Brevet FR2458584A1 — publié le 19810102

L'invention est relative à de nouveaux vecteurs dans le génome desquels peut être inséré, par fusion génétique, un fragment d'ADN étranger, susceptible de coder la production d'une protéine déterminée, procaryote ou eucaryote, ces vec- teurs étant construits de façon telle qu'ils soient capables de transférer ce fragment d'ADN étranger dans une cellule eu- caryote et d'induire l'expression dans celle-ci de ce fragment d'ADN étranger. On a déjà décrit des vecteurs dans le génome s desquels peut être inséré un fragment d'ADN étranger et qui sont aptes à transformer des cellules procaryotes, notamment des bactéries, à partir desquelles peut alors être isolée une protéine hybride contenant la protéine normalement codée par ce fragment d'ADN étranger dans son hôte naturel. Parmi les applications envisagées de ces techni- ques, on peut citer la production de protéines ayant des vertus vaccinantes. La mise à contribution de cellules procaryotes, notamment de bactéries, en tant qu'"usine de production" de protéines de ce type, en quantité suffisante, suscite à ce jour bien des réserves de la part des spécialistes et des au- torités médicales. L'importance de ces réserves pourrait cependant être bien atténuée, si les cellules procaryotes du genre en question pouvaient être remplacées utilement par des cellules eucaryotes, notamment d'origine animale ou de préférence en- core d'origine humaine, s'agissant de protéines vaccinantes qui seraient destinées à l'homme. Cette hypothèse n'est pas à ce jour sans sou- lever a priori de très grandes difficultés. En effet, même si l'on fait abstraction des rendements de réplication, vrai- semblablement plus réduits, des vecteurs qui pourraient être construits et modifiés par le fragment d'ADN approprié, une difficulté importante qui reste à surmonter est la détection et par conséquent l'isolement de celles des cellules eucaryotes -E5 dans lesquelles aurait effectivement été transféré un tel vec- teur modifié parmi les cellules non affectées par ce même vec- teur. Certes, R.C. MULLIGAN et Coll. (Nature, Vol. 277, pages 108-114, 11. janvier 1979) ont montré qu'un génome Y;, recombinant résultant de l'insertion d'un ADN codant la P-g1- bine de lapin dans l'ADN d'un virus SV 40, en lieu et place dans ce dernier du gène codant la majeure partie de la protéine de capside VP 1, pouvait être exprimé dans des cellules de rein de singe. Ce génome recombinant avait été obtenu, par recombinaison génétique in vitro, d'une part, d'un fragment de 4,2 kilobases (kb), antérieurement obtenu à partir du virus SV 40, par digestions successives en présence des enzymes Hind III, EcoRI et BamH 1 et, d'autre part, d'un fragment codant la v e-globine, préalablement extrait d'un plasmide qui avait été antérieurement décrit (pBR322-S-G2), après clivage séquentiel de ce dernier par Bgl II et Hind III. Mais la réplication de ce recombinant et son expression dans des cellules eucaryotes (cellules de rein de singe) ont effectivement été-réussies grâce au système de ré- plication exogène apporté par le recombinant, lequel avait con- servé toute l'information apte à coder la réplication du virus SV 40, dont était bien connue auparavant la'capacité d'infecter des cellules eucaryotes. Il va dans dire que le plasmide pBR- 322-0-G2, qui était lui-même dépourvu de l'origine de réplica- tion adéquate, dans le système eucaryote considéré, n'aurait pas pu être utilisé comme vecteur pour transmettre efficacement, et surtout permettre, l'expression de la 5-globine dans ces cellu- les eucaryotes. En outre, les cellules infectées pouvaient aisément être repérées dans une culture en raison même du caractère viral de ce génome recombinant, du fait des modifi- cations induites par celui-ci dans les conditions de croissance des cellules infectées. Parmi les inconvénients d'un tel système, il faut naturellement souligner l'oncogénicité de ce recombinant, tout aussi incompatible a priori avec le type d'application en- visagé que les inconvénients mentionnés plus haut à propos des bactéries en tant qu'hôte producteur de protéines. L'invention a pour but de remédier au moins en partie à de telles difficultés, notamment de fournir des vecteurs susceptibles de transférer à l'intérieur? de cellules- hôtes eucaryotes un fragment d'ADN alors