour les utiliser dans le domaine diagnostique, pharmaceutique ou cosmétique, d'autre part, de stabiliser les solutions de lipoprotéines récupérées afin d'ob- tenir des solutions de calibration ou de contrôle n'ayant pas les inconvénients des sérums lyophilisés. L'invention concerne un procédé de préparation de solutions stables de lipoprotéines à partir des produits bruts de délipidation du plasma ou du sérum sanguin par l'acide silicique ou ses dérivés et l'utilisation des solutions ainsi obtenues dans le domaine diagnostique, pharmaceutique ou cosmétique. Le procédé de l'invention est caractérisé en ce qu'on opère en deux étapes: la première consistant à traiter les produits bruts de délipidation de façon à obtenir une solution saline de lipoprotéines; la seconde consistant à stabiliser la solution ainsi obtenue. La matière première utilisée est le produit brut de délipidation des sérums et plasmas bovins ou humains selon le procédé connu d'adsorption sur l'acide silicique. Dans ce procédé, le sérum ou le plasma est mis en contact avec de la silice colloïdale (par exemple Aérosil 380 vendu par DEGUSSA, RFA) à une concentration de 0,2 à 20 %, de préférence de 1 à 5 %. On agite après avoir ajusté le pH à des valeurs physiologiques (entre pH 7 et 7,5). La première étape du procédé selon l'invention comporte elle-même les opérations suivantes. Après avoir séparé, par filtration ou centrifu- gation, le précipité obtenu par agitation du plasma ou du sérum sanguin avec l'acide silicique, on lave ce précipité avec une solution de chlorure de sodium à pH neutre. On utilise de préfé- rence une solution à 100 g/l de chlorure de sodium, et on répète l'opération de lavage de 3 à 5 fois. Le précipité est ensuite essoré et remis en solu- tion dans l'eau distillée et on agite la solution additionnée de chlorure de sodium. De préférence, le précipité est repris par un poids égal d'eau et on lui ajoute un poids de chlorure de sodium égal à la moitié de son poids; on ajuste le pH entre 10 et Il et de préférence 10,5 et on agite pendant 0,5 à 10 h et de préfé- rence 0,5 h. Le mélange est alors centrifugé ou filtré au filtre- presse. Le liquide est récupéré, concentré, puis dialysé contre une solution de chlorure de sodium à 9 g/l. La solution obtenue est désignée par la suite sous le nom de solution saline de lipoprotéines. La nature des lipoprotéines ainsi récupérées varie selon la nature du sérum ou du plasma utilisé comme matière pre- mière: les sérums ou plasmas bovins sont une excellente source de lipoprotéines de haute densité; les sérums ou plasmas humains permettent d'obtenir des solutions contenant diverses classes de lipoprotéines: de très basse, intermédiaire, basse et haute den- sités. Dans la seconde étape du procédé selon l'invention, les solutions de lipoprotéines obtenues après la première étape sont stabilisées, soit par addition de tampons, soit par addition d'antiseptiques. Diverses catégories de tampons peuvent être uti- lisées: - des tampons tels que le tampon phosphate; la molarité peut alors varier de 10 à 500 mmoles/ml, le pH étant compris entre 6,5 et 8,5 et de préférence égal à 7; - des tampons mixtes tels que phosphate- carbonate dans les mêmes conditions que le tampon phosphate; - des tampons aminés substitués ou non - des tampons "zwitterioniques", de tels tampons étant d'excellents chêlateurs de cations métalliques qui entraînent la précipitation des lipoprotéines. Ainsi, il est possible d'uti- liser des tampons dont la fonction basique est une amine et la fonction acide, une fonction acide carboxylique ou acide sulfonique, tels que: - le MPS ou acide morpholino-3-propane sulfonique; - le PIPES ou acide pipérazine diéthanesulfonique-l,4; - le TES acide N tris (hydroxyméthyl)méthyl-2-amino-2-éthane sulfonique; ou tout autre tampon zwitterionique de pH adapté. Les antiseptiques utilisables pour stabiliser les solutions de lipoprotéines sont ceux qui ne les dénaturent pas, tels que: - l'azide de sodium, les ammoniums quaternaires alkylés, arylés ou alkylarylés, les alcools et leurs dérivés substitués ou halo- génés, les composés aromatiques ou phénoliques, ne contenant pas de mercure, les dérivés d'éthers cycliques, tels que les dérivés bromés et nitrés du dioxane; - ainsi, par exemple, le Bronidox, marque déposée par la Société HENKEL (RFA) pour le bromo-nitrodioxane, sera utilisé à la concentration de 4/0o0; 25. l'orthophénylphénol à 0,5/.; la chlorhexidine à 0,050/,o Les utilisations des solutions de lipoprotéines obtenues selon l'invention sont les suivantes: - les solutions salines de lipoprotéines peuvent servir à surcharger des sérums de calibration ou de contrôle lyo- philisés. Ces