全血細胞計數

全血細胞計數（complete blood count，CBC），也可稱為血細胞常規檢驗、血常規、血細胞分析、血象2013，是一種臨床常規檢測項目，用於評估血液中白細胞、紅細胞和血小板三類血細胞的數量和形態特徵，主要涉及紅細胞計數、紅細胞指數、白細胞計數、血小板計數、血紅蛋白濃度、血細胞比容等指標。通常全血細胞計數還包含用於分析各類白細胞比例分佈的白細胞分類計數。
全血細胞計數的檢測結果既可用於健康狀態監測，也可作為疾病診斷依據。檢測結果需對照參考值範圍（受性別與年齡差異影響）進行分析。其異常指標可幫助診斷部分疾病，如貧血、血小板減少症。其中，紅細胞指數能提示貧血病因（如缺鐵性貧血與維生素B12缺乏型貧血）；白細胞分類計數則有助於輔助診斷病毒感染、細菌感染、寄生蟲感染還是白血病等血液系統疾病。不過全血細胞計數也具有自身侷限性，並非所有超出參考值範圍的檢測值都需要醫學干預；反之，也不代表所有項目均在參考值範圍內就代表身體處於健康狀態。
在當代，全血細胞計數主要使用全自動血細胞分析儀進行檢測，該儀器可計數各類血細胞並收集其大小、結構等形態學信息。在檢測時，血細胞分析儀能夠測定血紅蛋白濃度，並基於紅細胞計數和血紅蛋白測定值自動計算紅細胞指數。當檢測結果異常時，需採用人工鏡檢方法進行復檢。據統計，約10-25%的樣本需要進行人工血塗片檢查。在人工檢查時，樣本會被染色並放在顯微鏡下觀察，以檢驗儀器檢測結果是否無誤並查找異常。在缺乏自動化設備的實驗室中，血細胞比容可通過離心樣本後測定紅細胞比例獲得，血細胞計數則需藉助血細胞計數板在顯微鏡下人工完成。
全血細胞計數技術的發展經歷了多個階段。1852年，卡爾·維爾羅德發明了首個血細胞計數方法，該方法通過將定量血液塗布於顯微鏡載玻片後進行人工計數。1874年，路易-夏爾·馬拉色發明的血細胞計數板簡化了顯微鏡分析血細胞方法。至19世紀末，保羅·埃爾利希與4=德米特里·列昂尼多維奇·羅曼諾夫斯基發明了白細胞和紅細胞染色技術，這些技術至今仍廣泛應用於血塗片檢查中。20世紀20年代，血紅蛋白自動測定方法問世；1929年，4=麥克斯韋·溫特羅布提出了血細胞比容測定法，並定義了紅細胞指數。1953年華萊士·H·庫爾特提出的庫爾特原理使得血細胞計數自動化進程取得突破性進展，該技術利用電阻抗測量實現血細胞計數和大小測定，至今仍是眾多全自動血細胞分析儀的核心技術。20世紀70年代，基於光學測量的細胞計數與識別技術的研究進展推動了白細胞分類計數自動化的發展。

**檢測目的**
alt=左上為運送氧氣的紅細胞，在血液中數量最多，並使血液呈紅色。右上為白細胞，白細胞是免疫系統的重要組成部分。下方是血小板，血小板在止血和凝血過程中起著重要作用。|thumb|人體血液中的紅細胞、白細胞與血小板。運送氧氣的紅細胞在血液中數量最多，並使血液呈紅色。白細胞是免疫系統的重要組成部分。血小板在止血和凝血過程中起著重要作用。
血液由紅細胞、白細胞、血小板三類血細胞和血漿組成pp=2-3，深度參與著人體的新陳代謝、免疫、內環境穩態、止血凝血等生理功能2024，因此組織、器官的病變往往會造成血液成分的變化2020。而全血細胞計數檢查可準確反映三類血細胞的數量、比例和形態變化，對醫生判斷身體狀況與病情具有重要作用2020，因此已成為最常進行的醫學實驗室檢測項目p=244p=497。
全血細胞計數常被用做疾病篩查和身體狀況評估工具p=377。當醫生懷疑患者存在感染、出血性疾病或特定癌症等影響血細胞疾病時，往往會進行全血細胞計數以瞭解患者血液系統狀態，及早確認病情2020。對於已確診導致全血細胞計數指標異常疾病或正在接受可能影響全血細胞計數指標治療的患者，需定期進行全血細胞計數以監測病情變化p=277，根據檢測結果判斷是否需要輸血治療2009。
具體到各醫學專科中，全血細胞計數都有特定的應用。如在血液科中，全血細胞計數與血塗片檢查能夠全面反映造血系統成人以骨髓造血為主。的狀態p=244。例如，三種血細胞指數均偏低時（全血細胞減少症）表明可能有疾病引發了骨髓造血功能障礙，需進一步進行骨髓檢查明確病因p=43。血塗片中出現的異常細胞可為急性白血病或淋巴瘤的診斷提供重要線索p=11。當中性粒細胞或淋巴細胞計數顯著升高，結合臨床表現和血塗片特徵，可能暗示為骨髓增殖性疾病或淋巴增殖性疾病。此外通過綜合分析全血細胞計數結果和血塗片特徵，還可有效鑑別貧血的真正病因，判斷到底是營養性缺乏性貧血、骨髓疾病、獲得性溶血性貧血、還是鐮狀細胞貧血和地中海貧血等遺傳性疾病pp=42-44。
在患者接受手術前，全血細胞計數用於篩查貧血、評估血小板水平、檢測潛在感染pp=96-97；術後則用於監測失血情況和血液成分變化p=377。在急診醫學中，全血細胞計數能幫助醫生評估發熱、腹痛、呼吸急促等非特異性症狀，以迅速探明病因p=130p=219，同時還可用於確認病人出血和創傷程度p=1464。對於接受放療或化療的腫瘤患者，由於這些治療手段會抑制骨髓造血功能，可能導致白細胞、血小板和血紅蛋白水平顯著降低，因此需要密切監測血細胞計數p=280。服用某些精神藥物（如氯氮平、卡馬西平）的患者需定期接受全血細胞計數檢測，在極少數情況下，這些藥物可能會導致危及生命的白細胞數量下降（粒細胞缺乏症）2018。在產科中，全血細胞計數作為產前常規檢查項目可及時發現妊娠期貧血，預防母嬰不良結局pp=20-21；在嬰兒出生後，全血細胞計數中的白細胞總數、中性粒細胞絕對計數、未成熟中性粒細胞比例與血小板計數等指標能有效幫助醫生診斷新生兒膿毒症2022。