susceptible d'être ex- primé dans ces cellules sans transformation aussi importante, sinon en l'absence de modifications sensibles de leurs condi- tions de croissance. Elle a égalminent pour but un procédé de mise en oeuvre d'un tel vecteur permettant, lorsqu'il est utilisé pour transférer un fragment d'ADN déterminé dans certains types de cellules eucaryotes, la détection aisée de celles des cellu- les dans lesquelles ce fragment d'ADN se trouvera effectivement exprimé. Le-vecteur selon l'invention est caractérisé par la présence dans son génome d'un ADN étranger auquel cor- 1G respond normalement, dans au moins certaines catégories de cel- lules eucaryotes, un gène hiamologue ' exprimable sous la forme d'une protéine homologue à celle spécifiée par l'ADN étranger, cet ADN étranger étant tel que la déficience, naturelle ou in- duite, desdites cellules eucaryotes en ce gène homologue est susceptible d'être complémenté par l'ADN étranger, après l'in- troduction de celui-ci dans de telles cellules. L'adjectif "étranger" dont il est fait usage dans l'expression "ADN étranger" vise à faire ressortir que le vecteur selon l'invention est un recombinant dont l'ADN étran- ger ne forme qu'un des éléments constitutifs du vecteur, les autres éléments constitutifs de ce vecteur étant dépourvus d'une origine de réplication exploitable par la machinerie cellulaire des cellules, notamment eucaryotes, dans lesquelles il est des- tiné à être transféré. Ils peuvent naturellement être pourvus d'une origine de réplication non eucaryote ne modifiant pas les autres fonctions habituelles cellulaires. Pour la commodité du langage, l'ADN étranger susdit sera appelé,dans ce qui suit, "ADN DE COMPLEMENTATION". Il est encore entendu que, dans le cadre du présent exposé, on entend par le terme "complémentation" la compensation de la déficience susdite, telle qu'elle se mani- feste quand lesdites cellules antérieurement déficientes de- viennent capables, lorsque placées dans un milieu de culture dans lequel cette déficience leur aurait normalement interdit de pousser, de se développer à nouveau après incorporation préa- lable du fragment d'ADN du genre en question à leur patrimoine génétique. A titre d'exemple préféré d'ADN de complémenta- tion propre à être insér é dans le vecteur selon l'invention, on citera le fragment d'ADN contenant le gène de la thymidine- kinase du virus Herpès simplex HSV-1, fragment qui peut être excisé du génome du virus par des enzymes de restriction spécifiques, tels que BamHI. A ce gène de la thymidine-kinase d'origine virale correspondent, dans de nombreux types de cellules eucaryotes, des gènes homologues propres à diriger la synthèse de la thymidine-kinase (enzyme phosphorylant la thymidine exogène fournie par le milieu de culture). La possibilité de suppléer, par l'introduction préalable du gène entier de la thymidine-kinase du virus de l'herpès dans des cellules de souris du type L antérieurement déficientes, en raison d'une mutation induite ou provoquée affectant leur gène de la thymidine-kinase endogène, a déjà été décrite par M. WIGLER et coll. (Cell. Vol. II, 223-232, 1977). Les cellules déficientes, dites TK-, sont sélectionnées en raison de leur incapacité de synthétiser la thymidine-kinase dans un milieu tel que celui connu sous le nom de "milieu HAT" (contenant de l'hypoxanthine et de l'amino-ptérine en sus de la thymidine). Ce milieu est connu pour n'autoriser l'éven- tuelle synthèse de thymidine phosphate que par l'intermédiaire d'une voie métabolique dite "voie de sauvetage" (salvation pathway), cette voie impliquant cependant que soit préservée l'intégrité du gène TK des cellules susceptibles de s'y déve- lopper. Des cellules TK deviennent néanmoins capables de se développer dans ce même milieu dès lors qu'elles ont été mo- difiées par incorporation du gène TK du virus de l'herpès du patrimoine génétique transmissible par ces cellules à leur descendance, comme suite à leurs divisions cellulaires succes- sives. De "TK-" qu'elles étaient antérieurement, avant la susdite incorporation, ces cellules sont alors devenues "TK ", du fait de la restauration alors constatée de leur capacité de phosphoryler la thymidine-dans le susdit milieu et, par conséquent, de s'y développer. La réplication du vecteur selon l'invention - et l'expression d'un