Brevet FR2498192A2 — publié le 19820723

FR 2498192 A2 19820723 FR 8101176 A 19810122 i 149119 2 *' La présente invention concerne des nouveaux développements apportés à l'objet de la demande de brevet principal (demande de brevet FR 79.29.289). Dans la demande de brevet FR 79.29.289 on a décrit un nouveau composé polypeptidique thiolé provenant de la toxine tétanique, son procédé d'obtention et ses applica- tions. Ce composé polypeptidique thiolé est constitué par le fragment BIIb de la toxine tétanique sur lequelest fixé au moins un groupe -SH; ce composé présente sensiblement les mê- mes propriétés de transport rétrograde axonal et de fixation sur les récepteurs de la toxine tétanique que le fragment BIIb lui-même. Ce composé polypeptidique thiolé convient comme agent de transport neuropharmacologique pour véhiculer vers le système nerveux central des agents pharmacologiques ou chimiothérapeutiques. Ce composé polypeptidique convient aussi comme marqueur de cellules neuronales. Les propriétés de ce composé polypeptidique thiolé sont également décrites dans Brain Research 193 (1980) 221-227. On a maintenant trouvé un nouveau composé polypeptidique thiolé provenant d'un autre fragment de la toxine tétanique, qui peut être également utilisé comme a- gent de transport neuropharmacologique pour véhiculer vers le système nerveux central des agents pharmacologiques ou chimiothérapeutiques. La présente invention concerne donc un nou- veau composé polypeptidique thiolé, son obtention et ses applications. Le composé polypeptidique thiolé selon l'invention est constitué par le fragment IIc de la toxine tétanique sur lequel est fixé au moins un groupe -SH et présente sensiblement les mêmes propriétés de transport ré- trograde axonal et de fixation sur les récepteurs de la toxine tétanique que le fragment IIc lui-même. Le fragment BlIb de la toxine tétanique est obtenu à partir d'un filtrat congelé de culture de Clostridium tetani (souche Harvard n0 6037 de la Collec- tion Nationale de Culture de Microorganismes de l'Institut Pasteur) par ultrafiltration pour éliminer les substances 2 ? 2498192 " inférieur ayant un poids moléculaire/à 10.000: fractionnement à l'aide de sulfate d'ammonium et filtration sur gel. Un certain nombre de fragments semblables aux frag- ments BIIb peuvent être obtenus par digestion à l'aide de papaine,dela toxine tétanique entière ou de sa chaîne lour- de(fragment bêta). A cet effet on peut se référer aux arti- cles ci-après: - Bizzini,B. et Raynaud, M., Etude immunologique et biologique de sous-unités de la toxine tétanique. C.R. Acad. Sci.(Paris),279,série D (1974) 1809-1812. - Bizzini, B., Symposium International sur les venins et les toxines, 4-6 Mars 1977,Bombay (Inde); résumé publié dans Toxicon (1978),volume 15, p.141. - Bizzini, B., Tetanus toxin.Microbiol.,Rev., 43(1979) 224-240. Le fragment Il est obtenu par digestion de la toxi- ne tétanique purifiée à l'aide de papaine insolubilisée sur un gel,le "Sepharose 4B" activé avec du bromure de cyanogène se- lon le mode opératoire décrit dans le Compte Rendu de l'Aca- démie des Sciences cité précédemment /-t.279 décembre 1974; série D-1809 7,si ce n'est que la digestion a été effectuée pendant 4 heures seulement. On indiquera ci-après le mode opératoire pour obtenir le fragment IlI utilisé-comme-composé de départpour l'obtention du composé polypeptidique selon-l'invention. On a utilisé de la toxine tétanique purifiée provenant d'un filtrat de cul- ture de Clostridium tetani de 5 jours obtenu selon le proce- dé décrit par: - Bizzini, B., Turpin, A et Raynaud, M.Production et purification de la toxine tétanique,Ann.Inst.Pasteur,PARIS 116 (1969)686-712. La toxine tétanique,purifiée ainsi obtenue titrait 3150 Lf (Limes floculationis ou Unité defloculation)par mg de N et 1,2.108 DMM (Dose minima mortelle) par mg de N. 120mg de la toxine tétanique purifiée ont été trai- tés, pendant 4 heures à 37 C dans un bain d'eau, avec 200 u- nités de papaîne insolubilisée, avec agitation occasionnel- le. 3 2498192" A la fin de la période de digestion, la pa- paine a été immédiatement éliminée par centrifugation pen- dant 5 minutes à 10000 g dans une centrifugeuse réfrigérée à 4 C. Le surnageant a été filtré sur une colonne de " Sephadex G-100" (2,5 x 80 cm) équilibrée avec du tam- pon 0,1 M Tris, HCI, pH8, contenant 1 M de NaCl. L'effluent a été continuellement contrôlé à 280 nm et recueilli par fraction de 2 ml. Les fractions correspondant au pic, ayant un poids moléculaire voisin de 45000, ont été combinées. Le volume des fractions combinées a été réduit jusqu'à 2 ml a- vant d'être filtré sur une colonne (2,5 x 80 cm) de gel de polyacrylamide-agarose connu sous la dénomination commer- ciale "Ultrogel AcA 54" en utilisant le même tampon. Les fractions