**檢測方式與檢測原理**
通過指尖採血採取樣本，使用雅培CELL-DYN 1700全自動血細胞分析儀進行檢測的全血細胞計數
為防止血液自然凝固，全血細胞計數的檢測樣本採集需使用含抗凝劑（通常為EDTA）的真空採血管pp=29-30。採血通常採用靜脈穿刺法，但在靜脈採血困難時，也可進行末梢採血，從成人指尖或新生兒足跟的毛細血管中採血p=28，一般而言靜脈血樣本的檢測結果較末梢血樣本更為準確全面2020。為保障檢測的準確性，樣本採集後應在兩小時內進行檢測2017。目前樣本檢測主要藉助全自動血細胞分析儀，當出現計數異常、散點圖直方圖異常、儀器報警等異常結果時，需使用血塗片鏡檢或人工血細胞比容測定進行人工複檢2023。在缺乏自動化分析設備的實驗室中，血細胞計數和血紅蛋白測定也可人工測定完成pp=551-555。

**全自動血細胞分析儀檢測**
在使用血細胞分析儀檢測時，樣本首先需經過充分混勻以使細胞均勻分佈，隨後在被稀釋後分配至多個檢測通道，其中一個檢測通道用於紅細胞和血小板計數，而另一個檢測通道用於白細胞計數和血紅蛋白測定。部分儀器會使用專門通道用於血紅蛋白測定，其他通道專用於白細胞分類計數、網織紅細胞計數和血小板檢測p=292015。檢測過程中，細胞懸浮液在流體動力作用下通過傳感器，通過流式細胞術精確測量物理形態p=8。為提高檢測準確性，現代血細胞分析儀採用流體動力學聚焦技術，將稀釋樣本注入鞘液，利用層流使細胞呈單列排列依次通過檢測區，從而實現單個細胞的精準檢測pp=32-33。
希森美康的XT-4000i全自動血細胞分析儀
庫爾特原理：瞬時電流下降與顆粒體積成正比。
血紅蛋白濃度的測定需在獨立於紅細胞計數通道的專用通道中進行。首先向測試樣本加入試劑，使紅細胞裂解釋放其胞內的血紅蛋白。在部分血細胞分析儀中，血紅蛋白測定與白細胞計數共用於同一通道，這種設計使白細胞計數更為容易pp=29-30。血細胞分析儀的檢測原理基於分光光度法，具體而言就是利用血紅蛋白濃度與吸光度之間的線性關係進行血紅蛋白濃度分析。檢測過程中，試劑將氧合血紅蛋白、碳氧血紅蛋白等不同血紅蛋白形式轉化為更為穩定的形式（通常為氰化高鐵血紅蛋白），並使其發生顯色反應。隨後使用特定波長（通常為540納米）測定顯色溶液的吸光度，即可準確計算血紅蛋白濃度2019。
血細胞分析儀傳感器主要利用電阻抗和光散射兩種原理實現細胞的識別與計數p=208。電阻抗原理又被稱為庫爾特原理，具體來講就是將細胞懸浮於帶電液體中，當細胞通過小孔時，由於其導電性低，會導致電流瞬時下降，而細胞通過小孔時產生的電脈衝幅度與細胞體積成正比，由此脈衝數則反映了樣本中的細胞數量pp=30-31。通過繪製細胞體積分佈直方圖，並依據不同細胞類型的典型體積設置閾值，即可實現各類細胞的識別與計數pp=208-209。光散射技術則是利用激光或鎢滷燈光源照射細胞，當細胞通過光束時以不同的角度散射光，隨後利用光度計通過檢測散射光獲取細胞大小和結構信息p=32。其中，前向散射光主要源於光的衍射效應，其強度與細胞大小呈正相關；而側向散射光則由光的反射和折射產生，可反映細胞內部結構的複雜程度p=32。
基於射頻的檢測方法可與阻抗技術聯合使用。該技術雖然同樣基於細胞通過小孔時引起的電流變化進行檢測，但由於高頻射頻電流能夠穿透細胞膜，其產生的脈衝幅度可反映細胞核的大小、結構和細胞質中顆粒數量等信息p=210。在血小板計數中，與血小板大小相似的小紅細胞和細胞碎片可能造成干擾，而大血小板則易被漏檢。為此，一些血細胞分析儀還採用如熒光染色、多角度光散射和單克隆抗體標記等技術提高血小板計數的準確性2015。
大多數血細胞分析儀都可直接測量出平均紅細胞體積，隨後計算紅細胞計數與平均紅細胞體積的乘積即可得到血細胞比容；一些血細胞分析儀也通過紅細胞總體積與樣本體積之比測定血細胞比容，再結合紅細胞計數推算平均紅細胞體積。基於血紅蛋白濃度、紅細胞計數和血細胞比容三個基本參數，可進一步計算平均紅細胞血紅蛋白含量和平均紅細胞血紅蛋白濃度。此外，通過分析平均紅細胞體積標準差得出的紅細胞分佈寬度，可反映紅細胞體積的異質性p=2。
白細胞分類散點圖示例：不同顏色的點簇表示不同的細胞群。
經試劑處理後，當白細胞的體積繪製在直方圖上時，會形成三個明顯的峰。這些峰大致對應粒細胞、淋巴細胞和其他單核細胞，從而僅基於細胞體積即可進行三分類計數p=209。更先進的血細胞分析儀通過聯合使用光散射、射頻分析等技術p=37，或採用特異性染料標記細胞內化學物質（如未成熟細胞中濃度較高的核酸p=3或髓系細胞特有的髓過氧化物酶p=210），可實現五分類甚至七分類計數。其中，嗜鹼性粒細胞的檢測通常在專用通道中進行，在該通道中試劑會破壞其他白細胞而保留嗜鹼性粒細胞。檢測數據經分析後生成散點圖，形成與各類白細胞對應的特徵性點簇p=37。近年來在機器學習和人工智能的幫助下，一些先進的血細胞分析儀使用全自動血細胞形態數字圖像分析系統可實現白細胞全自動分類計數p=318，該系統通過分析血塗片顯微圖像進行細胞分類，並將分類結果呈現給操作人員以供複檢和必要的人工分類p=39。
目前大多數血細胞分析儀可在不到一分鐘內完成全血細胞計數的所有檢測項目p=208。由於是基於對大量單個細胞進行採樣和計數，檢測結果具有極高的精確性。但是，對於某些形態異常的細胞，儀器無法準確識別，只能進行異常提醒，此時需人工鏡檢鑑定異常細胞2013。