fragment d'ADN distinct spécifiant une protéine déterminée préalablement insérée dans un tel vecteur - dans des cellules eucaryotes n'impliquent donc plus la présen- ce antérieurement nécessaire d'un système de réplication -x - gène (tel que celui du virus SV 40 susmentionné). Elles sont alors, en raison du caractère homologue de l'ADN TK du vecteur, sous la dépendance directe du système de réplication propre a ces cellules eucaryotes, d'o l'absence de caractère "trans- formé"de ces cellules qui ont reçu un gène d'origine virale. La détection au sein d'une population cellu- laire de celles des souches auxquelles le vecteur selon l'in- vention se trouve être incorporé est également aisée, notam- ment-par l'intermédiaire de techniques immunologiques mettant en oeuvre des anticorps anti-virus de l'herpès, ceux-ci étant alors aptes à déceler les souches rendues TK par le vecteur selon l'invention, alors que les souches TK naturelles ne 10. sont pas affectées. Bien entendu, le fragment d'ADN contenant le gène de la thymidine-kinase peut être remplacé par tout autre ADN de complémentation approprié. A titre d'exemple d'autres gènes de complémentation qui peuvent être utilisés pour la constitution des vecteurs selon l'invention, on citera celui contenant celui de la dihydrofolate réductase (DIIFR), ou, d'une façon générale, tout gène de complémentation dont de nombreux. exemples existent dans la nature. Il va sans dire que le gène de complémentation choisi n'est pas nécessairement d'origine virale ou bactérien- ne. Il peut également être constitué, notamment lorsque le vec- teur selon l'invention est destiné à être inséré dans des cel- lules d'origine animale, d'un gène de complémentation provenant d'un animal appartenant à une espèce distincte. Un tel ADN de complémentation contient par exemple un gène de l'insuline originaire d'une culture de cellules d'un premier animal, lequel est alors apte à complémenter une déficience insulinique des cellules d'une espèce animale distincte, ces dernières cellules étant donc destinées à constituer les cellules eucaryotes-hôtes destinées à héberger le vecteur selon l'invention (plus parti- culièrement après sa modification préalable par insertion dans son génome d'un ADN dont l'expression est recherchée, ci-après appelé "ADN producteur" pour la commodité du langage). L'ADN de complémentation peut naturellement comporter un gène naturel. Il peut aussi être synthétisé, no- tamment de façon enzymatique, par copie d'un ARN messager cor- respondant. Les parties constitutives du vecteur selon l'invention, autres que l'ADN de complémentation, qui n'ap- paraitront pas phénotypiquement dans des tests de reconnais- sance immunologiques tels que mentionnés ci-dessus, peuvent provenir de tout ADN. Ils peuvent appartenir à tout ADN d'ori- gine distincte, tel que phage ou, de préférence, plasmide, pour- vu de sites déterminés permettant l'insertion dans le vecteur - et son expression future - d'un "ADN producteur" déterminé cor- respondant à la protéine dont la production est recherchée. Ces sites sont notamment clivables par des endonucléases détermi- nées. Avantageusement, l'un au moins de ces sites n'a pas son équivalent dans l'ADN de complémentation lui-même, de sorte que v l'insertion en phase (le cas échéant par l'intermédiaire d'une chaine de nucléotide comprenant un ou deux nucléotides, le cas échéant augmenté d'un nombre entier de triplets) d'un ADN producteur partiellement incomplet ou d'un ADN producteur com- plet dans ce site n'affectera pas l'ADN de complémentation. Celui-ci restera alors apte, en tout état de cause, à pourvoir, d'une part, à sa fonction de direction de la réplication sous le contrôle de la cellule eucaryote, d'autre part, à sa fonc- tion de "marqueur" dans ces cellules. D'une façon générale, ces parties du vecteur de l'invention comprennent, de préférence, les éléments d'ADN qui leur sont nécessaires pour également permettre le clonage de ce vecteur dans des micro-organismes, notamment des bacté- ries telles que E.coli. Elles comprennent alors avantageuse- ment également au moins un marqueur, par exemple facteur de résistance à un antibiotique, apte à faciliter, de façon en soi connue, le repérage de celles des colonies de micro-orga- nismes effectivement transformées. Les vecteurs préférés selon