représentant le pic principal ont été combinées et le volume résultant a été réduit jusqu'à 3 ml par dialy- se contre une solution à 50% de polyéthylèneglycol 20.000 (Sigma). La toxine non digérée ou le fragment Ibc qui peuvent contaminer le fragment II ont été adsorbés sur une c colonne d'affinité de gel "Sepharose" activé au bromure de cyanogène sur lequel a été couplé au préalable, de manière covalente, la fraction IgG d'un sérum anti-Ibc. La fraction non adsorbée contenue dans le filtrat constitue le fragment IIC. Ce fragment n'est pas toxique chez la souris à la do- se de 1 mg en une fois. La colonne d'affinité a été préparée selon le mode opératoire ci-après. La fraction I G a été isolée par g précipitation de l'antisérum antifragment Ibc. La fraction IgG anti-fragment titrait 1500 Lf par ml. La fraction IgG, a été couplée à du "Sepharose 4B" activé au bromure de cyano- gène selon le mode opératoire décrit par Wilchek et al. "A general method for the specific isolation of peptides con- taining modified residues, using insoluble antibody co- lumns. Biochemistry 10 (1971) 2828-2834". Le fragment IIc présente les propriétés physicochimiques ci-après: 24987i2" - poids moléculaire d'environ 46.000 - il interagit avec les gangliosides - il est dépourvu de toxicité - il intéragit avec les membranes synaptiques isolées de moële épinière de rats. Les propriétés immunologiques du fragment II sont les suivantes: le fragment II donne une réaction croisée avec la to- c xine tétanique et sa chaîne lourde (fragment 3). Le fragment IIC donne une réaction d'identité avec e fragment B-IIb; le fragment IlC donne une réaction de non identité avec le frag- ment Ibc et la chaîne légère (fragment ") Les caractéristiques principales du fragment IIC sont résumées dans les articles de B. Bizzini (Microbiological Reviews, Juin 1979, p. 224-240 et Toxicon (1978), vol.15, p.l41) dans lesquels il est indiqué que les fragments semblables au fragment BIIb peuvent être obtenus par di- gestion à l'aide de papaine et qu'il est probable que ces fragments contiennent la partie de la chaine lourde qui est impliquée dans la liaison de la molécule de toxine à ses ré- cepteurs dans la cellule nerveuse. D'autre part, il est in- diqué que les fragments de toxine tétanique qui possèdent encore la capacité de liaison avec les gangliosides de- vraient être transportés de façon rétrograde axonale comme la toxine entière. On a maintenant trouvé que le fragment IIc pou- vait se fixer sur les membranes synoptiques et qu'il peut être transporté de façon rétrograde axonale, vers le système nerveux central. Le fragment Il thiolé, ob- jet de la présente invention, est également transpor- té de façon rétrograde axonale vers le système ner- veux-central et il se fixe sur les membranes synoptiques. Etant donné que dans ce domaine une modification chimique quelconque peut inhiber les propriétés pharmacologiques d'un fragment il n'était pas du tout évident, même en pré- sence des enseignements relatifs au composé BIIb, que le composé polypeptidique thiolé selon l'invention pouvait 2498192" également être utilisé comme agent de transport rétrograde axonal d'agents pharmacologiques ou chimiothérapeutiques ou comme réactif de diagnos- tic, seul ou associé à une autre substance permettant la mise en éviden- ce, par exemple, d'un antigène spécifique dans le système nerveux cen- tral. La présente invention concerne donc un nouveau composé polypeptidique thiolé constitué par le fragment IIc portant au c moins un groupe -SH qui convient notamment à titre d'agent de transport neuropharmacologique et d'agent de marquage spécifique des cellules neuronales. De façon analogue au procédé pour l'obtention du composé polypeptidique thiolé selon le brevet FR 79 29 289,le ou les grou- pes -SH sont fixés, directement ou indirectement, sur le fragment IIc. En général, compte tenu du procédé pour son obtention, qui implique une thiolation,la fixation des groupes -SH se fera par l'intermédiaire du ré- sidu de l'agent de thiolation. Celui-ci est par ailleurs fixé sur le fragment IIc par l'intermédiaire des groupes -NH2 dont celui-ci est porteur. Le composé polypeptidique thiolé selon la présen- te invention est obtenu par thiolation du fragment IIc obtenu par le pro- cédé décrit ci-dessus. La thiolation du fragment II cpeut être effectuée l'introduction par des moyens classiques permettant/de groupes -SH sur une molécule comportant des groupes amino, mais, pour les besoins de l'invention,les moyens en cause ne doivent pas dénaturer les propriétés de transport axonal et de fixation sur les récepteurs spécifiques de la toxine téta- nique dans le système nerveux central du fragment Il. c A titre d'exemple, on indiquera que la thiola- tion du fragment IIc peut être réalisée avec