**即時檢測**
是指在患者床邊或診所等實驗室外場合進行的檢測2019。與實驗室檢測相比，即時檢測具有檢測速度快、樣本需求量少、人員無需專門培訓等優勢，特別適用於急診救治和醫療資源匱乏地區。常用的即時血液檢測設備包括採用分光光度法測定血紅蛋白濃度的便攜式血紅蛋白計，以及通過血液電導率估算紅細胞濃度來測定血紅蛋白的i-STAT系統2015。雖然血紅蛋白和血細胞比容可以在用於血氣測試的即時測量設備上檢測，但其準確性有所欠佳2019。另外也有一些專為診所設計的簡化版血液分析儀可提供全血細胞計數及分類計數等基本檢測項目p=43。

**人工檢測**
人工測定血細胞比容。血液經過離心後被分層為紅細胞和血漿上下兩層。
在缺少血細胞分析儀或檢測結果需複檢時，需要使用人工檢測方法pp=551-555。約10-25%的情況，自動檢測結果會被標記異常，需進行人工血塗片複檢，主要原因包括：分析儀無法準確識別的異常細胞群體、儀器質控標誌提示結果可靠性存疑p=225，或檢測值超出預設參考值範圍2013。人工複檢時，需將血液樣本塗布於載玻片上，用羅氏染液染色後使用顯微鏡觀察pp=9-11。人工鏡檢內容包括評估紅細胞、白細胞及血小板的形態特徵，並記錄所有異常項目pp=288–289。其中，紅細胞形態改變具有重要診斷價值，例如鐮狀紅細胞提示著鐮狀細胞病，而大量裂紅細胞的出現則需排查微血管病性溶血性貧血。在某些炎症和多發性骨髓瘤等骨髓瘤蛋白疾病患者中，血漿蛋白水平升高可導致紅細胞疊連。某些血液寄生蟲疾病（如瘧疾、巴貝蟲病）可通過血塗片直接檢出病原體p=154。當自動血小板計數結果不準確時，血塗片鏡檢還可用於血小板計數2013。
人工白細胞分類計數需由檢驗人員在血塗片上計數100-200個白細胞，依據細胞形態特徵進行分類p=10。這樣就得到了各類白細胞所佔百分比，再將其乘以白細胞總數，即可獲得各類白細胞的絕對計數值p=329。因計數細胞數量遠少於儀器分析，人工計數方法容易受到抽樣誤差的影響，但它可以識別儀器無法分辨的異常細胞2013，如急性白血病患者血液中的前體細胞p=289。此外，通過顯微鏡檢查還能發現如中毒顆粒和空洞形成、杜勒小體等具有重要臨床意義的細胞形態改變pp=296–297。
人工測定血細胞比容可採用毛細管法，將抗凝全血注入毛細管，經離心後直接測量紅細胞柱所佔百分比，該百分比即是血細胞比容。在一些情況下，儀器檢測結果可能受到干擾並不準確，如患者患有紅細胞增多症（紅細胞計數異常升高）或重度白細胞增多症（白細胞計數顯著升高，導致白細胞被誤計為紅細胞，從而干擾紅細胞測量）時p=226，此時人工測定血細胞比容方法能夠發揮很大作用。
紅細胞、白細胞和血小板人工計數常使用血細胞計數板。血細胞計數板是一種專用於人工細胞計數的特殊顯微鏡載玻片，其內置腔室可容納稀釋血液樣本。腔室表面刻有計數網格，樣本佔據的網格數可換算為樣本體積，操作者通過計數網格內的細胞數量再除以樣本體積，即可計算出樣本中的細胞濃度pp=551-555。與儀器分析相比，人工計數方法操作繁瑣且準確性較低，因此除缺乏相關涉筆的實驗室外，現已很少使用pp=551-555。白細胞計數需使用含可以裂解紅細胞的化合物（如草酸銨、乙酸或鹽酸）的稀釋液處理樣本p=189。有時為便於識別，常在稀釋液中加入染色劑以增強白細胞核的顯色效果。血小板計數方法與之類似，但部分方法會保留紅細胞，此時採用相差顯微鏡可顯著提高血小板識別率pp=22-23。紅細胞人工計數因準確性欠佳而較少採用，實踐中更傾向於使用血紅蛋白測定和血細胞比容測定等替代方法；但在需要時，可使用生理鹽水稀釋血液樣本後進行紅細胞計數pp=190-191。
血紅蛋白的人工測定通常使用分光光度計或比色計。測定時，首先使用裂解試劑處理血液樣本，使紅細胞破裂釋放血紅蛋白，隨後加入轉化試劑將各類血紅蛋白轉化為同一種血紅蛋白形式。再將處理後的溶液放入吸收池，在特定波長（取決於所用試劑類型）下測定吸光度。最後參照吸光度與血紅蛋白濃度關係，即可準確計算樣本的血紅蛋白濃度pp=19-22。對於缺乏實驗室設施的偏遠地區，還可使用血紅蛋白比色卡進行簡易血紅蛋白測定，將血滴滴於測試濾紙上，等待片刻，再將濾紙顏色與比色卡對比即可估算血紅蛋白濃度pp=548-552。