l'invention com- portent donc de préférence le marqueur que constitue l'ADN de complémentation vis-à-vis de cellules eucaryotes, et au moins un marqueur distinct, à l'extérieur de l'ADN de complé- mentation, propre à permettre la détection de ceux des micro- organismes, notamment de celles des bactéries, qui sont aptes à héberger et propager - ce même vecteur, ne serait-ce que pour en produire des quantités suffisamment importantes, en vue de son utilisation ultérieure dans des cultures de cellules eucaryotes. Bien que le vecteur selon l'invention puisse présenter les caractéristiques d'un phage, il est de préférence sous la forme d'un plasmide car il permet également l'insertion dans son génome d'ADN producteur de taille plus importante. Un vecteur préféré de l'invention, ci-après dénommé pFG5 est dérivé du plasmide pBR 322 auquel a été in- corporé, après ouverture de son site BamHI, un fragment d'ADN délimité par deux extrémités cohésives contenant le gène TK (et en particulier l'allèle de type sauvage de ce gène) du virus de l'herpès. pFG5 possède donc deux sites BamflI, le gène TK et le facteur de résistance à l'ampicilline lui provenant du plasmide PBR322 d'origine. pFG'5 a cependant perdu le fac- t teur de résistance à la tétracycline que possédait antérieure- ment pBR322. La séquence d'ADN correspondante de pBR322, com- portait en effet le susdit site BamHI. Ce vecteur pFG5 comporte encore, entre autres sites reconnaissables par des enzymes de restrictions et si- tués hors du fragment d'ADN contenant le gène TK, un site HindIII dans lequel peut, notamment par recombinaison in vitro, être inséré un ADN producteur, sans que soit affecté le gène TK (qui ne contient pas lui-même de site Hind III). Bien entendu, il-ne s'agit là que d'un site préféré d'introduction de l'ADN producteur. D'autres sites peuvent également être mis en oeuvre, par exemple les sites EcoRI. Cependant, dans la mesure o de tels sites sont égale- ment présents dans le gène TK, il sera nécessaire, d'une part d'avoir recours à des techniques d'hydrolyse partielle (en soi connues) de pFG5 par EcoRI dans la phase correspondante de la construction in vitro du recombinant contenant l'ADN producteur, pour produire des fragments linéaires excisés à partir de PFG5, dont certains des sites EcoRI,et plus particulièrement ceux du gène TK seront préservés, d'autre part de prévoir des opérations préliminaires supplémentaires d'identification des recombinants obtenus contenant à la fois l'ADN producteur et le gène TX +, notamment dans les cellules eucaryotes destinées à ultérieurement héberger, propager et exprimer ledit recombi- nant. Là encore, les techniques immunologiques telles que rap- pelées plus haut, ou encore celles qui seront décrites plus loin, au cours de l'exposé d'un exemple détaillé de construc- tion d'un vecteur conforme à l'invention, peuvent atre utilisées. Dans l'exemple de plasmide préféré selon l'in- vention, qui vient d'Eure décrit, l'ADN de complëmentation utilisé présente encore une taille notable vis-à-vis du seul gène TK (dont la taille est de l'ordre de 1,3 kb). Bien entendu, l'invention couvre aussi tout autre type de re- combinant dans lequel l'ADN de complémentation contenant le gène TK (ou un ADN équivalent susceptible de l'exprimer) est plus court, par exemple le fragment délimité par deux extrémi- tés Pvu II, de part et d'autre du gène TK (voir figure 2). A cet égard on citera encore plus particulièrement, à titre de vecteur préféré selon l'invention le plasmide résultant de l'insertion dans le site Pvu II de pBR322 par recombinaison génétique in vitro, du dernier fragment d'ADN de complémenta- tion mentionné à titre d'exemple. Le procédé selon l'invention, pour la détec- tion aisée des vecteurs comportant un ADN de complémentation tel qu'il a été défini plus haut, est caractérisé en ce que on l'incorpore à une culture de cellules eucaryotes déficientes en le gène homologue de cet ADN de complémentation (par exemple suite à une mutation accidentelle ou provoquée), ces cellules appartenant à une espèce normalement pourvue d'un tel gène ho- mologue, celui-ci étant antigéniquement distinct de celui de n0 l'ADN de complémentation, et en ce que l'on produit une culture de ces cellules dans un milieu dans lequel celles qui n'ont pas incorporé le vecteur selon l'invention