les agents de thiolation ciaprès: -4 - méthyl-mercaptobutyrimidate: HS- (CH2)3- CO-CH NH +Cl H2 /_Biochemistry vol. 17 n 8, 1978 7 - 2- iminothiolane / Schramm H.3. et Dolffer T. (1977) Z. Physiol. Chem. 358, 137-139 7 - N acétylhomocystéine thiolactone (AHT) /-voir 3. Am. Chem. Soc. 1960, 82, 565-571 7 6 2498 192" H2C C H C CH0 H2C CH 2 I NHCOCH3 - l'anhydride S-acétyl-mercaptosuccinimique (AMS) / J. Am. Chem. Soc. 1959, 81 3802-3803 7 o CH - CO - S - CH - C Io CH - C 2à Par contre, on indiquera que les procédés connus de thiolation consistant en une étape de dithio- pyridylation et en une étape de réduction ne conviennent pas aux fins de l'invention. En effet, les propriétés de trans- port axonal et les propriétés de fixation du fragment IIc ainsi thiolé sont modifiées au cours de l'étape de réduc- tion. Par exemple, la thiolation effectuée par réaction avec le N-succinimidyl-3-(2-pyridyl-dithio)-pro- pionate et par réduction du composé dithiopyridylé obte- nu, par exemple, selon le mode opératoire décrit par CARLSSON et al /Bioch. 3. (1978) 173, 723-724_7 n'est pas appropriée aux fins de l'invention. Pour plus de précision, on indiquera que le composé polypeptidique thiolé selon l'invention com- porte un ou plusieurs groupes Z-SH, Z étant le résidu de l'agent de thiolation. Ainsi, si l'on met en oeuvre l'un des a- gents de thiolation ci-dessus, Z représente alors: 7 2498192Z + NH2, C1 Il -C- (CH2)3 - CO - CH - CH2 - CH2 -; -CH - CO; I I NH - CO - CH3 CH2-COOH -C- (CH - ( CH2)3 - NH La thiolation du fragment IIc est réalisée sur les groupes -NH2 de celui-ci. On a trouvé que le composé polypeptidique thiolé selon l'invention convient comme agent de transport neuropharmacologique pour véhiculer vers le système nerveux central des agents pharmacologiques ou chimiothérapeuti- ques. Pour permettre le transport d'un médica- ment vers le système nerveux central par l'intermédiai- re de l'agent selon l'invention, il est nécessaire de fixer ou de coupler ce médicament sur le composé polypeptidique thiolé, utilisé comme agent de transport, sans évidemment modifier la propriété pharmacologique du médicament ni la propriété de fixation du fragment IIc sur les récepteurs spécifiques de la toxine tétanique dans e système nerveux central. Par "Médicaments" on désigne, selon l'invention, toutes substances ayant des propriétés pharmacologiques, tel- les que les agents pharmacologiques,les agents chimiothéra- peutiques, etc.... Les médicaments qui peuvent être fixés selon l'invention sur le composé polypeptidique utilisé comme agent de transport neuropharmacologique doivent pos- séder des groupes NH2. A titre d'exemples de médicaments qui peu- vent être véhiculés vers le système nerveux central au moyen du composé polypeptidique thiolé selon l'invention on citera: la phosphatase alcaline, le fragment A de la toxine cholérique, le fragment A de la toxine diphtérique, les dipyrido-indoles selon le brevet FR 77.11.148 et, de façon générale, tout médicament porteur de groupes NH2. Il est connu que la toxine cholérique se fixe sur les gangliosides CM1 de la paroi intestinale et 8 ? 2498192; que le fragment A est responsable de l'augmentation du taux d'AMP cyclique L acide adénosine-monophosphorique cycli- que_7. Par contre, dans le tétanos, on constate une diminu- tion du taux d'AMP cyclique dans le système nerveux central. Le conjugué selon l'invention constitué du composé polypep- tidique thiolé couplé avec le fragment A, peut être utili- sé pour lutter contre le tétanos. Les dipyrido-indoles selon le brevet FR 77.11.148 sont des chimiothérapeutiques utiles dans le trai- tement des cancers. Dans ce domaine, on sait que les mé- tastases sont dues au fait que des cellules cancéreuses vien- nent se nicher dans le système nerveux central, d'o elles migrent vers d'autres régions du corps, o elles développent des tumeurs. Le úveloppement des métastases pourrait être évité ou réduit dès lors que les moyens pour détruire ces cellules dans le système nerveux central parviendront Jus- qu'au système nerveux central. De la même manière, l'invention peut être appliquée au traitement des tumeurs cérébrales. La présente invention concerne donc égale- ment les moyens de couplage du composé polypeptidique thio- lé selon l'invention avec des médicaments. Les moyens de couplage du composé selon l'invention et du médicament à transporter mettent en oeuvre au moins un pont disulfure ou au moins une liaison irréver- sible soufrée. La présente invention concerne donc éga- lement les conjugués fragment IIc/médicament comportant au moins un pont disulfure ou au moins une liaison irréversi- ble soufrée. Il est connu de préparer des conjugués protéiniques par formation de liaison disulfure intermo- léculaire. La formation d'une telle liaison disulfure in- termoléculaire est réalisée par exemple par réaction d'une protéine ayant des groupes thiol avec une protéine ayant des groupes dithiopyridyle. 