**檢測內容與臨床意義**
全血細胞計數主要檢測血小板、紅細胞和白細胞數量，以及血紅蛋白濃度、血細胞比容值和紅細胞指數。其中紅細胞指數包括：平均紅細胞體積、平均紅細胞血紅蛋含量和平均紅細胞血紅蛋白濃度與紅細胞分佈寬度。此外，全血細胞計數也可包括白細胞分類計數與網織紅細胞計數等檢測項目2020。

**紅細胞、血紅蛋白和血細胞比容**
一份全血細胞計數檢測報告示例，報告顯示血紅蛋白濃度、平均紅細胞體積、平均紅細胞血紅蛋白含量和平均紅細胞血紅蛋白濃度均低於參考值範圍。該檢測結果提示患者存在貧血，其病因可能為缺鐵性貧血或血紅蛋白病。紅細胞通過其內含的血紅蛋白將氧氣從肺部輸送至全身組織，同時將組織代謝產生的二氧化碳帶回肺部排出p=293。全自動血細胞分析儀可精確計數紅細胞與測定平均紅細胞體積，單位通常為百萬細胞/微升（×106/μL）或萬億細胞/升（×1012/L）2020。通過平均紅細胞體積與紅細胞計數的乘積可測定血細胞比容，單位通常為飛昇（fL）或立方微米（μm3）；反之，通過直接測定的血細胞比容和紅細胞計數也可推算平均紅細胞體積pp=33-34。血紅蛋白測定需先裂解紅細胞，單位為克/升（g/L）或克/分升（g/dL）2016。在紅細胞形態正常的情況下，血紅蛋白與紅細胞比容存在恆定關係：紅細胞比容百分比值約為血紅蛋白值（g/dL）的三倍，波動範圍在±3%內。這一關係稱為“三法則”，可用於驗證全血細胞計數檢測結果的可靠性p=195。
基於紅細胞計數、血紅蛋白濃度和血細胞比容三個檢測結果，可計算出平均紅細胞血紅蛋白含量和平均紅細胞血紅蛋白濃度p=22。這兩個指標分別反映單個紅細胞的血紅蛋白絕對含量和相對濃度：平均紅細胞血紅蛋白含量表示每個紅細胞中血紅蛋白的平均質量，而平均紅細胞血紅蛋白濃度則反映紅細胞內血紅蛋白的平均佔比。兩者的區別在於，平均紅細胞血紅蛋白濃度考慮了紅細胞體積因素，而平均紅細胞血紅蛋白含量則並不考慮p=25。平均紅細胞體積、平均紅細胞血紅蛋白含量和平均紅細胞血紅蛋白濃度統稱為紅細胞指數p=22。這些指標的異常改變可通過血塗片鏡檢觀察到：以正常大小的白細胞作為參照，可識別出體積異常的紅細胞；血紅蛋白含量降低的細胞則顯得蒼白pp=73-75。此外，通過上述三個檢測值還可計算出紅細胞分佈寬度，該指標反映了紅細胞體積的異質性程度2019。
紅細胞數量異常增多可導致血紅蛋白濃度和血細胞比容升高，這一症狀稱為紅細胞增多症p=232。根據發病機制不同，紅細胞增多症可分為相對性增多和絕對性增多兩類。相對性紅細胞增多症常見於脫水或使用利尿劑等情況，因血漿含量減少導致紅細胞相對濃度上升所致p=71。絕對性紅細胞增多症則是紅細胞數量本身增加，又可分為繼發性與原發性兩類。繼發性紅細胞增多症通常由組織缺氧或促紅細胞生成素的代償性增加有關，常見於嚴重的慢性心肺疾病、某些先天性心臟病以及異常血紅蛋白病等p=71。而原發性紅細胞增多症被稱為真性紅細胞增多症，是一種骨髓增殖性疾病，表現為紅細胞與其他血細胞生成的過度活躍pp=600-601。
缺鐵性貧血患者的血塗片，呈現特徵性紅細胞形態學改變：紅細胞體積異常減小（小紅細胞增多症），中心淡染區擴大（低色素症低色素性貧血），同時伴有明顯的紅細胞大小不均（紅細胞大小不均症）。
當血紅蛋白濃度、血細胞比容或紅細胞計數異常低於參考值範圍時提示患者存在貧血p=285。貧血本身不是一種獨立的疾病，而是一種反映患者紅細胞異常的臨床症狀p=329。貧血的病因主要包括：失血、生成缺陷紅細胞（無效造血）、紅細胞生成減少（造血功能低下）和紅細胞破壞增加（溶血性貧血）p=286。
通過分析紅細胞指數有助於確定貧血病因。根據平均紅細胞體積大小，貧血可分為小細胞性貧血（平均紅細胞體積降低）和大細胞性貧血（平均紅細胞體積升高）；而平均紅細胞血紅蛋白濃度降低則提示低色素性貧血。當患者存在貧血紅細胞指數卻均處於正常範圍時，為正色素性貧血和正常細胞性貧血。因平均紅細胞血紅蛋白濃度高於參考上限的情況非常少見，在臨床上較少使用高色素性這一術語，平均紅細胞血紅蛋白濃度高於參考上限主要發生於球形細胞增多症、鐮狀細胞病和血紅蛋白C病等疾病p=196。此外，平均紅細胞血紅蛋白濃度升高也可能是某些干擾因素導致的假性檢驗結果，例如紅細胞凝集（引起紅細胞計數假性降低）p=197或高脂血症（導致血紅蛋白測定值假性升高）p=193。
小細胞性貧血通常與缺鐵性貧血、地中海貧血和慢性病性貧血相關；大細胞性貧血則多與酒精濫用、葉酸與維生素B12缺乏、特定藥物使用和某些骨髓疾病相關。正常細胞性貧血的病因包括急性失血、溶血性貧血、骨髓疾病及多種慢性疾病p=196。平均紅細胞體積在實驗室質量控制中具有特殊用途：相較於其他全血細胞計數參數，平均紅細胞體積相對穩定，因此其顯著波動可能表明患者身份混淆、樣本採集錯誤p=26。
紅細胞分佈寬度降低無臨床意義，但其升高表明紅細胞大小異質性增加，這種症狀被稱為紅細胞大小不均症。紅細胞大小不均症常見於營養性貧血，如缺鐵性貧血和維生素B12、葉酸缺乏引起的貧血；而地中海貧血患者的紅細胞分佈寬度通常正常2019。基於全血細胞計數結果，可進一步開展針對性檢查以明確貧血病因，如鐵蛋白檢測以確認是否為缺鐵性貧血，血紅蛋白電泳則有助於鑑別診斷地中海貧血、鐮狀細胞病等血紅蛋白病。left