ne peuvent pas se déve- lopper. Il résulte déjà de ce qui précède que les sou- ches ayant intégré le vecteur selon l'invention présentent toutes les caractéristiques qui permettront leur identification aisée dans une population cellulaire, d'o les possibilités de clonage des cellules ayant incorporé à leur patrimoine génétique le vec- teur en question. Il en va évidemment de même si ce vecteur a au préalable été modifié, par insertion dans le site approprié d'un ADN producteur déterminé, d'o encore d'ailleurs des pos- sibiligés d'identification supplémentaires des souches modifiées (par exemple par hybridation in situ ou directement expression de la protéine recherchée correspondante). D'autres caractéristiques de l'invention apparaîtront encore au cours de la description qui suit de la construction de vec- teurs préférés et des conditions dans lesquelles il peut être utilisé pour transférer dans une cellule eukariote un ADN pro- ducteur spécifiant une protéine déterminée. Référence sera faite aux dessins dans lesquels: - la figure 1 est un schéma simplifié du plasmide pBR322 - la figure 2 est une figure complétée du plasmide pFG5. 1 ) Préparation du virus de l'herpès, souche F HSV-1 Des cellules humaines diploïdes MRC5 sont cultivées dans un milieu de Eagle contenant du sérum de veau (10%) et 3,6 g/l de tricine. La souche de virus susdite est propagée dans cette culture de cellules à raison d'un taux d'infection de 0,1 unité formatrice de plages par cellule. La culture est récoltée 48 heures après infection. La suspension de virus extra cellulaire obtenue est clarifiée à 2 000 g pendant 10 minutes et conservée à -70 C. 2 ) Purification de 1'ADN viral La suspension clarifiée de virus est soumise à centrifugation à 60 000 g pendant une heure à 4 C. Le culot récupéré est déprotéinisé avec de la protéinase K (MERCK) à raison de 100/ug par ml à 37 C, pendant deux heures. Cette opé- ration est ensuite répétée, cette fois ci en présence de dodé- cyl-sulfate de sodium (0,3%). L'ADN viral est séparé de l'ADN cellulaire en présence de bromure d' " éthidium" par centrifugation différentielle dans un gradient de densité dans une solution d'iodure de sodium. Le bromure d'éthydium est séparé de la fraction contenant l'ADN viral par des extractions avec de l'alcool 5-isoamylique. Après des dialyses répétées contre un tampon Tris.HCl 20 mM; pH 7,5; EDTA 1 mM, on obtient un ADN viral caractérisé par un rapport A260:A280 supérieur à 1,90. 3 ) Construction du recombinant pFG5 L'ADN viral, d'une part, et le plasmide pBR322, d'autre part, sont respectivement traités comme suit avec l'en- zyme de restriction BamHI fabriqué par la société dite "New England Biolabs" et selon les conditions prescrites par cette société. Les réactions sont terminées par chauffage pendant minutes à 65 C. Suite à la ligation des fragments d'ADN en présence de T4 DNA ligase au sein d'une solution tampon conte- nant,par 100 microlitres: Tris H Cl 20 mM; pH 7,4; 2,6 mg d'albumine bovine; dithiothreitol 5,2 mM; ATP 0,05 mM et 2/ul d'enzyme par/ug d'ADN. Ces opérations de ligation sont effectuées pendant la nuit à 4 C. 4 ) Sélection et amplification de vecteurs conformes à , l'invention On procède comme décrit ci-après à la trans- formation d'une culture de cellules E.coli 1106 r K m K Une culture préparée pendant la nuit précé- dente des bactéries ci-dessus est diluée dans 100 ml d'un bouillon de culture L et incubée à 37 C jusqu'à ce que soit atteinte une absorbance à 600 nm de 0,4. Les cellules sont ensuite centrifugées, récupérées et remises en suspension dans 50 ml d'une solution de CaCl2 50 mM. Les cellules sont à 2.o nouveau centrifugées, récupérées et remises en suspension dans 4 ml de CaC12 50 mM et conservées dans la glace. microlitres d'ADN récupérés dans l'opéra- tion précédente sont mélangés avec 150 microlitres de la sus- pension bactérienne. Les cellules sont ensuite maintenues à C pendant 3 minutes, puis à 37 C pendant 5 minutes. On ajoute 0,5 ml de bouillon L et l'on agite les cellules à 37 C pendant 45 minutes. Des parties aliquotes de O,1 à 0,2 ml de la suspension cellulaire sont ensuite étalées sur des milieux à base de tryptone contenant 12 microgrammes par ml d'ampicil- line. On procède à l'incubation de la culture pendant 24 heu- res à 37 C. Cette opération permet l'isolement