2498192 ' Par exemple selon le procédé décrit par TE PIAO KING et al. (Biochemistry vol. 17 NO 8,1978), on peut coupler deux protéines différentes en fixant d'a- bord sur une des protéines des groupes thiol et sur l'autre des groupes 4dithiopyridyle et en faisant réagir les deux protéines modifiées résultantes dans des conditions appro- priées permettant la formation d'un pont disulfure et l'élimination de 4thiopyridone. Les groupes thiol peuvent être fixés sur l'une des protéines à l'aide de 4-méthyl- mercapto-butyrimidate et les groupes 4-dithiopyridyle sur l'autre protéine par l'intermédiaire de, par exemple, le 3-méthyl-(4'dithiopyridyl)propionirnidate. Ce procédé de couplage permet l'obtention d'un conjugué protéine-protéi- ne dans lequel la fraction entre les deux protéines est sy- métrique par rapport au pont disulfure. Selon CARLSSON et al. (Bioch. 3. 1978, 173, 723-724) on peut introduire le groupe thiol sur l'une des protéines par réaction de ladite protéine avec le N- succinimidyl-3-(2-pyridyl-dithio) propionate et réduction ultérieure; selon ce procédé on utilise le même réactif,à savoir le N-succinimidyl-3(2-pyridyl-dithio)propionate, pour introduire des groupes thio et dithiopyridyle sur les pro- téines. Les conjugués résultants possèdent également une fraction de liaison symétrique par rapport au pont disul- fure. On a également utilisé le 4-méthyl-mercap- to-butyrimidate pour la formation de dimères et d'oligo- mères supérieurs de protéines du ribosome 30 S d'Escherichia coli (Biochemistry, 1Z, 3266-3273, 1973). Les conjugués ainsi obtenus ont de nom- breuses applications, par exemple comme réactifs de dosages immunologiques. Le procédé de couplage, selon l'invention, du composé polypeptidique thiolé utilisé comme agent de transfert neuropharmacologique avec un médicament par l'in- termédiaire de ponts disulfure consiste: 2498192 ': 1 - à introduire sur le médicament à fixer des groupes dithiopyridyle; 2 à faire réagir le médicament porteur de groupes dithiopyridyle avec le composé polypeptidique thiolé selon l'invention. Le schéma réactionnel de ce procédé de cou- plage peut être représenté de la façon suivante lorsque l'agent de dithiopyridylation mis en oeuvre dans 1 'étape 1 est le N-succinimidyl-3(2-pyridyl-dithio)propionate: 1) M-NH2 + -S - S-CH2-CH2 -C - O -N o o > M-NH - C CH2 CH2 - S - S + H N _NHC+, CC- 0O 2)!-IIb.-7NH- I C- (CH2) _37-SH +M-NH-t-CH2-CH2-S-S N uH2,C C - M-NH-CCH2-CH2-S-S-(CH2)3-C-NH- /-B-IIb 7 + =s H Dans ce procédé on peut utiliser un autre agent de dithiopyridylation, tel que la dithiopyridine ou tout autre agent approprié pour une telle réaction. Un autre moyen de couplage du composé polypeptidique utilisé comme agent de transport neuro- pharmacologique selon l'invention consiste à créer une liaison irréversible entre ledit agent et le médicament à véhiculer. Ce procédé peut être représenté par le sché- ma réactionnel ci-après: il 2498192 ': 1) M - NH2 +r - -c 0- 0 M - NH - C N OM HX 0 2>0M-NH- /B-nIIb j - *+ 0 - OH NH2, Ci- Il NH 4C- (CH2)3 + SH r' + II NH +, C1- M - NH - CN H2 C- S- (CH2)3-C-NH /B-IIb -7 O 23b Il consiste: 1) à faire réagir le médicament à fixer avec l'ester de métamaléimidobenzoyl-N-hydroxy-succinimide. 2) à faire réagir le composé résultant avec le composé polypeptidique selon l'invention. Les schémas réactionnels ci-dessus et ceux qui seront donnés ci-après sont simplifiés et ne tien- nent pas compte du nombre de groupes SH qui peuvent être fixés sur le fragment IIc. On a déjà proposé d'utiliser l'ester de métamaléimidobenzoyl-Nhydroxysuccinimide pour former des conjugués enzyme-anticorps (FEBS Letters, vol. 95, n0 2, Nov. 1978). Toutefois, les enseignements de l'artantérieur ne permettaient pas de prévoir que l'utilisation de l'es- ter de métamaléimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimide pour le couplage de l'agent de transport neuropharmacologique se- lon l'invention avec des médicaments ne modifierait - 24198.192 ou n'inhiberait pas les propriétés pharmacologiques dudit mé- dicament et la propriété de fixation du fragment IIC sur les récepteurs spécifiques de la toxine tétanique dans le sys- tème nerveux central. On remarquera que le couplage selon l'invention du médicament avec le composé polypeptidique thiolé utilisé comme agent de transport neuropharmacologique est réalisé selon des techniques connues classiques de cou- plage protéine-protéine. Toutefois, il faut noter que tou- tes les techniques de couplage protéine-protéine à la portée de l'homme de l'art ne conviennent pas aux fins de l'inven- tion. En effet, seules les techniques de couplage permettant de réaliser