**白細胞**
檢測結果顯示白細胞和血小板計數顯著升高，同時伴有貧血症狀。白細胞分類計數顯示嗜鹼性粒細胞比例增加，並可見桿狀核粒細胞、未成熟粒細胞與原始細胞p=380。白細胞負責防禦感染並參與炎症反應p=992。白細胞計數升高（白細胞增多症），常見於感染、炎症和生理應激狀態，也可能由骨髓增殖性疾病或淋巴增殖性疾病等涉及異常血細胞生成疾病引起pp=1480-1481。白細胞計數減少（白細胞減少症）常見於放療、化療等治療後和抑制血細胞生成性疾病中p=991。不過白細胞計數受個體生理性因素影響較大，部分個體還會週期性白細胞減少，因此白持續性或者定點性監測的檢測結果才更有臨床意義2017。白細胞計數通常以每微升血液中的細胞數（/μL）或每升中的109細胞數（×109/L）為單位2020。
白細胞分類計數識別並計數各類白細胞，結果以百分比和絕對計數（每單位體積細胞數）兩種形式呈現。白細胞分類計數通常檢測中性粒細胞、淋巴細胞、單核細胞、嗜酸性粒細胞和嗜鹼性粒細胞五類白細胞2020。部分儀器還檢測未成熟粒細胞，具體包括早幼粒細胞、中幼粒細胞和晚幼粒細胞p=10。若在人工分類計數中發現其他細胞類型，也需在檢測報告中註明pp=294-295。
白細胞分類計數結果在疾病的診斷和監測中發揮著重要作用。以中性粒細胞為例，其計數升高（中性粒細胞增多症）常見於細菌感染、炎症反應與骨髓增殖性疾病p=306；而計數降低（中性粒細胞減少症）則可能繼發於化療、特定藥物使用或骨髓疾病p=644。此外，某些先天性疾病也可導致中性粒細胞減少，並可能在兒童病毒或細菌感染後短暫發生p=1483。對於伴有感染症狀的嚴重中性粒細胞減少患者，需及時給予抗生素治療以預防致命性併發症pp=1497-1498。
慢性粒細胞白血病患者的血塗片，可見許多未成熟和異常的白細胞。
桿狀核粒細胞或其他未成熟粒細胞數量增加稱為核左移，常見於膿毒症和某些血液病，但妊娠期及產褥期也會發生生理性核左移p=99；與之相對的，中性粒細胞的分葉過多稱為核右移，常見於巨幼細胞性貧血、惡性貧血等loc=第十二章臨床血液學檢驗第一節外周血分析。淋巴細胞增多（淋巴細胞增多症）與病毒感染p=309和淋巴增殖性疾病（如慢性淋巴細胞白血病）有關p=498；單核細胞增多（單核細胞增多症）則與慢性炎症相關p=243；嗜酸性粒細胞增多（嗜酸性粒細胞增多症）常見於寄生蟲感染和過敏性疾病p=256。嗜鹼性粒細胞增多（嗜鹼性粒細胞增多症）可能提示骨髓增殖性疾病，如慢性粒細胞白血病和真性紅細胞增多症p=44。原始細胞和具有腫瘤特徵的淋巴細胞等異常細胞往往提示血液系統惡性腫瘤p=289。left