tant des bactéries hébergeant un plasmide du type pBR322 que les bac- téries hébergeant des plasmides du type pFG5. En effet, comme on le constate à l'examen des figures 1 et 2 représentatives de cartes, simplifiées à l'ex- treme en ce qui concerne le plasmide pBR322 (figure 1) et le plasmide pFG5 (figure 2), les deux types de plasmides comportent tous deux un facteur de résistance à l'ampicilline R Ap il 2458584 Comme on le voit également à l'examen des figures, l'ADN de complémentation, dont la figure 2 donne une carte plus détaillée, a été insérée dans le site BamHI du plas- mide pBR322 de la figure 1. L'insertion de cet ADN de complé- mentation a pour effet de faire disparaître le facteur de résistance à la tétracycline TcR dans lequel se trouve le site BamHI, comme représenté schématiquement à la figure 1. C'est précisément cette disparition qui est mise à profit dans l'opération supplémentaire de tri qui con- siste à récupérer les bactéries ayant poussé sur le milieu précé- dent, à les ré-étaler sur un milieu de tryptone contenant à la fois de l'ampicilline (12/ug/ml) et de la tétracycline (10/ug/ml) et à réincuber cette culture à 370C pendant 24 heures. Seules poussent alors les bactéries auxquelles ont été incorporés les plasmides pPG5. L'ADN de complémentation utilisé dans le plasmide pFG5 a une taille plus de deux fois supérieure à celle du gène TK dont l'emplacement relatif est montré par le segment en trait plein 11,3 KdTK" de la figure 2. Les techniques qui ont été décrites jusqu'à ce point avec la mise en oeuvre, au niveau des opérations de recombinaison génétique, de l'enzyme de restriction Bam HI, peuvent être reproduites sensiblement de la même manière, cette fois ci en mettant en oeuvre l'enzyme de restriction PvuII. On peut alors réaliser l'insertion du fragment d'ADN plus petit repéré par les lettres a et b dans la figure 2, mais comportant encore la totalité du gène TK dans le site PvuII du plasmide pBR322, représenté à la figure 1. On notera que les nombres qui figurent dans la figure 2 ont pour objet de préciser les distances relatives, exprimées en nombres de nucléotides, des différents sites con- sidérés vis-à-vis d'un site EcoRI du plasmide, pris comme point d'origine. Les plasmides répliqués -dans les dernières souches qui ont poussé, sont récupérés à partir de ces bac- téries par des techniques tout à fait classiques (comprenant * la rupture des bactéries, la récupération des produits intra- cellulaires et la séparation des autres constituants du type ADN parcentrifugation différentielle dans un gradient de densité en présence de bromure d' iléthidiunl". d) Transfert du plasmide dans des cellules de souris L TK On opère Dtelon la technique décrite par Graham et Van der Ed (1973) avec quelques modifications. Le plasmide est mélangé avec un ADN de sperme de saumon utilisé comme entraîneur à une concentration finale de 10 microgrammes par-ml dans un tampon isotonique Herpes. NaCl 8 g/l; KCl 0,37 g/l; Na2HPO4 0,125 g/l; dextrose 1 g/l et Herpes 5 g/l (pH 7,05) On ajoute encore le produit dénommé Aprotéine * (Sigma) à raison de 0,2 ml/ml de solution d'ADN. On ajoute aussi CaCl2 jusqu'à une concentration finale de 125 nM. On laisse reposer à température ambiante de 5 à 10 minutes. Des cellules de souris L TK cultivées dans du milieu de Leibovitz L 15 contenant 10% de sérum de veau et 3,6 g/l de tricine, sont prélevées et mises dans des boites de Corning de 25 cm. Les cultures sont recouvertes d'un mé- lange de 0,5 ml d'ADN et de phosphate de calcium. Après 30 mi.- nutes à 370C on ajoute 10 ml du milieu de culture. 6 à 7 heures plus tard les cultures cellulaires sont agitées avec 20% de DMSO selon la méthode de STAW et coll. (1976) 24 heures plus tard le milieu est changé. Il est remplacé par le milieu d'HAT de MUNYON déjà cité. On alimente les boites avec du milieu HAT tous les 4 à 7 jours. Les premières colonies de cellules trans- formées apparaissent 8 à 10 jours plus tard. Trois semaines après le début de l'expérience on récupère des colonies de cellules devenues TK+. La présence de protéines exprimées par le gène TK est également détectée par la technique déjà décrite par MUNYON. ) Utilisation du plasmide selon l'invention Le vecteur selon l'invention, dont un exemple vient d'être décrit, peut être utilisé pour l'insertion d'un