une liaison disulfure ou une liaison irréversi- ble soufrée sont appropriées. En particulier, on indiquera que la technique de couplage la plus classique, qui met en oeuvre le glutaraldéhyde, ne convient pas aux fins de l'in- vention car le fragment IIc traité par le glutaraldéhyde perd ses propriétés de transport axonal et de fixation sur les récepteurs de la toxine tétanique dans le système ner- veux central. Ainsi, le fragment IIc, sur lequel on aurait fixé des groupes carbonyle, avec le glutaraldéhyde par ex- emple, ne convient pas aux fins de l'invention. Une autre applicationdu composé polypep- tidique thiolé selon l'invention est le marquage des cellu- les neuronales. Ainsi, le composé de l'invention peut être utilisé comme marqueur spécifique des cellules neuronales. Il peut aussi convenir pour la préparation de réactifs im- munologiques. On peut préparer par exemple un réactif en- zymatique à partir du composé polypeptidique thiolé selon l'invention et de la phosphatase alcaline. On a constaté que le conjugué résultant possédait à la fois le pouvoir de fixation du fragment IIc et l'activité enzymatique de la phosphatase. Le composé selon l'invention convient aus- si comme traceur rétrograde transsynaptique. L'invention va être maintenant décrite plus en détail par les exemples illustratifs de prépara-. 1l 2498192" tion du composé polypeptidique thiclé de l'invention et de couplage de celui-ci, avec des médicaments. Ddns tous ces ex- emples on a utilisé le fragment II tel que défini ci-dessus. c EXEMPLE 1 Thiolation du fragment II à l'aide de 2-iminothiolane c La thiolation du fragment IIC a été réali- sée selon le mode opératoire décrit par Schramm et al. /-Z. Physiol. chem. 1977, 358, 137-139 7. Le fragment IIC ( 1,5 mg) en solution dans c du glycérol à 50% (0,2 ml) a été thiolé par l'iminothiolane (2,5 mg) en solution dans 750 1 de tampon triéthanolamine HC1 0,2 M, pH 8,5-9,0. Le mélange réactionnel a été maintenu à la température ambiante pendant deux heures. L'excès de réactif a été éliminé par filtration sur une colonne "SEPHADEX G-25". Le produit polypeptidique thiolé ainsi obte- nu contenait 2,7 groupes - SH. EXEMPLE 2 Thiolation du fragment IIC à l'aide de N-acétylhomocystéine thiolactone On a réalisé la thiolation du fragment II selon le mode opératoire décrit par SINGER et al. O / 3. Am. Chem. Soc. 1960, 82, 567-571 7. A 4 mg du fragment Il cen solution dans 0,2 ml d'eau on a ajouté le tampon K2C03/NaHCO3 pH 10,7 (0,2 ml). On a fait passer un courant d'azote pour chasser l'air. On a ajouté 0,2 ml d'une solution de N-acétylhomo- cystéine-thiolactone à 80 mg/]. On a maintenu le mélange ré- actionnel pendant 2 heures à 4 C sous azote. La réaction a été ensuite arrêtée par filtration sur SEPHADEX G-25. Le pro- duit obtenu contenait 4 groupes - SH. EXEMPLE 3 Préparation d'un conjugué composé polypeptidique thiolé/frag- ment A de la toxine diphtérique. On a utilisé 5 mg du fragment A de la to- xine diphtérique dans 1,5 ml de tampon phosphate 0,1 M conte- nant NaCl 0,5 M (pH 7,5). On a ajouté 312eg de N-succinimidyl -3-(2pyridyl-dithio)propionate (Pharmacia) dissous dans 1 d'éthanol à 99,5 % ( Merck). Après réaction pen- 14 Z498192' dant 30 minutes dans un bain-marie à 23 C, la toxine dithio- pyridylée est séparée de l'excès de réactif par filtration sur du Sephadex G 25 équilibré avec le même tampon. Par ce procédé, on a introduit 1,7 groupement 2- pyridyldisulfure par molécule de fragment A. Le fragment IIc a été thiolé par réaction avec du 4-méthyl-mercaptobutyrimidate selon la technique décrite par TE PIAO KING et al. (Biochemistry, vol. 17, n 8, 1978). On a fait réagir 5,37 mg de IIc dissous dans 1,5 ml de tampon bora- te 0,025 M pH 9,0 avec 3 mg de l'agent de thiolation dissous dans 100 P1 de méthanol à OoC pendant 30 minutes. L'excès de réactif a été éliminé par- filtration sur du Sephadex G 25 é- quilibré en tampon phosphate 0,1 M pH 7,0 contenant 1 mM EDTA-Na2. Le fragment IIc thiolé contenait 2,5 groupes SH par molécule. Le conjugué a été obtenu par mélange de 119 na- nomoles de fragment A dithiopyridylé avec 90,9 nanomoles de II thiolé. On a suivi la réaction d'échange à 343 nm. On a fil- tré sur Sépharose 6B équilibré avec du tampon Tris 0,05 M NaCl 0,5 M pH 8,0. Le conjugué obtenu conserve le pouvoir de fixa- tion du fragment IIc et la réactivité immunologique du fragment A et du fragment IIC. Les figures 1A et SlB illustrent la synthèse du conjugué IIc -polypeptide. Elles constituent le résultat de deux expériences d'immunodiffusion en gel. La photo se trouvant à gauche de la figure 1A mon- tre la réaction immunologique spécifique entre le fragment TT (toxine tétanique) et le sérum antitétanique mis dans le puits central. Il n'y a aucune réaction avec le fragment A de la toxine