**血小板**
原發性血小板增多症的血塗片。圖中小型紫色結構即為血小板。
血小板在凝血過程中發揮著至關重要的作用。當血管內皮受損時，血小板會迅速粘附於損傷部位並堵塞間隙，形成初期的血小板血栓；同時，凝血級聯反應激活產生的纖維蛋白進一步加固血小板血栓，形成穩定的血凝塊pp=358-360。正常人的血小板數相對穩定，並不會發生太大的波動，也無明顯性別和年齡差異p=443。當血小板嚴重減少（血小板減少症）時可導致出血p=1993，常見於接受骨髓抑制治療（如放療、化療）、服用特定藥物（如肝素），這些藥物會誘導免疫系統破壞血小板。血小板減少也是如急性白血病、再生障礙性貧血等血液病和某些自身免疫性疾病p=315。對於重度血小板減少患者，可能需要進行血小板輸血治療2015。血小板增多（血小板增多症）大致可由原發性血小板增多症、反應性血小板增多症和其他伴血小板增多的血液系統疾病三類疾病引起2016。原發性血小板增多症可導致血小板計數顯著升高p=4。反應性血小板增多症多由炎症、缺氧、創傷、缺鐵性貧血、癌症引起p=4p=443。其他伴血小板增多的血液系統疾病包括慢性髓性白血病、慢性粒單核細胞白血病、骨髓增生異常綜合徵等大多數血液病2016。檢測結果中，血小板計數通常以細胞數/微升（/μL）、103細胞數/微升或109細胞數/升為單位2020。
平均血小板體積衡量血小板平均大小，單位為飛昇（fL），可以幫助確認血小板減少症的病因。當血小板破壞增加導致新生血小板補償釋放時，平均血小板體積通常升高；而骨髓功能障礙引起的血小板生成減少則可能導致平均血小板體積降低。此外，平均血小板體積還可用於鑑別遺傳性血小板減少症2019。部分血細胞分析儀可檢測未成熟血小板比例（IPF）和網織血小板計數，通過未成熟血小板數量計算血小板生成速率pp=18=19。left

**其他檢測內容**

**網織紅細胞計數**
用新亞甲藍染色的紅細胞，含有深藍色結構的細胞即為網織紅細胞。
網織紅細胞是介於晚幼紅細胞與成熟紅細胞之間的未成熟紅細胞，細胞質內還殘存著部分RNAp=73，主要用於貧血病因診斷和治療效果評估。在大多數情況下，網織紅細胞與骨髓生成紅細胞正相關p=73。網織紅細胞計數高提示骨髓正以高速率產生紅細胞以補償失血或溶血pp=318-319；而網織紅細胞減少則提示造血功能低下，患者可能患有降低紅細胞生成能力的疾病p=14。在營養性貧血治療中，網織紅細胞計數的升高反映了營養補充治療手段效果良好pp=318-319。血細胞分析儀使用RNA特異性染料染色，再通過光散射或熒光檢測技術進行網織紅細胞計數；人工計數則使用新亞甲藍染色後鏡檢，計算含RNA紅細胞的比例。檢測結果可使用絕對計數p=14，也可採用百分比制pp=318-319。
部分血細胞分析儀可測定網織紅細胞平均血紅蛋白含量（CHr），其可作為鐵缺乏和缺鐵性貧血的新型標誌，是患有干擾標準檢查疾病患者的首選指標p=16。未成熟的紅細胞含有更多的RNA，在檢測時會產生更強的熒光信號，因此未成熟網織紅細胞計數（IRF）可以量化網織紅細胞成熟度。這些信息可用於診斷貧血、評估貧血治療效果和骨髓移植後的紅細胞生成狀況pp=42-43。left

**有核紅細胞**
新生兒血塗片，顯示含有少量有核紅細胞。
紅細胞在骨髓和胎兒期的肝臟、脾臟中形成時含有細胞核，但成熟後細胞核就會被去除pp=8-10。有核紅細胞在新生兒期屬正常現象2000，但在兒童和成人中出現則提示紅細胞需求增加，這種需求增加可能是由出血、惡性腫瘤或嚴重貧血引起的2019。現代血細胞分析儀可以將有核紅細胞納入分類計數。不過大量有核紅細胞可能導致白細胞計數假性升高，需進行校正pp=24-25。

**新型血細胞指標**
先進的血液分析儀可檢測多項新型血細胞指標，這些指標雖在研究中顯示出診斷潛力，但尚未廣泛應用於臨床實踐p=16。例如，部分分析儀可生成反映白細胞簇大小和空間分佈的特徵性座標，該指標被稱為細胞群體數據（cell population data）2019，在研究中被認為是血液病、細菌感染和瘧疾的潛在標誌物。採用髓過氧化物酶染色技術的分析儀可定量白細胞酶表達水平，為多種疾病的診斷提供參考pp=39。另一些儀器除檢測平均紅細胞血紅蛋白濃度外，還可檢測低色素紅細胞比例和裂紅細胞計數p=16，這有助於診斷某些類型的溶血性貧血p=90。

