Categoría: Educación

oratorio de cultivo celular, indicando sistemas de registro.
CE2.6 Identificar las técnicas de etiquetado e inventario de muestras biológicas, valorando la trazabilidad en relación con su manejo.
CE2.7 En un supuesto práctico de gestión de documentación del laboratorio de cultivos celulares, asegurando la trazabilidad de las muestras:
- Registrar información referente a gestión del almacén e inventario, utilizando métodos manuales e informatizados.
- Utilizar aplicaciones informáticas, registrando datos y generando etiquetas para identificar muestras humanas.
- Elaborar documentos, como protocolos de trabajo, informes de resultados, colaborando con la persona responsable.
- Organizar documentación referente a prevención de riesgos laborales, facilitando su consulta por el resto del equipo de trabajo.
- Registrar documentación relativa a la recepción y envío de muestras biológicas a otros centros, utilizando programas informáticos.
C3: Analizar planes de cualificación del laboratorio de cultivos celulares, calibración de equipos e instalaciones y validación de procesos, garantizando su calidad.
CE3.1 Definir los procesos de calibración, cualificación y validación, indicando sus diferencias.
CE3.2 Explicar los conceptos de cualificación de diseño (DQ), instalación (IQ), operacional (OQ) y de proceso (PQ) en relación con la cualificación de los equipos e instalaciones del laboratorio.
CE3.3 Explicar un plan de calibración/cualificación de equipos y de instalaciones, atendiendo a la criticidad, relacionándolos con informes correspondientes.
CE3.4 En un supuesto práctico de planes de cualificación del laboratorio de cultivos celulares, calibración de equipos e instalaciones y validación de procesos, garantizando su calidad:
- Elaborar un plan de cualificación del laboratorio de cultivos celulares, en cuanto a diseño, instalación, operativo y de procesos, en función de la criticidad del laboratorio.
- Preparar, dentro del plan, calibraciones de equipos del laboratorio de cultivos celulares, según las necesidades de cada equipo, manteniéndolos operativos.
- Generar informes de calibraciones y/o cualificación de los equipos e instalaciones generados, archivándose para su consulta.
- Aplicar el plan de validación de los procedimientos de laboratorio, garantizando la calidad del trabajo.
- Preparar protocolos de trabajo, disponiéndolos de manera accesible para su consulta por el resto del equipo.
C4: Analizar la gestión de residuos del laboratorio de cultivos celulares, planificando su separación y retirada.
CE4.1 Identificar los residuos que se generan en un proceso de cultivo celular, diferenciando sus tipos.
CE4.2 Precisar la normativa aplicable a la de gestión de residuos en el laboratorio de cultivos celular, evitando contaminaciones y preservando el medio ambiente.
CE4.3 Reconocer los residuos biológicos, atendiendo a los tipos de organismos manejados en el laboratorio.
CE4.4 Explicar técnicas de descontaminación y procesamiento de residuos biológicos, considerando su naturaleza.
CE4.5 Describir métodos de manejo de residuos sólidos y líquidos, señalando técnicas de lavado o descontaminación, en función de su naturaleza.
CE4.6 Identificar sistemas de almacenamiento de residuos indicando condiciones de seguridad, hasta su posterior eliminación por la entidad responsable.
CE4.7 Delimitar tareas y responsabilidades de las personas encargadas de la gestión de residuos, distinguiendo tipificación, procesamiento, manipulación, separación, almacenamiento.
CE4.8 En un supuesto práctico de gestión de residuos, evitando contaminaciones y preservando el medio ambiente:
- Separar residuos generados durante el proceso de cultivos celulares, diferenciando biológicos, punzantes, radiactivos, contaminantes, patógenos entre otros.
- Procesar residuos biológicos generados, aplicando técnicas de lavado o descontaminación, en función de su naturaleza.
- Almacenar residuos derivados del procesamiento de cultivos celulares, aplicando condiciones de seguridad.
C5: Analizar información en relación con la mejora de la calidad del laboratorio e implantación de nuevas técnicas, participando en actividades y proyectos docentes y de investigación.
CE5.1 Describir la preparación de controles de calidad internos y externos, referentes a la acreditación del laboratorio, según normas de calidad (ISO).
CE5.2 Asociar la revisión de protocolos de trabajo con su actualización e implantación de nuevas técnicas.
CE5.3 Diferenciar ponencias científicas, clínicas, comunicaciones, publicaciones, entre otras, en relación con participación en actividades docentes y de investigación.
CE5.4 En un supuesto práctico de información referente a la mejora de la calidad del laboratorio, participando en actividades de investigación:
- Preparar controles de calidad internos y externos, atendiendo a su desarrollo y cumplimiento.
- Revisar protocolos de trabajo, participando en la implantación de nuevas técnicas.
- Preparar comunicaciones científicas, participando en actividades de investigación.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:
C1 respecto a CE1.8; C2 respecto a CE2.7; C3 respecto a CE3.4; C4 respecto a CE4.8 y C5 respecto a CE5.4.
Otras capacidades:
Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzado previamente.
Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria.
Mantener una actitud asertiva, empática y conciliadora con los demás demostrando cordialidad y amabilidad en el trato.
Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.
Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.
Adoptar códigos de conducta tendentes a transmitir el contenido del principio de igualdad.
Contenidos:
1. Normas y documentación referentes a calidad en laboratorios de cultivos celulares
Objetivo de un sistema de calidad integrado.
Herramientas para su implantación.
Normas de un sistema de calidad estándar.
Sistema de gestión ambiental.
Normas de Buenas Prácticas de Laboratorios (BPL).
Contaminación cruzada. Riesgos y prevención.
Trazabilidad y su importancia en el manejo de muestras biológicas.
Etiquetado de muestras biológicas.
Identificación de muestras almacenadas.
Recepción y envío de productos celulares.
Condiciones para mantener la estabilidad de las muestras.
Normas de Correcta Fabricación (NCF/GMP) para medicamentos obtenidos de productos celulares.