diphtérique. Le fragment A de la toxine diphtérique, dont la structure antigénique est différente de la toxine té- tanique, ne donne aucune ligne de précipitation lorsqu'il est mis ai contact du sérum antitétanique. Sur la figure 1A, le composé /-A-SS-IIc /,c'est-à-dire le IIc-thiolé, ayant été couplé au fragment A de la toxine diphtérique, réagit avec le ès 2498192 sérum antitétanique (SAT) par ses déterminants antigéniques tétaniques. Sur la figure lB, le composé /-A-SS-IIc _7 réagit avec le sérum anti- diphtérique (SAD) par les déterminants antigéniques portés par le fragment A de la toxine diphtérique. Ainsi,les photos des figures 1A et 1B montrent qu'il y a eu synthèse du conjugué A-SS-II et que les deux c composants, à savoir le fragment A et le fragment IIc, ont conservé leurs propriétés antigéniques après couplage. EXEMPLE 4 Essais pharmacologiques Dans ces essais on a marqué à l'iode 125 le fragment IIc, le composé polypeptidique thiolé selon l'inven- tion, ainsi que la toxine tétanique et les autres fragments utilisés à titre de comparaison tels que le fragment BIIb Ce marquage à 1 'iode 125 a été effectué selon la méthode de GREENWOOD et al. - The preparation of 125I-labelled human growth hormone of high specific radioactivity. Biochem. 3, 89 (1963) 114-127_7. La radioactivité spécifique du fragment IIc c marqué avec 125I utilisé dans les expériences de transport rétrograde était de Il pCi par &g de protéine. Le fragment IIc utilisé dans l'essai de liaison aux membranes synapti- ques avait une radioactivité spécifique de 1,2 pCi par Fg de protéine. La radioactivité spécifique de la toxine téta- nique était de 2,5.Ci par.g de protéine. A) Liaison du fragment IIc aux membranes synaptiques brutes Les membranes synaptiques brutes ont été pré- parées à partir de la moelle épinière de rats mâles Sprague Dawley, pesant 150-200 g. Selon la méthode de Young et Snyder, Strychnine binding associated with glycine receptors of the central nervous system. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A., (1973) 2832-2836. La concentration de protéines de la suspension de membranes a été ajustée à 1,0 mg par ml. La suspension a été stockée en parties aliquotes de 1 ml à - 250C. Les essais ont été réalisés selon la méthode de Young et Snyder citée ci-dessus. Les fragments IIc, BIIb, ou la toxi- ne, ont été mis à réagir avec des parties aliquotes de 0,1 mg de membranes synaptiques brutes pendant 15 minutes à 21 C dans i ml de tampon 0,05 M phosphate Na/K, pH 7,4, contenant 0,01% de "Triton X-100". La réaction a été terminée par cen- trifugation pendant 10 minutes à 48 000 x g et 4 C. Le fluide surnageant à été décanté et le sédiment a été lavé 3 fois avec ml de tampon 0,05 M phosphate Na/K, pH 7,4, contenant 0, 01% de "Triton X-100" et 0,1% de sérum albumine bovine. On a a- lors mesuré la radioactivité du surnageant, des eaux de la- vage et du sédiment. Chaque essai a été répété trois fois. Les essais ont été aussi réalisés en présence des fragments IIc ou BIIbnon marqués ou de la toxine non marquée. Dans ce cas une quantité fixée de protéine marquée a été incubée avec des quantités croissantes de protéines non marquées. I1 a été vérifié que la liaison du fragment II marqué avec 125I augmente linéairement avec la concen- c tration en membranes. Le déplacement du fragment 125I - IIc fixé sur les membranes synaptiques isolées par le fragment IIc non mar- c qué ou la toxine tétanique marquée et le déplacement de la toxine tétanique non marquée à l'iode 125, par les fragments IIc ou BIIb non marqués ont été mesurés. Les résultats obtenus sont représentés sur les figures 2a et 2b sur lesquelles est indiquée en ordonnées la liaison spécifique du fragment I-IIc (figure 2A) exprimée en cpm x 10'4 (coups par mi- nute)ou de la toxine tétanique marquée avec 125I (figure 2B) et en abscisses la concentration molaire (M) en fragments IIc, B-IIb ou en toxine tétanique. Les déplacements semi-maximaux ont été calcu- lés à partir des courbes des figures 2A et 2B et sont ras- semblés dans le tableau I. Les résultats du tableau I montrent que le déplacement semi-maximal du fragment 125 I-IIc lié à des c membranes synaptiques a environ la même valeur qu'il soit obtenu par le fragment IIc non marqué ou la toxine tétani- que entière. Les résultats du tableau I montrent également 17 2498192 que le fragment IIl non marqué est aussi efficace dans le c déplacement de la toxine tétanique marquée à l'iode 125 I que la toxine non marquée dans le déplacement du fragment I -II c Au contraire le fragment BIIb est deux fois plus efficace que le fragment IIc dans le déplacement de la c toxine tétanique marquée à l'iode 125 liée aux membranes sy- naptiques. La transformation de Hill du déplacement du fragment 125 I-II lié aux membranes synaptiques iso- c lées par le fragment IIc non marqué, exprimé en c % B max Log10 100% - % Bmax Log10 de la concentration du fragment IIC non marqué donne une cour- c be linéaire (figure 3) avec une pente de 1,68 qui peut être interprétée comme indiquant une coopérativité positive selon Cornish-Bowden et al., Diagnostic uses of the Hill (Logit and Nernst) plots. 