Les protéines thérapeutiques représentent une classe de médicaments pour le traitement de diverses maladies telles que différentes formes de cancer ou les maladies auto-immunes. La grande majorité de ces protéines commercialisées sont produites à partir de lignées cellulaires d’ovaire d’hamster chinois (Chinese Hamster Ovary, CHO) qui permettent notamment de réaliser les modifications post-traductionnelles nécessaires à l’obtention de protéines biologiquement actives.  Le développement de lignées cellulaires CHO hautement productrices à grande échelle est un processus long (de 6 à 18 mois) et très coûteux. Celui-ci débute par la transfection, suivie par la sélection des cellules ayant intégré aléatoirement dans leur génome le gène codant pour la protéine d’intérêt, donnant lieu à une population hétérogène en termes de production, de qualité du produit et de croissance. Depuis quelques années, l’utilisation de ces populations hétérogènes est devenue une approche très populaire pour la caractérisation biochimique des protéines et les études précliniques nécessitant la production rapide et à moindre coût de quantités suffisantes de matériel. Les autorités de régulation des médicaments exigent néanmoins que les lignées cellulaires soient issues d’une unique cellule progénitrice (ou clone). L’obtention d’une lignée cellulaire hautement productrice nécessite une étape de criblage, afin d’isoler un clone présentant à la fois un avantage de production et de croissance. Or, cette étape est considérée comme l’étape limitante du processus de développement de lignées cellulaires puisque, du fait de la très faible fréquence des clones forts producteurs, il est nécessaire de cribler des milliers de cellules. Jusqu’à date, aucun mécanisme précis n’a permis d’expliquer la faible occurrence des clones forts producteurs dans les populations hétérogènes sélectionnées. Cependant, la combinaison de mécanismes moléculaires et cellulaires mis en place en réponse au stress dû à la surexpression du gène d’intérêt pourrait être mise en cause. Au sein de notre laboratoire, nous avons développé une lignée cellulaire CHOBRI/rcTA contenant le système d’expression inductible au cumate. Ce système, contrairement à la majorité des systèmes constitutifs utilisés dans l’industrie, permet de choisir le moment et le niveau d’expression de la protéine d’intérêt. En effet, l’ajout de l’inducteur cumate permet au transactivateur chimérique rcTA de se fixer au promoteur fort CR5 et d’activer la transcription. Ce projet de recherche se base sur l’hypothèse que l’utilisation d’un système d’expression inductible permettrait de limiter le stress potentiel induit par la surexpression de la protéine recombinante durant l’étape de sélection, qui pourrait affecter le taux de croissance et la survie des clones lors la dilution limite. La fréquence de clones forts producteurs dans la population sélectionnée serait alors augmentée, améliorant la productivité de la population et facilitant l’étape de criblage. Dans un premier temps, en combinant les vecteurs d’expression plasmidiques et la lignée CHOBRI/rcTA, nous avons développé et optimisé une plateforme performante pour la production rapide de protéines recombinantes via la génération de populations hétérogènes. Nous avons ainsi obtenu des populations produisant environ 0.9 g/L de la protéine de fusion hCD200Fc et environ 0.35 g/L de l’anticorps rituximab. La stabilité de la production de chacune des populations après un mois en culture et après un cycle de congélation-décongélation a également été démontrée. De plus, l’étude de la qualité du produit final n’a montré aucune différence majeure entre les protéines produites à partir d’un clone stable ou d’une population hétérogène, et ce pour les deux protéines. Enfin, nous avons montré la supériorité du promoteur inductible CR5 par rapport à deux promoteurs constitutifs couramment utilisés dans l’industrie. Dans un second temps, l’impact de l’expression de la protéine recombinante durant l’étape de sélection sur la productivité et la répartition clonale de la population hétérogène sélectionnée a été étudié. Pour cela, deux populations hétérogènes issues d’une même transfection et produisant le hCD200Fc ont été générées. Pour l’une des populations hétérogènes, l’expression de la protéine a été activée durant la phase de sélection par l’ajout de cumate. Par la suite, pour chacune des populations hétérogènes, la production en culture en mode cuvée-alimentée a été comparée et la répartition clonale via le criblage de micro-populations a été étudiée. Nous avons ainsi mis en évidence qu’une diminution de l’expression de la protéine recombinante durant l’étape de sélection mène à une augmentation significative de la productivité de la population hétérogène, due à un enrichissement de cellules présentant une productivité spécifique accrue. Enfin, lors de la sélection, nous avons observé une augmentation de la mortalité cellulaire accompagnée d’une augmentation de l’expression d’un marqueur du stress du réticulum endoplasmique dans la population exprimant de haut niveau de hCD200Fc sous induction du cumate. Ces résultats suggèrent que durant la phase de sélection, la surexpression de la protéine recombinante entraîne de la part de la cellule l’activation des voies de réponse au stress du réticulum endoplasmique, pouvant alors limiter son amplification ou induire le phénomène d’apoptose. Ce projet a contribué au développement d’une plateforme performante pour la production rapide de protéines recombinantes via la génération de populations hétérogènes stables. De plus, la caractérisation du système inductible au cumate dans ce contexte a permis de démontrer le réel avantage de l’utilisation d’un système inductible pour réduire le temps et les coûts de développement de lignées cellulaires stables à haut potentiel de production.

Mots-clés : Système d’expression inductible au cumate , Cellule CHO , Production de protéines recombinantes