Normas de acceso, vestimenta y de seguridad biológica en un laboratorio de cultivo celular.
Normas de prevención de riesgos en laboratorios en el manejo de material biológico. Manual de Bioseguridad (OMS).
Documentación de calidad.
Tipos de documentos a generar en un laboratorio de cultivo celular.
Elaboración de protocolos, registros e informes.
Cuaderno de laboratorio y recogida de datos primarios.
Trazabilidad de la documentación.
Documentación relativa a la gestión de materiales y almacenamiento (inventario, registro de altas y bajas).
Uso validación y seguridad de programas informáticos.
2. Calibración, cualificación, validación en laboratorios de cultivos celulares. Gestión de residuos
Calibración, cualificación, validación: importancia y diferencias.
Periodicidad de las cualificaciones y calibraciones.
Tipos de validaciones. Periodicidad.
Cualificación de equipos: diseño (DQ), instalación (IQ), operativo (OQ) y de proceso (PQ).
Planes anuales de calibración y cualificación de equipos.
Elaboración de un plan para un laboratorio de cultivo celular.
Residuos y normativa aplicable para su gestión.
Tipos de residuos (biológicos, punzantes, radiactivos, contaminados, entre otros).
Clasificación de residuos biológicos según su patogenicidad.
Manual de Bioseguridad y gestión de residuos.
Descontaminación.
Técnicas de descontaminación biológica.
Almacenamiento de residuos.
Personas encargadas de la gestión de residuos: funciones y responsabilidades.
Parámetros de contexto de la formación:
Espacios e instalaciones:
Los talleres e instalaciones darán respuesta a las necesidades formativas de acuerdo con el contexto profesional establecido en la unidad de competencia asociada, teniendo en cuenta la normativa aplicable del sector productivo, prevención de riesgos laborales, accesibilidad universal y protección medioambiental. Se considerará con carácter orientativo como espacios de uso:
- Taller de 3 m² por alumno o alumna.
- Instalación de 2 m² por alumno o alumna.
Perfil profesional del formador o formadora:
1. Dominio de los conocimientos y las técnicas relacionados con la gestión del laboratorio de cultivos celulares, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:
- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otras de superior nivel relacionadas con el campo profesional.
- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con este módulo formativo.
2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.
MÓDULO FORMATIVO 3: OBTENCIÓN, MANTENIMIENTO, EXPANSIÓN Y PRESERVACIÓN DE CULTIVOS CELULARES
Nivel: 3
Código: MF2512_3
Asociado a la UC: Obtener, mantener, expandir y preservar cultivos celulares
Duración: 60 horas
Capacidades y criterios de evaluación:
C1: Analizar tipos, estructuras, ciclos y líneas celulares, en relación con sus características biológicas.
CE1.1 Describir tipos de células, estructuras celulares y subcelulares, indicando sus funciones.
CE1.2 Identificar tipos de microscopios utilizados en el laboratorio de cultivos celulares, indicando sus partes y funcionamiento.
CE1.3 Explicar técnicas de tinción aplicadas a cultivos celulares, detallando sus indicaciones y distinguiendo los colorantes empleados.
CE1.4 Definir genética celular, detallando la estructura y función de los cromosomas, ciclo celular y su importancia en relación con los cultivos celulares.
CE1.5 Definir cultivos celulares, indicando su evolución histórica, métodos de obtención, aplicaciones y líneas celulares empleadas.
CE1.6 Explicar las etapas del ciclo celular, asociándolas a la caracterización de diferentes tipos de células.
CE1.7 Explicar técnicas que garanticen la asepsia de los cultivos celulares, considerando materiales, personal, instalaciones, entre otros.
CE1.8 En un supuesto práctico, de identificación de células y líneas celulares, atendiendo a sus características biológicas:
- Aplicar colorantes vitales, identificando células eucariotas y procariotas.
- Detectar etapas del ciclo celular diferenciado interfases de mitosis.
- Caracterizar células primarias y líneas celulares, atendiendo a la tasa de interfases y mitosis.
C2: Aplicar técnicas de aislamiento y selección celular, asegurando la viabilidad y asepsia del proceso.
CE2.1 Diferenciar tipos de técnicas para aislamiento, selección y purificación celular, evitando contaminaciones.
CE2.2 Identificar técnicas mecánicas para aislamiento de células a partir de tejidos, fluidos y material biológico, detallando los materiales utilizados.
CE2.3 Describir técnicas enzimáticas para aislamiento de células a partir de tejidos, fluidos y material biológico, separándolas de restos tisulares.
CE2.4 Reconocer la técnica de explante para el aislamiento de células a partir de tejidos u órganos, seleccionando medios de cultivo.
CE2.5 Explicar el procedimiento de adherencia al plástico, vidrio o soporte de cultivo para selección de células y poblaciones celulares, detallando los materiales utilizados y evitando contaminaciones.
CE2.6 Describir métodos de inmunoselección celular, empleando anticuerpos específicos frente a los antígenos celulares.
CE2.7 Reconocer sistemas de registro de datos, estimando la importancia de la trazabilidad del proceso y la privacidad en el caso de muestras humanas.
CE2.8 Identificar los residuos generados durante el proceso de aislamiento, selección y purificación de células, indicando sistemas de separación para su posterior gestión.
CE2.9 En un supuesto práctico de aislamiento, y selección y purificación celular, aplicando medidas de higiene y seguridad biológica:
- Aislar células a partir de tejidos, fluidos y material biológico, aplicando técnicas de disgregación mecánica, centrifugación y filtración.
- Seleccionar células y poblaciones celulares por el procedimiento de adherencia al plástico, vidrio o soporte de cultivo, considerando diferentes tipos de frascos.
- Purificar células, aplicando métodos de lavado con medio de cultivo, mecanismos enzimáticos de adherencia, antibióticos, perlas magnéticas, entre otros.
C3: Aplicar técnicas para el cultivo de células primarias y de líneas celulares inmortalizadas, asegurando la viabilidad de las células y la asepsia.