ADN choisi. Dans le cas de pFvu5, il est avantageusement in- troduit dans le site Hind III au besoin après modification de ses extrémités cohésives, dans les conditions déjà rap- pelées plus haut. D'autres sites du plasmide, en dehors du gène TK, peuvent également, le cas échéant, être mis en oeu- vre également dans les conditions indiquées plus haut. Le vecteur modifié peut être sélectionné et utilisé pour le transfert de l'ADN producteur dans une souche de cellule eucaryote en mettant également en jeu les techniques qui ont été décrites dans ce qui précède. A titre d'exemple d'ADN producteurs qui peu- vent être insérés dans le vecteur selon l'invention, on citera: les gènes de la somatostatine, lysozyme de poule, ou un ADN codant l'antigène de l'hépatite virale. L'invention concerne également les souches de cellules eucaryotes ou procaryotes hébergeant les vec- teurs tels qu'ils ont été définis, y inclus ceux comportant, inclus dans leur génome, un ADN producteur. REVENDICATIONS 1 - Vecteur caractérisé par la présence dans son génome d'un ADN étranger (ADN de complémentation) auquel correspond norma- lement, dans au moins certaines catégories de cellules eucaryotes, un gène homologue exprimable sous la forme d'une protéine homologue à celle spécifiée par l'ADN étranger, cet ADN étranger étant tel que la déficience, naturelle ou induite, desdites cellules euca- ryotes en ce gène homologue,est susceptible d'être complémenté par l'ADN étranger, après l'introduction de celui-ci dans de telles cellules. 2 Vecteur selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'ADN de complémentation contient le gène de la thymidine- kinase du virus herpès simplex HSV-1. 3 - Vecteur selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce que ses parties constitutives, autres que l'ADN de complémentation, appartiennent à un ADN d'origine distincte, tel que phage ou, de préférence,plasmide, pourvu de sites déter- minés, notamment clivables par des endonucléases, permettant l'in- sertion dans le vecteur - et son expression future - d'un "ADN producteur" déterminé correspondant à la protéine dont la produc- tion est recherchée. 4 - Vecteur selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'un au moins de ces sites n'a pas son équivalent dans l'ADN de complémentation lui-même. - Vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il est également clonable dans des micro- organismes et qu'il est également pourvu d'au moins un marqueur, tel qu'un facteur de résistance à un antibiotique, apte à faciliter, de façon en soi connue, le repérage de celles des colonies de micro- organismes effectivement transformées. 6 - Vecteur selon l'invention, caractérisé en ce qu'il est dérivé du plasmide pBR 322 auquel a été incorporé, après ouverture de son site BamHI, un fragment d'ADN délimité par deux extrémités cohésives contenant le gène TK (et en particulier l'allèle de type sauvage de ce gène) du virus de l'herpès et en ce qu'il comporte, à l'extérieur du susdit gène de complémentation, un facteur de ré- sistance à l'ampicilline. 7 - Vecteur selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il comporte un ADN producteur inséré dans un site situé hors de l'ADN de complémentation. 8 - Vecteur selon les revendications 2 et 7 considé- rées ensemble, caractérisé en ce que l'ADN producteur est inséré dans un site Hind III. 9 - Vecteur selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'ADN de complémentation contient le gène de la dihydrofolate réductase. - Procédé pour la détection aisée des vecteurs comportant un ADN étranger (ADN de complémentation), auquel correspond normalement, dans au moins certaines catégories de cellules eucaryotes, un gène homologue exprimable sous la forme d'une protéine homologue à celle spécifiée par l'ADN étranger, caractérisé en ce qu'on l'incorpore à une culture de cellules eucaryotes déficientes en le gène homologue de cet ADN de complémentation (par exemple suite à une mutation accidentelle ou provoquée), ces cellules appartenant à une espèce normalement pourvue d'un tel gène homologue, celui-ci étant antigéniquement distinct de celui de l'ADN de compl&mentation, et en ce que l'on produit une culture de ces cellules dans un milieu dans lequel celles qui n'ont pas incorporé le vecteur selon l'invention ne peuvent pas de développer.