**參考值範圍**
全血細胞計數的參考值範圍是基於95%健康參考個體的檢測結果確定的分佈區間p=10，根據正態分佈原理，該參考值範圍還因性別和年齡差異而發生變化pp=211-213。換言之，約5%的健康個體檢測結果會不在該參考值範圍，但這種異常反映的可能只是生理性差異而非病理改變p=213。當檢測結果僅輕微偏離參考值範圍、與既往結果一致，或其他檢測指標均正常時，這種可能性尤為顯著p=245。在相對健康人群中檢測時，無臨床意義的異常結果數量往往多於真正提示疾病的異常結果數量pp=96-97。基於此，美國、英國和加拿大的專業組織均建議，對於無相關疾病史的低風險手術患者，術前常規全血細胞計數檢測並非必要pp=96-972016。相反，住院患者頻繁採血進行血液學檢測反而可能導致醫源性貧血，並引發不必要的輸血治療pp=96-97。
成年女性的血紅蛋白濃度、血細胞比容和紅細胞計數普遍低於成年男性，這種差異在絕經後有所減小但仍存在pp=211-213。兒童與新生兒的全血細胞計數結果與成人存在顯著差異。新生兒的血紅蛋白、血細胞比容和紅細胞計數極高，這是對宮內低氧環境的適應性結果，也與胎兒體內胎兒血紅蛋白（其攜氧效率低於成人血紅蛋白）比例較高有關p=143。此外，新生兒平均紅細胞體積與白細胞總數都較高且以中性粒細胞為主p=143。出生後，紅細胞計數和相關指標逐漸下降，約2月大時達最低值，隨後緩慢回升p=103。較大的嬰兒與兒童的紅細胞體積較成人小，平均紅細胞血紅蛋白含量較低；在白細胞分類計數中，淋巴細胞通常超過中性粒細胞，而在成人中，中性粒細胞占主導地位p=143。
地理、人種、生活習慣等差異也會影響參考值範圍。如，高海拔地區居民的血紅蛋白、血細胞比容和紅細胞計數普遍較高；非洲裔人群的平均白細胞計數相對較低p=214；四川、重慶地區大於12歲兒童的血小板計數低於其他地區2021；另外分析儀類型也會影響到檢測結果。因此實驗室需根據本地人群特徵和設備類型建立自己的參考區間pp=8-10；在使用國家、地區或者組織統一發布的參考值範圍時，實驗室首先需要進行參考值範圍評估和驗證，如果未通過驗證且排除檢測質量問題，應當建立或者引用合適的參考區間2013。

**侷限性**
某些病理狀態或樣本質量問題可能導致檢測結果出現偏差。若樣本出現明顯凝血（多因採血操作不當所致），則不宜進行檢測，因為此時血小板計數會出現假性降低，其他參數也可能異常p=195。此外，樣本在室溫下放置過久會造成紅細胞從血漿中吸收水分而膨脹，可能導致平均紅細胞體積假性升高p=194。
發生紅細胞凝集的樣本，血塗片上可見紅細胞團塊。
從血漿中膽紅素或脂質水平非常高個體抽取的血液樣本（分別稱為黃疸樣本、脂血樣本）p=91可能出現血紅蛋白假性升高，因為這些物質改變了樣本的顏色與透光度pp=86-87。採用生理鹽水置換血漿可減輕此類干擾p=226。
部分個體會對EDTA抗凝劑產生抗體，導致血小板聚集。血細胞分析儀可能將血小板團塊誤認為單個血小板，導致血小板計數假性降低。使用替代抗凝劑（如檸檬酸鈉或肝素）可避免此現象pp=196-197。
另一種可能干擾檢測結果的抗體介導疾病是紅細胞凝集，即紅細胞表面抗體導致細胞聚集p=109。分析儀將凝集紅細胞計為單個細胞，導致紅細胞計數和血細胞比容假性降低，同時平均紅細胞體積和平均紅細胞血紅蛋白濃度假性升高pp=32-33。通常，這些抗體僅在室溫下具有活性（此種情況被稱為4=冷凝集素），並且可以通過將樣本加熱到37°C來逆轉凝集。但溫抗體型自身免疫性溶血性貧血患者也可能會發生紅細胞凝集，並且在加熱後仍持續存在p=88。
對於人工分類計數，它雖然可識別原始細胞、淋巴瘤細胞等異常細胞，但難以確定其造血譜系，而這些信息對於診斷惡性血液腫瘤具有重要價值。此時需藉助流式細胞術等其他技術進行免疫表型分析，通過檢測細胞表面標誌物提供診斷信息p=9。