CE3.1 Describir materiales y reactivos para el cultivo de células primarias y líneas celulares inmortalizadas, atendiendo al tipo celular, línea celular y densidad de la siembra, indicando pautas para su preparación.
CE3.2 Explicar la técnica de cultivo de células aisladas de material biológico o primarias y líneas celulares inmortalizadas, considerando condiciones físicas de cultivos celulares y tisulares.
CE3.3 Describir la morfología normal de un cultivo celular, indicando métodos para su mantenimiento y control.
CE3.4 Explicar métodos de subcultivo de células o pases, en función de la confluencia, levantamiento y recolección de células, indicando mecanismos de control.
CE3.5 Establecer pautas para mantener las condiciones asépticas de los cultivos, resaltando la importancia de materiales y reactivos estériles, incubadores, campanas de flujo laminar, entre otros, limpios y esterilizados.
CE3.6 Explicar procedimientos de separación de residuos generados durante un cultivo celular en contenedores específicos, disponiéndolos para su gestión por la entidad responsable.
CE3.7 Establecer sistemas para registro de datos de contaje, datos de morfología celular, entre otros, estimando su importancia para monitorización de los cultivos y nuevas siembras.
CE3.8 Identificar los residuos generados durante el proceso de cultivo de células primarias y de líneas celulares inmortalizadas, indicando sistemas de separación para su posterior gestión.
CE3.9 En un supuesto práctico de cultivo de células primarias y de líneas celulares inmortalizadas, asegurando la viabilidad de las células y la asepsia:
- Preparar medios de cultivo, reactivos (enzimas, tampones, entre otros), aditivos, frascos de cultivo de uso, entre otros materiales, considerando tipo celular, línea celular y densidad de la siembra.
- Cultivar células primarias y líneas celulares inmortalizadas, considerando condiciones físicas específicas.
- Cambiar medios de cultivo, controlando la integridad celula,r utilizando el microscopio.
- Realizar un pase, considerando la confluencia, levantamiento y recolección de células de un frasco de cultivo, controlando el número y viabilidad de las células pasadas mediante un recuento.
C4: Aplicar técnicas de criopreservación y descongelación de células, asegurando su viabilidad y trazabilidad.
CE4.1 Diferenciar criopreservantes celulares, indicando sus ventajas e inconvenientes.
CE4.2 Explicar los procesos de criopreservación y descongelación de células, indicando pautas para su mantenimiento en condiciones asépticas.
CE4.3 Determinar sistemas de etiquetado, almacenamiento y registro de datos, asegurando la trazabilidad y búsqueda rápida de las muestras.
CE4.4 Determinar condiciones de almacenamiento de células criopreservadas, indicando sistemas para su control.
CE4.5 Describir técnicas para análisis de viabilidad y recuperabilidad celular (capacidad proliferativa), utilizando el microscopio.
CE4.6 Identificar residuos generados durante procesos de criopreservación y descongelación, indicando sistemas de separación para su posterior gestión.
CE4.7 En un supuesto práctico de selección de técnicas de criopreservación y descongelación de células, garantizando su viabilidad y trazabilidad:
- Criopreservar células, seleccionando previamente los criopreservantes y considerando su tipo.
- Almacenar las células criopreservadas, etiquetándolas previamente, controlando las condiciones de la unidad y criogenia.
- Registrar los datos, asegurando la trazabilidad y búsqueda rápida de las muestras.
- Observar al microscopio las células descongeladas, analizando su viabilidad y recuperabilidad.
C5: Aplicar técnicas de envasado de células, asegurando su trazabilidad, viabilidad y asepsia.
CE5.1 Describir métodos de envasado, considerando la utilización de los productos celulares y medidas de higiene y seguridad biológica.
CE5.2 Identificar materiales de acondicionamiento para el envasado de productos celulares, indicando los requisitos específicos para asegurar su viabilidad.
CE5.3 Establecer medidas para el envasado de suspensiones celulares en condiciones asépticas, atendiendo a la criopreservación.
CE5.4 Describir métodos de etiquetado de productos celulares que garanticen su identificación y trazabilidad, considerando la protección de datos en el caso de productos humanos.
CE5.5 Explicar sistemas de registro de datos que aseguren la trazabilidad del proceso, aplicando procedimientos manuales o informatizados.
CE5.6 En un supuesto práctico de envasado de células, asegurando su trazabilidad, viabilidad y asepsia:
- Seleccionar materiales de acondicionamiento para el envasado, en función de ausencia de endotoxinas, esterilidad, apirogenicidad, calidad, entre otros.
- Envasar productos celulares, considerando su utilización y tipología.
- Etiquetar productos celulares, indicando código, número de lote, fecha, caducidad, entre otros.
- Registrar los datos aplicando procedimientos manuales o informatizados.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:
C1 respecto a CE1.8; C2 respecto a CE2.9; C3 respecto a CE3.9; C4 respecto a CE4.7 y C5 respecto a CE5.6.
Otras capacidades:
Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzado previamente.
Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria.
Mantener una actitud asertiva, empática y conciliadora con los demás demostrando cordialidad y amabilidad en el trato.
Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.
Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.
Adoptar códigos de conducta tendentes a transmitir el contenido del principio de igualdad.
Contenidos:
1. Tipos celulares
Tipos de células: eucariotas y procariotas.
Estructura celular: componentes celulares y sus funciones.
Ciclo celular.
Fases del ciclo celular: interfase y mitosis.
Genética celular.
Soportes de cultivo: tipos de frascos de cultivo.
Cultivos celulares: historia.
Aplicaciones.
Líneas celulares.
Células primarias.
Asepsia.
Factores a tener en cuenta en la manipulación aséptica: materiales, personal, instalaciones, entre otros.
Importancia de la manipulación aséptica en cultivos celulares.
Identificación de los distintos tipos celulares.
2. Técnicas de aislamiento, cultivo y criopreservación celular
Técnicas de aislamiento y purificación celular.
Tipos de aislamiento celular a partir de un material biológico.