3. Mol. Biol. 95 (1975) 201-212. On a réalisé les mêmes essais que ci-dessus avec le fragment IIc thiolé selon l'invention obtenu selon c l'exemple 1 ci-dessus. Les résultats obtenus également con- signés dans le tableau I montrent que la thiolation du fragment IIc selon l'invention ne modifie pas essentielle- ment les propriétés de liaison du fragment IIc sur les mem- branes synaptiques. B - Transport rétrograde axonal protocole d'essai Pour tous les essais, on a utilisé des rats Sprague-Dawley femelles d'un poids de 250 g. Les rats ont été maintenus à la température constante de 23 C et nourris avec le régime habituel / Nafage, Gossau 7 et de l'eau. Deux rats albinos ont reçu une injection du fragment 125 I -IIc et de peroxydase de raifort (HRP à 30%). c A titre de témoins deux autres rats ont re- çu une injection du fragment B-IIb (1 K1 correspondant à une concentration de 0,7 9g de protéine par 1). À 4 2498t 18 2498192 Après mise à nu du muscle, les substances ont été injectées par un système d'injection réglé thermiquement à l'aide d'une pipette en verre (50-100 rm de diamètre ex- térieur); le temps d'injection a été d'environ 40 minutes. Le volume total injecté était de 2,5 fl;soit 1,5 1l de solution de fragment IIc à 3 Kg de protéine par y1 et 1 y1 de solution HRP. Les rats ont été sacrifiés 24 heures après l'injection. Une perfusion intracardiaque a été effectuée sous anesthésie générale avec tout d'abord 0,5 ml de "Liquemine" (Roche) et 0,5 ml de nitrite de sodium (0,01 g/ml) puis ensuite avec 200 ml d'un expanseur du plasma ("MACRODEX") pendant 5 minutes, puis avec 600 ml de paraformaldéhyde à 1 % dt de glutaraldéhyde à 2,5% dans un tampon phosphate 0,1 M pendant 30 minutes, et finalement avec une solution de saccharose à 10% dans un tampon phosphate 0,1 M pendant minutes. Pour plus de détail sur ce mode opératoire, on pourra se reporter à l'article de MESULAM / 3. Histochem. Cytochem 26, (1978) 106-117_7. Le cerveau a été prélevé immédiatement après cette perfusion et maintenu pendant 48 heures dans une solu- tion de saccharose à 30% avant découpage. Des sections conge- lées (épaisseur 30 pm) ont été prélevées à partir de l'ex- trémité caudale du noyau abducteur et jusqu'à l'extrémité rostrale du noyau oculomoteur entier. Chaque section traitée avec la peroxydase de raifort a été colorée selon la mé- thode TMB selon MESULAM et recolorée avecdu rouge neutre, alors que les autres sections ont été autoradiographiées. Ces der- nières sections ont été montées et trempées dans une émulsion liquide NTB2 à 45 C dilué au 1/2 avec de l'eau distillée. Les sections ont été exposées pendant 4 semaines à 4 C dans le noir et développées avec le révélateur "KODAK DEKTOL" à 18 C pendant 90 secondes, lavées, puis fixées avec du thiosulfa- te de sodium à 30%, lavées pendant 2 heures, puis colorées avec du violet de crésyle et couvertes. Toutes les sections ont été examinées au microscope (grossissement 250) et la lo- calisation des cellules marquées a été déterminée par micro- photographie. Comme le fragment BIIb, le fragment IIc est transporté de façon rétrograde axonale car il se forme un mar- quage positif dans le noyau oculomoteur des deux animaux tes- tés après injection de HRP et du fragment IIc, comme le mon- trent des photographies du complexe oculomoteur avec un mar- queur radioactif prises dans la région considérée. La principale différence entre le HRP et le fragment IIc réside dans le fait que la localisation des gra- nules HRP est limitée au péricarya et aux dendrites des neu- rones oculomoteurs, tandis que des grains d'argent représen- tant le fragment 125 I-I1 sont également situés dans les es- c paces péricellulaires. Par rapport au fragment B IIb et ses conjugués, le fragment IIc semble être localisé plus strictement dans les corps cellulaires des neurones moteurs marqués que dans les espaces extracellulaires. Bien qu'une activité totale su- périeure ait été injectée dans les deux cas avec le fragment IIc on a noté un marquage moins intensif du noyau oculomoteur par rapport au fragment B IIb. Le fait que le transport rétrograde axonal est directement lié à la capacité des fragments à se fixer sur leurs récepteurs membranaires, indique clairement que le-, fragment IIc thiolé ayant conservé ses propriétés de fixa- tion (tableau 1) est également transporté par voie rétrogra- de. On a aussi vérifié, en utilisant les tests décrits dans Journalof Neurochemistry (1977) vol. 28 p. 529-542, que les conjugués Il /médicament obtenus selon l'invention à partir du composé polypeptidique thiolé se fi- xaient de façon spécifique sur les gangliosides et les mem- branes synoptiques; ces résultats prouvent que ces subs- tances peuvent donc être transportées de façon rétrograde axonale. 