**歷史**
2020。
在自動細胞計數技術問世前，全血細胞計數都是人工進行的，檢驗人員需在顯微鏡下逐個計數白細胞、紅細胞和血小板pp=1-4。歷史上，列文虎克首先發表了血細胞顯微鏡觀察結果p=1，他於1674年致信皇家學會報告報告了紅細胞的發現p=10。雖然揚·斯瓦默丹更早觀察到紅細胞，但並未公開發表。18至19世紀，隨著消色差透鏡等顯微鏡技術的革新，檢驗人員已能在未染色樣本中準確計數白細胞和血小板pp=3-4。
在顯微鏡技術的幫助下，生理學家卡爾·維爾羅德進行了首次血細胞計數20152011，其計數方法於1852年發表。具體方法是將精確測量的血液吸入毛細管中，再將其塗抹在塗有蛋清的顯微鏡載玻片上。待血液乾燥後，逐個計數載玻片上的細胞，這一過程需要約三個多小時才能完成p=167。1874年，路易-夏爾·馬拉色發明了血細胞計數器，該血細胞計數器由一個帶有扁平毛細管的顯微鏡載玻片組成。稀釋的血液通過連接在一端的橡膠管進入毛細管管腔，再將刻有縮放網格的目鏡安裝到顯微鏡，使顯微鏡操作者能夠直接計數每體積血液中的細胞數量，這一儀器大大簡化了血細胞的顯微鏡計數過程p=4。1877年，4=威廉·高爾斯發明了一種帶有內置計數網格的血細胞計數器，使得無需再為每臺顯微鏡配置經過專門校準的目鏡pp=168-171。
4=德米特里·列昂尼多維奇·羅曼諾夫斯基發明了羅曼諾夫斯基染色法
19世紀70年代，保羅·埃爾利希開發了一種將酸性和鹼性染料組合使用的染色技術，使得能夠區分不同類型的白細胞，並可檢查紅細胞形態pp=3-4。90年代，4=德米特里·列昂尼多維奇·羅曼諾夫斯基改良了這一技術，他將伊紅和亞甲藍按照一定比例混合起來，發明了羅氏染劑，該染劑在組織染色時可以產生單一染劑無法呈現的豐富色調，該技術至今仍被用於人工複查血液塗片的染色2017。
到19世紀末，首個血紅蛋白測定技術問世，其原理是通過比色法將稀釋血液與已知血紅蛋白濃度的顏色進行目視比對2011。然而，由於血紅蛋白在血液中存在多種形態，無法在單一波長下準確測定，因此分光光度法和比色法自動化檢測進程大大受阻。直至1920年，將不同形式的血紅蛋白轉化為穩定的氰化高鐵血紅蛋白的技術誕生，這才實現了血紅蛋白水平的自動測定。至今，氰化高鐵血紅蛋白法仍是血紅蛋白測定的主要方法，廣泛應用於各類自動化血液分析儀中p=134。
而血細胞比容測試方法的發現則要歸功於4=麥克斯韋·溫特羅布。1929年，他在杜蘭大學攻讀博士學位期間，為確定紅細胞參數的正常參考範圍，發明了溫特羅布血細胞比容測定法。雖然血細胞比容測量方法此前已有文獻記載，但溫特羅布的創新之處在於發明了一種可大規模生產的帶有內置刻度並且檢測結果準確的專用試管。離心樣本後測量該試管中紅細胞比例即可確定血細胞比容值。這種可重複性強的測定方法使溫特羅布得以建立紅細胞指數的標準定義2011。
A型庫爾特計數器
至20世紀初，自動化細胞計數技術的研究拉開序幕p=5。1928年，一種基於光度法的紅細胞計數方法問世，該方法通過測量稀釋血液樣本的透光量來估算紅細胞數量，但對異常紅細胞樣本的識別準確性欠佳2015。在20世紀30至40年代期間，研究人員還嘗試將光電探測器與顯微鏡結合起來，在光電探測器掃描時計數細胞，但也未取得成功p=5。20世紀40年代末，受廣島與長崎原子彈爆炸後對精確紅細胞計數方法的迫切需求推動2013，華萊士·H·庫爾特開始著手改進光電細胞計數技術。在芝加哥的一個地下室實驗室中，他與自己的兄弟約瑟夫·R·庫爾特（Joseph R. Coulter）一同展開研究2003。最初他們嘗試使用光電方法，但結果不盡如人意。1948年，華萊士在閱讀了一篇關於血液電導率與紅細胞濃度關係的論文後，提出了庫爾特原理：懸浮在導電介質中的細胞通過孔徑時，會產生與其體積成正比的電流變化2013。當年10月，華萊士成功製造出基於該原理的計數器演示原型。由於經濟拮据，計數器中的孔徑是在香菸包裝上的玻璃紙上燒一個洞來製成的2003。1949年，華萊士為該技術申請專利，兩年後向海軍研究辦公室申請研發資金2013。1953年，華萊士的專利獲批後，兄弟倆改進了孔徑設計，引入水銀壓力計以精確控制樣本量，隨後於1958年創立庫爾特電子公司（Coulter Electronics Inc.），開始商業化生產。庫爾特計數器最初只是設計用於紅細胞計數，但經後續改良後也能用於白細胞計數2003。這一革命性儀器迅速被醫學實驗室廣泛採用p=5。
儘管主要細胞的計數已實現自動化，但白細胞分類計數仍面臨挑戰。20世紀70年代，研究人員主要探索了兩種自動化分類計數途徑：數字圖像處理與流式細胞術。基於20世紀50-60年代開發的巴氏塗片自動讀取技術，數種圖像處理分析儀相繼問世pp=12-15。這些儀器通過掃描染色血塗片定位細胞核，隨後拍攝高分辨率細胞圖像進行光密度分析1981。然而，由於設備昂貴、處理速度慢，且仍需人工製備和染色血塗片，對減輕實驗室工作負荷作用有限，因此流式細胞術系統逐漸成為主流2015。至1990年，美國和西歐市場已無商業化數字圖像分析儀銷售1990。直到21世紀初，採用人工神經網絡的先進圖像分析平臺出現，該技術才重新獲得關注2019p=193。
而早期流式細胞術設備以特定波長光束照射細胞，測量其產生的吸光度、熒光或光散射信號，從而獲取細胞特徵信息並能夠量化DNA等細胞內容物pp=5-6。1965年，路易斯·卡門茨基（Louis Kamentsky）開發的快速細胞分光光度計是其中的典型代表，該儀器採用細胞化學染色技術生成血細胞散點圖，能夠用於宮頸細胞學自動檢查。參與開發該儀器染色系統的倫納德·奧恩斯坦（Leonard Ornstein）及其團隊隨後研製出首款商用流式細胞術白細胞分類分析儀Hemalog Dpp=84-85。該儀器於1974年面世p=110，利用光散射、吸光度和細胞染色技術，可識別五種正常白細胞類型與未識別大型細胞（主要包括非典型淋巴細胞和原始細胞）。Hemalog D單次運行可計數10,000個細胞，較人工分類計數有顯著提升p=8。1981年，Technicon公司推出首款兼具全血細胞計數和分類計數功能的分析儀Technicon H6000。儘管該儀器因操作繁瑣而未能在血液學實驗室廣泛普及，但在20世紀80年代末至90年代初，希森美康、雅培、羅氏和貝克曼庫爾特等醫療器械製造商相繼推出了類似血細胞分析儀pp=8-9。

**註釋**

**引用**

**參考資料**

**網頁**
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**期刊**
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**書籍**
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