Método de explantes y disgregación mecánica.
Método de digestión enzimática. Enzimas utilizadas comúnmente.
Selección de poblaciones celulares: adherencia al plástico, separación celular, e inmunoselección.
Técnicas de cultivo celular.
Condiciones ambientales habituales en un cultivo celular (temperatura, humedad y dióxido de carbono y otros gases).
Cultivo en hipoxia y normoxia.
Tipos de medios de cultivo y reactivos para el cultivo celular.
Enzimas, tampones, y otros.
Frascos de cultivo usados habitualmente en cultivo celular.
Densidad de siembra.
Morfología de los distintos tipos celulares.
Cambio de medio: frecuencia en función de la línea celular.
Cambio de medio total o parcial.
Confluencia.
Subcultivo o pase: levantamiento y recolección de células de un frasco de cultivo.
Contaje.
Nueva siembra para expansión.
Registro de datos para la monitorización de los cultivos.
Técnicas de criopreservación y descongelación de células.
Criopreservación.
Criopreservantes utilizados.
Condiciones de la criopreservación y descongelación de células.
Viabilidad y recuperabilidad celular.
Condiciones de almacenamiento de células criopreservadas.
Registro de células criopreservadas e importancia de su trazabilidad.
3. Envasado de productos celulares
Técnicas de envasado de productos celulares.
Uso de los productos celulares.
Tipos de envasado en función del uso de los productos.
Materiales de acondicionamiento.
Requisitos de los materiales de acondicionamiento (ausencia de endotoxinas, esterilidad, apirogenicidad, calidad del material, entre otros).
Etiquetado y trazabilidad de los productos celulares (código, número de lote, fecha, caducidad, entre otros).
Documentación necesaria para la liberación de lotes envasados.
Parámetros de contexto de la formación:
Espacios e instalaciones:
Los talleres e instalaciones darán respuesta a las necesidades formativas de acuerdo con el contexto profesional establecido en la unidad de competencia asociada, teniendo en cuenta la normativa aplicable del sector productivo, prevención de riesgos laborales, accesibilidad universal y protección medioambiental. Se considerará con carácter orientativo como espacios de uso:
- Taller de 3 m² por alumno o alumna.
- Instalación de 2 m² por alumno o alumna.
Perfil profesional del formador o formadora:
1. Dominio de los conocimientos y las técnicas relacionados con la obtención de cultivos celulares, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:
- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otras de superior nivel relacionadas con el campo profesional.
- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con este módulo formativo.
2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.
MÓDULO FORMATIVO 4: APLICACIONES DE CULTIVOS CELULARES
Nivel: 3
Código: MF2513_3
Asociado a la UC: Aplicar técnicas en cultivos celulares especializados
Duración: 60 horas
Capacidades y criterios de evaluación:
C1: Analizar técnicas de cultivo de células madre, asociándolas a aplicaciones de la medicina regenerativa.
CE1.1 Identificar hitos históricos relativos a la terapia celular y la medicina regenerativa, indicando sus características.
CE1.2 Describir tipos de células madre, enumerando sus aplicaciones.
CE1.3 Explicar técnicas de extracción y cultivo de células madre, precisando los materiales utilizados.
CE1.4 En un supuesto práctico de cultivo de células madre, controlando la viabilidad celular y la asepsia del proceso:
- Obtener células madre, aplicando procedimientos dependientes del tejido o material biológico de origen de las células.
- Cultivar células madre, considerando su origen, tipología, potencialidad y objetivo del cultivo.
- Procesar un cultivo de células madre, preparándolo para estudio «in vitro» de maduración celular dirigido a terapias celulares.
C2: Analizar técnicas de cultivos celulares, aplicándolas al cribado de fármacos y otros xenobióticos.
CE2.1 Definir dianas terapéuticas, precisando sus características, asociándolas al cribado de fármacos.
CE2.2 Enumerar aplicaciones de los cultivos celulares, indicado su utilización como dianas terapéuticas para el cribado de fármacos e identificando sus ventajas y limitaciones.
CE2.3 Describir materiales y técnicas de cultivo de distintos tipos de células, relacionándolas con su utilización como dianas terapéuticas.
CE2.4 Explicar ensayos de actividad de diferentes fármacos, utilizando cultivos celulares.
CE2.5 Describir procedimientos experimentales de citotoxicidad, utilizando cultivos celulares primarios y tumorales.
CE2.6 En un supuesto práctico de utilización de cultivos celulares para el cribado de fármacos, controlando la viabilidad celular y la asepsia del cultivo.
- Cultivar células como dianas terapéuticas, considerando su tipología.
- Ensayar la actividad anti-inflamatoria de un fármaco, mediante observación por microscopía óptica, estudio microbiológico, inmunológico y bioquímico del cultivo.
- Analizar la resistencia frente a antibióticos, aplicando técnicas de microscopía y de biología molecular.
C3: Aplicar procedimientos para la creación y mantenimiento de biobancos, garantizando su operatividad.
CE3.1 Identificar tipos de biobancos, estableciendo las particularidades de los bancos de células.
CE3.2 Reconocer normativa y recomendaciones en función del ámbito territorial, atendiendo a la creación y mantenimiento de biobancos.
CE3.3 Describir distintos modelos de documentos de consentimiento informado, considerando el uso y almacenamiento de muestras humanas.
CE3.4 Establecer medidas de seguridad para la protección de datos, utilizando la codificación y garantizando el anonimato.
CE3.5 En un supuesto práctico de mantenimiento de biobancos, garantizando su operatividad:
- Preparar modelos de documentos de consentimiento informado, asociándolos al uso y almacenamiento de muestras humanas.
- Elaborar las rutinas de entrada y salida de muestras del biobanco.
- Registrar muestras en el biobanco, utilizando el soporte y formato según aplicación informática disponible.
C4: Analizar técnicas de cultivo celular, utilizando matrices tridimensionales.
CE4.1 Definir cultivos celulares tridimensionales, indicando sus aplicaciones.