2498192 TABLEAU I Déplacements semi-maximaux par mg de protéines de membrane calculés à partir des courbes des figures la et lb : Déplacement: Déplacement semimaximal: :: nM/mg: :125 II -* 8,0 fragment fIc non marqué I -II - 9,0 toxine tétanique non marquée: I-toxine tétanique- 9,0 fragment IIcnon marque: I -toxine tétanique- 5,5 :fragment B-IIb non marqué * J :125 I-II thiolé - c 9,5 :fragment IIc non marqué _ _....c 21 2498 192 REVENDICATIONS 1. A titre de produit nouveau, le composé polypep- tidique thiolé constitué par le fragment IIC de la toxine C tétanique, sur lequel est fixé, directement ou indirectement, au moins un groupe -SH. 2. Composé polypeptidique thiolé selon la reven- dication 1, caractérisé en ce qu'il est obtenu par thiola- tion et en ce qu'il comporte un ou plusieurs groupes Z-SH, Z étant le résidu de l'agent de thiolation. 3. Composé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que Z est choisi parmi les groupes ci-après: NH2 + C 2 - -C - (CH2)3 -; CO CH -CH 2 - C H- CO- 23 CH 2 H2 -; -CH- CO-; NH -CO - CH3 CH2- COOH - C - (CH2)3- Il NH 4. Procédé pour l'obtentiondu composé selon l'u- ne quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'on effectue la thiolation du fragment Il à l'aide d'un c agent de thiolation dans des conditions telles que les pro- priétés de transport rétrograde axonal et de fixation sur les récepteurs spécifiques de la toxine tétanique dans le système nerveux central du fragment IIc ne soient pas abolies. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'agent de thiolation est choisi parmi: le 4-méthyl-mercaptobutyrimidate, le 2iminothiolane, la N.acétylhomocystéine thiolactone, l'anhydride S-acétyl-mercaptosuccinimique. 6. Application du composé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 à titre d'agent de transport neuropharmacologique spécifique pour véhiculer un médicament dans le système nerveux central. 7. Application du composé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 à titre de marqueur spécifique des cellules neuronales. 8. Procédé de couplage d'un médicament avec le composé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il consiste: (1) à introduire sur le médicament à fixer des groupes dithiopyridyle; (2) à faire réagir le médicament porteur de grou- pes dithiopyridyle avec le composé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que, dans l'étape (1) on utilise un agent de dithio- pyridylation, tel que le N-succinimidyl-3-(2-pyridyl-dithio) propionate ou la dithiopyridine. 10. Procédé de couplage du médicament avec le com- posé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des re- vendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il consiste à: (1) faire réagir le médicament à fixer avec 1' esterile méta-maléimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimide; (2) à faire réagir le composé résultant avec le composé polypeptidique thiolé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 11. Conjugué fragment IIc/médicament comportant au moins un pont disulfure. 12. Conjugué fragment IIc/médicament comportant au moins une liaison irréversible -S-. 13. Conjugué fragment IIc/médicament obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 10. 14. Conjugué fragment IIc/médicament selon l'une quelconque des revendications 11 à 13, caractérisé en ce que le médicament est une substance portant des groupes -NH2-. 15. Conjugué fragment IIc/mldicament selon l'une quelconque des revendications 11 à 14, caractérisé en ce que le médicament est le fragment A de la toxine choléri- que, le fragment A de la toxine diphtérique, un dipyrido- 23 249819e indole. 16. Procédé de couplage selon l'une quelconque des revendications 8 àlO modifié par le fait que le médicament est remplacé par un marqueur, notamment un anticorps radio- actif. 17. Conjugué fragment Il i médicament selon l'une quelconque des revendications 11 à 15 modifié par le fait que le médicament est remplacé par un marqueur; notamment une substance marquée radioactivement. 18. Conjugué fragment IIc / médicament selon la re- vendication 17, caractérisé en ce que ladite substance mar- quée radioactivement est un anticorps. 19. Application du conjugué fragment IIc / marqueur, notamment du conjugué fragment IIc / substance marquée ra- dioactivement comme réactif de diagnostic. 20. Application selon la revendication 19, caracté- risée en ce que ladite substance marquée radioactivement est un anticorps.