sérums de contrôle ou de calibration peuvent servir pour l'étalonnage ou le contrôle des dosages des constituants suivants dans le sang: triglycérides, cholestérol, phospholipides, apoprotéines ainsi que pour le dosage des mêmes constituants dans t49O228 les diverses fractions de lipoprotéines, ces dosages pouvant être effectués par des procédés physiques, chimiques, immunolo.giques ou radioimmunologiques; - les solutions stabilisées de lipoprotéines peuvent, outre les usages définis ci-dessus, être utilisées comme sérum de contrôle pour l'électrophorèse,l'immunodiffusion, l'immuno- précipitation, l'électroimmunodiffusion ou tout autre procédé enzy- matique immunologique; - les solutions stabilisées peuvent être utilisées comme substrat pour les dosages des activités enzymatiques impliquées dans le métabolisme lipidique, telles que - lipoprotéine-lipase; - lécithine, cholestérol-acyltrànsférase, lipase; ou toute autre activité enzymatique nécessitant l'un quelconque des constitants énoncés ci-dessus - de plus, les solutions salines de lipoprotéines ou les solutions stabilisées de lipoprotéines peuvent être utilisées comme source de lipides ou de lipoprotéines dans l'industrie cos- métique; - enfin, les solutions de lipoprotéines, stabi- lisées ou non, peuvent être utilisées pour l'élaboration de crèmes, pommades, lotions ou tout autre produit à usage cosmétique ou phar- maceutique. 249O228 --6 REVENDICATIONS 1. Procédé de préparation de solutions stables de lipoprotéines à partir des produits bruts de délipidation du plasma ou du sérum sanguin par l'acide silicique ou ses dérivés, caractérisé en ce qu'on opère en deux étapes, la première consistant en la préparation de solutions salines à partir des produits bruts de délipidation, la seconde en la stabilisation des solutions ob- tenues précédemment. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que, dans la première étape, on prépare les solutions salines de lipoprotéines à partir du précipité obtenu par extraction du plasma ou sérum par l'acide silicique ou ses dérivés et filtration par les opérations suivantes: lavage du précipité par une solution de chlorure de sodium à pH neutre, essorage, remise en solution du précipité dans l'eau distillée, addition de chlorure de sodium, ajustement du pH entre 10 et 11 et agitation, concentration du liquide récupéré par ultrafiltration, et dialyse de ce liquide contre une solution de chlorure de sodium e 9 g/l. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que le lavage du précipité par le chlorure de sodium s'ef- fectue avec une solution à 100 g/l de ce sel et que 3 à 5 lavages sont nécessaires. 4. Procédé selon l'une des revendications 2 et 3, caractérisé en ce que le précipité essoré est remis en solution dans un poids égal d'eau distillée, puis on ajoute sous agitation un poids de chlorure de sodium égal à la moitié du poids du préci- pité et on agite pendant 0,5 à 10 h, après avoir ajusté le pli entre et 11 et de préférence à 10,5. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que, dans la seconde étape, on stabilise la solu- tion saline de lipoprotéines en lui ajoutant un tampon, la molarité pouvant varier de 10 à 500 mmoles/l, le pH étant compris entre 6,5 et 8,5 et de préférence égal à 7. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que l'on choisit le tampon utilisé parmi les suivants: tampon phosphate, tampons mixtes tels que phosphate-carbonate, tampons aminés, tampons zwitterioniques. 7. Procédé selon l'une des revendications 5 et 6, caractérisé en ce que le tampon zwitterionique est choisi parmi les suivants: - acide morpholino-3-propanesulfonique; - acide pipérazinediéthylsulfonique-l,4; - acide N tris (hydroxyméthyl)-méthyl-2-amino-2-éthane sulfonique. 8. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'on stabilise la solution saline de lipopro- téines par addition d'antiseptiques non dénaturants pour les lipo- protéines, tels que l'azide de sodium, les ammoniums quaternaires alkylés, arylés ou alkylarylés, les alcools et leurs dérivés halo- génés, les composés aromatiques ou phénoliques ne contenant pas de mercure, les dérivés d'éthers cycliques, tels que les dérivés bromés et nitrés du dioxane. 9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'antiseptique est choisi parmi les suivants: - le bromonitrodioxane, de préférence à la concentration de 4 /oo; - l'orthophénylphénol,de préférence à la concentration de 0,5/.; - la chlorhexidine,de préférence à la concentration de 0,05/00. 10. Les solutions salines de lipoprotéines pré- parées selon l'une des revendications 1 à 4. 11. Les solutions stabilisées de lipoprotéines préparées selon l'une des revendications 1 à 9.