CE4.2 Describir el desarrollo de los cultivos celulares tridimensionales, relacionándolos con la ingeniería de tejidos.
CE4.3 Describir matrices de soporte utilizadas en los cultivos celulares tridimensionales, indicando sus características.
CE4.4 En un supuesto práctico de cultivos celulares, utilizando matrices tridimensionales:
- Seleccionar matrices, considerando soportes histotípicos y organotípicos.
- Realizar cultivos celulares en matrices tridimensionales, utilizando soportes histotípicos.
- Realizar cultivos celulares en matrices tridimensionales, utilizando soportes organotípicos.
- Visualizar las células contenidas en las matrices, obteniendo imágenes en tres dimensiones.
C5: Aplicar técnicas de producción de biomoléculas, asegurando la calidad de los productos generados.
CE5.1 Identificar clases de biomoléculas que se pueden producir, utilizando cultivos celulares.
CE5.2 Describir células que se utilizan en la producción industrial de biomoléculas, estableciendo diferencias.
CE5.3 Describir reactores empleados en la producción de biomoléculas, indicando las características de los diferentes tipos.
CE5.4 Identificar medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas, precisando métodos para su preparación.
CE5.5 Explicar técnicas de producción de anticuerpos monoclonales a partir de cultivo de hibridomas, precisando métodos para su purificación y cuantificación.
CE5.6 En un supuesto práctico de producción de biomoléculas, asegurando la calidad de los productos generados:
- Cultivar tipos de células, preparando los medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas.
- Producir anticuerpos monoclonales, aplicando la técnica de cultivo de hibridomas.
- Purificar los anticuerpos monoclonales producidos, procediendo a su cuantificación.
C6: Analizar técnicas de diagnóstico de diferentes patologías, considerando las aplicaciones de los cultivos celulares.
CE6.1 Identificar técnicas citogenéticas para diagnóstico de diferentes patologías, utilizando cultivos celulares.
CE6.2 Reconocer técnicas de inmunohistoquímica para diagnóstico de patologías, utilizando cultivos celulares.
CE6.3 Explicar el análisis de expresión de proteínas, aplicando técnicas de immunoblotting en cultivos celulares.
CE6.4 Describir el análisis de expresión de proteínas, aplicando técnicas de inmunoprecipitación en cultivos celulares
CE6.5 Explicar el análisis de expresión de proteínas mediante técnicas de inmunoensayos en cultivos celulares.
CE6.6 En un supuesto práctico de diagnóstico de patologías, utilizando cultivos celulares:
- Aplicar técnicas citogenéticas, realizando un cariotipo de células en cultivo.
- Aplicar técnicas de inmunoblotting, analizando la expresión de proteínas.
- Aplicar técnicas de inmunoprecipitación, analizando la expresión de proteínas.
- Aplicar técnicas de inmunoensayos, analizando la expresión de proteínas.
C7: Aplicar técnicas de fecundación in vitro, utilizando células de procedencia animal.
CE7.1 Definir fecundación in vitro, enumerando sus aplicaciones.
CE7.2 Describir técnicas de conservación de óvulos y espermatozoides de animales, indicando los materiales requeridos.
CE7.3 Explicar procedimientos para fecundación in vitro, cultivo y conservación de embriones, precisando los medios necesarios.
CE7.4 En un supuesto práctico de técnicas de fecundación in vitro:
- Conservar óvulos y espermatozoides, utilizando células de procedencia animal.
- Realizar fecundación in vitro, cultivando posteriormente los embriones animales.
- Aplicar técnicas de conservación de embriones, partiendo ce células de origen animal.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:
C1 respecto a CE1.4; C2 respecto a CE2.6; C3 respecto a CE3.5; C4 respecto a CE4.4; C5 respecto a CE5.6; C6 respecto a CE6.6 y C7 respecto a CE7.4.
Otras capacidades:
Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzado previamente.
Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria.
Mantener una actitud asertiva, empática y conciliadora con los demás demostrando cordialidad y amabilidad en el trato.
Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.
Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.
Adoptar códigos de conducta tendentes a transmitir el contenido del principio de igualdad.
Contenidos:
1. Utilización de cultivos celulares en relación con células madre, cribado de fármacos, bancos celulares y matrices tridimensionales
Medicina regenerativa.
Hitos históricos de la terapia celular y la medicina regenerativa.
Tipos de células madre.
Células madre embrionarias.
Células madre de sangre de cordón umbilical.
Células madre adultas.
Células madre adultas modificadas.
Aplicaciones de las células madre.
Procedimientos de extracción y cultivo de células madre.
Aplicaciones de los cultivos celulares como dianas terapéuticas para el cribado de fármacos.
Metodología para caracterización de dianas terapéuticas.
Ventajas y limitaciones de los cultivos celulares para el cribado de fármacos.
Cultivo de células como dianas terapéuticas.
Ensayos de citotoxicidad mediante cultivos celulares primarios y tumorales.
Ensayos de actividad anti-inflamatoria utilizando cultivos celulares.
Procedimientos para la creación y mantenimiento de bancos celulares.
Tipos de biobancos.
Normativa aplicable y recomendaciones en función del ámbito territorial referentes a creación y mantenimiento de biobancos.
Documentos de consentimiento informado para uso y almacenamiento de muestras humanas.
Medidas de seguridad para la protección de datos mediante la codificación y el anonimato.
Procedimientos de registro de muestras.
Rutinas de entrada y salida de muestras del biobanco.
Aplicaciones de las técnicas de cultivo en matrices tridimensionales.
Cultivos tridimensionales e ingeniería de tejidos.
Aplicaciones de los cultivos tridimensionales.
Matrices de soporte utilizadas en los cultivos tridimensionales.
Cultivos histotípicos: reagregados celulares, esponjas, esferoides, cultivos de alta densidad sobre pocillo filtro, perfusión y sobrecrecimiento de monocapa en frasco o en disco, reagregación en suspensión sobre agar o en gravedad cero real o simulada, infiltración de una matriz tridimensión como gel de colágeno.
Cultivos organotípicos: técnica de vidrio de reloj, Maximow, flotación, sobre rejilla.
Imágenes de células en tres dimensiones.
2. Utilización de cultivos celulares en relación con la producción de biomoléculas, técnicas de diagnóstico y fecundación in vitro
Aplicaciones de las técnicas de producción de biomoléculas.
Biomoléculas que se pueden producir mediante cultivos celulares.
Tipos de células utilizadas en la producción industrial de biomoléculas: CHO, NS0, Sp2/O, PERC6, hibridoma.
Reactores utilizados en la producción de biomoléculas: tipos.
Medios de cultivo específicos para la producción de biomoléculas.
Anticuerpos monoclonales generados mediante el cultivo de hibridomas.
Purificación y cuantificación de anticuerpos.
Aplicaciones de las técnicas de diagnóstico mediante el uso de cultivos celulares.
Tecnologías citogenéticas: aberraciones cromosómicas, obtención de cariotipos, técnicas de bandeo cromosómico, test de micronúcleos, intercambios entre cromátidas hermanas.
Cariotipo de células en cultivo: AA8.
Técnicas de inmunohistoquímica: inmunofluorescencia, hibridación in situ con fluorescencia, pintado cromosómico, técnicas citogenéticas, M-FISH, hibridación genómica comparativa.
Análisis de expresión de proteínas mediante técnicas de inmunoblotting, inmunoprecipitación e inmunoensayo.
Aplicaciones de las técnicas de fecundación «in vitro».
Conservación de óvulos y espermatozoides.
Cultivo de embriones.
Conservación de embriones.
Procedimientos de fecundación «in vitro».
Parámetros de contexto de la formación:
Espacios e instalaciones:
Los talleres e instalaciones darán respuesta a las necesidades formativas de acuerdo con el contexto profesional establecido en la unidad de competencia asociada, teniendo en cuenta la normativa aplicable del sector productivo, prevención de riesgos laborales, accesibilidad universal y protección medioambiental. Se considerará con carácter orientativo como espacios de uso:
- Taller de 3 m² por alumno o alumna.
- Instalación de 2 m² por alumno o alumna.
Perfil profesional del formador o formadora:
1. Dominio de los conocimientos y las técnicas relacionados con la aplicación de técnicas en cultivos celulares, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:
- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otras de superior nivel relacionadas con el campo profesional.
- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con este módulo formativo.
2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.
MÓDULO FORMATIVO 5: APLICACIÓN DE TÉCNICAS COMPLEMENTARIAS EN CULTIVOS CELULARES
Nivel: 3
Código: MF2514_3
Asociado a la UC: Aplicar técnicas complementarias en cultivos celulares
Duración: 60 horas
Capacidades y criterios de evaluación:
C1: Aplicar técnicas de contaje celular en cultivos celulares, determinando la viabilidad, apoptosis y senescencia celular.
CE1.1 Definir viabilidad, apoptosis y senescencia, asociándolos a técnicas complementarias en cultivos celulares.
CE1.2 Enumerar colorantes y moléculas fluorescentes utilizados en cultivos celulares, considerando sus ventajas e inconvenientes.
CE1.3 Describir técnicas de contaje de células, manuales y automáticos, en relación con cultivos celulares, precisando materiales y colorantes.
CE1.4 Explicar procedimientos para estudio de la senescencia en cultivos celulares, indicando materiales, colorantes, substratos colorimétricos y fluorescentes.
CE1.5 Describir métodos de determinación de la citotoxicidad/proliferación, considerando ensayos MTT y similares (XTT, resazurina).
CE1.6 Explicar la técnica de TUNEL, asociándola a la identificación de apoptosis en un cultivo celular.
CE1.7 En un supuesto práctico de contaje, determinación de senescencia y de apoptosis celular:
- Realizar la tinción de senescencia en cultivos celulares mediante la tinción de galactosidasa.
- Aplicar la técnica de TUNEL, identificando apoptosis en un cultivo celular.
- Contar células, empleando la cámara de Neubauer y azul tripano como colorante vital.
C2: Aplicar técnicas de extracción de ácidos nucleicos en cultivos celulares, utilizando sistemas automáticos y manuales.
CE2.1 Identificar técnicas de extracción de ácidos nucleicos en cultivos celulares, indicando sus aplicaciones.
CE2.2 Describir técnicas de identificación de la apoptosis en un cultivo celular, realizando electroforesis de ADN en gel de agarosa.
CE2.3 Explicar procedimientos de purificación y cuantificación de ácidos nucleicos, detallando la purificación de ARN mensajero a partir de ARN total.
CE2.4 En un supuesto práctico de extracción de ácidos nucleicos en cultivos celulares, utilizando sistemas automáticos y manuales:
- Extraer ADN y ARN, aplicando distintas técnicas.
- Purificar ácidos nucleicos obtenidos, empleando columnas.
- Almacenar ADN y/o ARN en viales específicos, según su registro y, en el caso de ARN, utilizando el reactivo requerido.
C3: Analizar técnicas de citometría de flujo, reconociendo sus posibles aplicaciones.
CE3.1 Definir los procesos de citometría de flujo y separación celular (Fluorescent Activated Cell Sorter) (FACS), enumerando sus aplicaciones.
CE3.2 Describir componentes de un citómetro, indicando su funcionamiento.
CE3.3 Explicar la técnica de tinción con anexina V para la determinación de la apoptosis, utilizando citometría de flujo.
CE3.4 Describir la técnica de tinción con ioduro de propidio para la determinación del ciclo celular, mediante citometría de flujo.
CE3.5 En un supuesto práctico de aplicaciones de citometría de flujo:
- Estudiar la apoptosis celular, aplicando la técnica de tinción con anexina V.
- Determinar calcio intracelular, marcadores intra y extracelulares y genes reporteros, utilizando el citómetro de flujo.
- Analizar por citometría de flujo el ciclo celular, aplicando la técnica de ioduro de propidio.
C4: Aplicar técnicas de control de contaminación de los cultivos celulares, reconociendo los tipos de contaminantes.
CE4.1 Identificar fuentes de contaminación de los cultivos celulares, diferenciando contaminación por microorganismos y contaminación por otras células en cultivo.
CE4.2 Reconocer los organismos contaminantes de los cultivos celulares, considerando sus características morfológicas.
CE4.3 Describir técnicas de prevención y tratamiento de las contaminaciones por microorganismos de los cultivos celulares, indicando antibióticos y antifúngicos empleados.
CE4.4 Describir contaminaciones por otras células en cultivo similares, precisando procedimientos de trabajo para su prevención.
CE4.5 Explicar procedimientos para detección de micoplasmas en cultivos celulares, empleando técnicas de PCR (Reacción en Cadena de la plimerasa), entre otras.
CE4.6 Describir técnicas de perfil genético para la identificación de líneas celulares, garantizando la autenticidad de los cultivos.
CE4.7 En un supuesto práctico de control de contaminación de los cultivos celulares:
- Detectar micoplasmas, aplicando técnicas de PCR.
- Aplicar antibióticos y antifúngicos, previniendo la contaminación y tratamiento de los cultivos.
- Aplicar técnicas de perfil genético, identificando las líneas celulares.
C5: Analizar procedimientos de modificación genética, aplicando técnicas de transfección y transducción viral.
CE5.1 Definir transfección y transducción viral, estableciendo diferencias.
CE5.2 Describir técnicas de transfección, diferenciando sus tipos.
CE5.3 Explicar técnicas de transducción viral, indicando las características biológicas de los diferentes virus empleados.
CE5.4 Describir eficiencia y viabilidad, en relación con la transfección viral, indicando métodos para su cálculo.
CE5.5 Describir multiplicidad de infección, eficiencia y viabilidad, asociándolos a la transducción viral.
CE5.6 Establecer medidas de bioseguridad en el manejo de virus, considerando sus características biológicas.
CE5.7 Reconocer técnicas de generación de partículas virales, utilizando cultivos celulares.
CE5.8 En un supuesto práctico de modificación genética:
- Realizar ensayos de transfección celular, utilizando ADN.
- Indicar la eficiencia y la viabilidad de la transfección, realizando los cálculos requeridos.
- Comprobar la transfección celular, verificando la expresión del gen transfectado.
C6: Aplicar técnicas de diferenciación y reprogramación genética de un cultivo celular, controlando su viabilidad y asepsia.
CE6.1 Definir los términos linaje celular y célula madre, indicando los diferentes niveles de potencialidad celular.
CE6.2 Explicar la diferenciación, transdiferenciación, y reprogramación genética, detallando sus características.
CE6.3 Describir estructuras supracelulares empleadas en diferenciación, precisando cuerpos embrioides (EBs), neuroesferas, cardioesferas, agregados celulares.
CE6.4 Describir las células reprogramadas (iPSCs), indicando sus características.
CE6.5 En un supuesto práctico de diferenciación y reprogramación celular:
- Diferenciar células madre, considerando varios tipos celulares.
- Realizar ensayos de caracterización de las células diferenciadas, seleccionando las técnicas previamente.
- Reprogramar células, empleando vectores no virales.
Capacidades cuya adquisición debe ser completada en un entorno real de trabajo:
C1 respecto a CE1.7; C2 respecto a CE2.4; C3 respecto a CE3.5; C4 respecto a CE4.7; C5 respecto a CE5.8 y C6 respecto a CE6.5.
Otras capacidades:
Proponerse objetivos retadores que supongan un nivel de rendimiento y eficacia superior al alcanzado previamente.
Emplear tiempo y esfuerzo en ampliar conocimientos e información complementaria.
Mantener una actitud asertiva, empática y conciliadora con los demás demostrando cordialidad y amabilidad en el trato.
Favorecer el desarrollo profesional y personal en el equipo de trabajo.
Demostrar creatividad en el desarrollo del trabajo que realiza.
Demostrar resistencia al estrés, estabilidad de ánimo y control de impulsos.
Adoptar códigos de conducta tendentes a transmitir el contenido del principio de igualdad.
Contenidos:
1. Técnicas de control de contaminación de cultivos celulares
Fuentes de contaminación en el laboratorio de cultivo celular: baños de agua, trampas de vacío, bandejas de incubadores, mala asepsia del operario, entre otras.
Tipos de organismos contaminantes: micoplasmas, bacterias, hongos y levaduras.
Empleo de antibióticos (Penicilina-Estreptomicina) y antifúngicos (anfotericina-B) como prevención y tratamiento de los cultivos.
Agentes antimicrobianos empleados en el laboratorio de cultivos: superficies de cobre, sulfato de cobre, iones de plata, aditivos para el agua de baños y depósitos de agua de los incubadores.
El micoplasma como contaminante silencioso: mecanismos de control.
Técnicas de detección de micoplasmas: visualización por agentes fluorescentes, PCR, ensayos enzimáticos luminiscentes.
Tratamiento y eliminación de los micoplasmas de los cultivos.
Contaminación del cultivo por otras células en cultivo similares: técnicas de prevención.
Identificación de líneas celulares mediante perfil genético para garantizar la autenticidad del cultivo.
2. Técnicas complementarias aplicadas a cultivos celulares
Técnicas de contaje y viabilidad celular.
Métodos de contaje celular: manual (cámara de Neubauer) y automático (contadores ópticos y por principio Coulter).
Viabilidad, apoptosis, senescencia e inmortalidad.
Colorantes empleados en contaje y viabilidad: azul tripano.
Moléculas fluorescentes empleadas en contaje y viabilidad: calceína AM, diacetato de fluoresceína, ioduro de propidio, homodímero de etidio, naranja de acridina, azul alamar.
Técnicas de determinación de apoptosis: TUNEL.
Moléculas fluorescentes empleadas: ioduro de propidio, anexina V-FITC y otros fluoróforos (PE, APC, entre otros), substratos fluorescentes de caspasas.
Técnicas empleadas en senescencia: ensayo b-galactosidasa.
Substratos colorimétricos (X-Gal) y fluorescentes (FDG).
Determinación de la proliferación/citotoxicidad mediante ensayos MTT y similares (XTT, resazurina).
Técnicas de extracción de ácidos nucleicos.
Ácidos nucleicos.
Diferencias entre el ADN y el ARN.
Purificación de ácidos nucleicos mediante métodos manuales y automáticos.
Empleo de columnas de purificación.
Extracción de ADN y ARN total mediante el método de Chomczynski (Trizol y productos similares basados en GTC).
Extracción de ADN y ARN citoplásmico mediante la técnica de lisis citoplasmática y proteinasa K.
Importancia de purificar el ARN mensajero.
Aplicaciones de los ácidos nucleicos extraídos: Southern Blots, Northern Blots, construcción de librerías, PCR, RT-PCR, qPCR, clonaje diferencial de genes, IP, ChIP, cribado de arrays, y otras.
Citometría de flujo y separación celular (FACS).
Tipos de citómetro y componentes esenciales de un citómetro.
Aplicaciones de la citometría de flujo: análisis del ciclo celular, apoptosis, medidas de calcio intracelular, expresión de marcadores intra y extracelulares, expresión de genes reporteros.
Técnicas de transfección y transducción viral.
Plásmidos y genes reporteros.
Transfección estable y transitoria.
Técnicas físicas (electroporación, biobalística).
Técnicas químicas (DEAE-dextrano, fosfato de calcio, lípidos catiónicos).
Transducción viral: retrovirus y lentivirus, adenovirus, virus Sendai.
Selección de clones o colonias (plaqueo espaciado o dilución límite) en las transfecciones estables, para obtener líneas celulares.
Técnicas de diferenciación y reprogramación celular.
Diferenciación y transdiferenciación.
Reprogramación genética.
Potencialidad celular.
Niveles de potencialidad (totipotencia, pluripotencia, multipotencia y unipotencia).
Desarrollo embrionario.
Hojas embrionarias: endodermo, mesodermo y ectodermo.
Tipos de células atendiendo a sus diferentes linajes celulares.
Características de las células reprogramadas (iPSCs).
Técnicas de reprogramación genética: genes de reprogramación, sustitución de genes por moléculas activadoras, vectores virales y no virales, mezcla de plásmidos y plásmidos policistrónicos.
Diferenciación de células madre hacia distintos tipos celulares: empleo de suplementos específicos, biomoléculas, productos químicos y otros.
Diferenciación mediante la generación previa de supraestructuras celulares: cuerpos embrioides (EBs), neuroesferas, cardioesferas, agregados celulares, entre otros.
Parámetros de contexto de la formación:
Espacios e instalaciones:
Los talleres e instalaciones darán respuesta a las necesidades formativas de acuerdo con el contexto profesional establecido en la unidad de competencia asociada, teniendo en cuenta la normativa aplicable del sector productivo, prevención de riesgos laborales, accesibilidad universal y protección medioambiental. Se considerará con carácter orientativo como espacios de uso:
- Taller de 3 m² por alumno o alumna.
- Instalación de 2 m² por alumno o alumna.
Perfil profesional del formador o formadora:
1. Dominio de los conocimientos y las técnicas relacionados con la aplicación de técnicas complementarias en cultivos celulares, que se acreditará mediante una de las dos formas siguientes:
- Formación académica de nivel 2 (Marco Español de Cualificaciones para la Educación Superior) o de otras de superior nivel relacionadas con el campo profesional.
- Experiencia profesional de un mínimo de 3 años en el campo de las competencias relacionadas con este módulo formativo.
2. Competencia pedagógica acreditada de acuerdo con lo que establezcan las Administraciones competentes.
Familia Profesional: Seguridad y Medio Ambiente
Nivel: 2
Código: SEA755_2
Competencia general
Preparar, aplicar, y trasladar los medios, productos, precursores de productos biocidas y artículos tratados destinados al control de organismos nocivos empleando procesos de desinfección y tratamientos alguicidas por cualquier medio que no sea una mera acción física o mecánica adoptando las medidas de acuerdo a la normativa relativa a protección medioambiental y planificación de la actividad preventiva, la normativa de biocidas, de bienestar animal, y a los estándares de calidad.
Unidades de competencia
UC2515_2:Aplicar medios, artículos tratados, precursores y productos químicos, desinfectantes o alguicidas en espacios/equipos, no destinados a la aplicación directa a personas o animales ni en contacto directo con alimentos o piensos
UC2516_2:Aplicar medios, artículos tratados, precursores y productos químicos y desinfectantes en la higiene veterinaria o en la aplicación directa sobre piel intacta del animal
UC2517_2:Aplicar medios, artículos tratados, precursores, productos químicos y desinfectantes en materiales en contacto con alimentos o piensos
UC2518_2:Llevar a cabo operaciones de preparación y traslado de utensilios, equipos, productos, precursores de productos biocidas y artículos tratados empleados en los servicios de control de organismos nocivos
UC2519_2:Realizar las funciones de nivel básico para la prevención de riesgos laborales
Entorno Profesional
Ámbito Profesional
Desarrolla su actividad profesional en el área de gestión ambiental, dedicado a la seguridad y medio ambiente, en actividades de control de organismos nocivos, en las áreas de preparación, aplicación, y eliminación de medios, productos y artículos tratados, en entidades de naturaleza pública o privada, en grandes, medianas y pequeñas empresas, tanto por cuenta propia como ajena con independencia de su forma jurídica. Desarrolla su actividad dependiendo en su caso, funcional y/o jerárquicamente de un superior. Su actividad profesional está sometida a regulación por la Administración competente. En el desarrollo de la actividad profesional se aplican los principios de accesibilidad universal y diseño universal o diseño para todas las personas de acuerdo con la normativa aplicable.
Sectores Productivos
Se ubica en el sector productivo de la sanidad am