Categoría: Normativas

De acuerdo con lo previsto en el artículo 48.8 de la Ley 40/2015, de 1 de octubre, de Régimen Jurídico del Sector Público, procede la publicación en el «Boletín Oficial del Estado» de la Adenda modificativa segunda y prórroga suscrita con fecha 13 de enero de 2022, del Convenio de colaboración entre el Ministerio de Agricultura y Pesca, Alimentación y Medio Ambiente y la Universidad Politécnica de Madrid para la conservación de los olmos ibéricos.
Madrid, 24 de enero de 2022.–El Director General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación, Jorge Blanco Núñez Márquez Bravo Madrid, a 13 de enero de 2022.
De una parte, don Jorge Diez Ramos Santos, Director General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación del Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico, nombrado por Real Decreto 423/2020, de 25 de febrero (BOE núm. 49, de 26 de febrero de 2020), actuando en nombre y representación del citado departamento en aplicación de la Orden TED/533/2021, de 20 de mayo, sobre delegación de competencias, y en virtud de las competencias atribuidas conforme a la Ley 40/2015, de 1 de octubre, de Régimen Jurídico del Sector Público y al Real Decreto 500/2020, de 28 de abril, por el que se desarrolla la estructura orgánica básica del Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico y se modifica el Real Decreto 139/2020, de 28 de enero, por el que se establece la estructura orgánica básica de los departamentos ministeriales.
De otra parte, don Guillermo Nieto García, Rector Magnífico de la Universidad Politécnica de Madrid, (CIF Q-2818015F) (en adelante UPM), nombrado por Decreto 109/2020 de 25 de noviembre (BOCM núm. 289 de 26 de noviembre de 2020), actuando en nombre y representación de la misma, en virtud de las facultades que le confieren los estatutos de la Universidad Politécnica de Madrid, aprobados por Decreto 74/2010 de 21 de octubre (BOCM núm. 273 de 15 de noviembre de 2010).
Las partes se reconocen respectivamente competencia y capacidad para la firma de la presente adenda modificativa del citado convenio y, en su virtud,
El 13 de diciembre de 2017 se firmó el Convenio de colaboración entre el Ministerio de Agricultura y Pesca, Alimentación y Medio Ambiente y la Universidad Politécnica de Madrid para la conservación de los olmos ibéricos. Mediante la resolución de 20 de diciembre de 2017, de la Dirección General de Desarrollo Rural y Política Forestal, se procedió a su publicación en el «Boletín Oficial de Estado» (BOE núm. 2, de 2 de enero de 2018). Por otra parte, el 13 de junio de 2019 se firmó una adenda del Convenio denominada «Adenda modificativa del convenio de colaboración entre el Ministerio de Agricultura y Pesca, Alimentación y Medio Ambiente y la Universidad Politécnica de Madrid para la conservación de los olmos ibéricos», procediéndose a su publicación en el BOE núm. 154, de 28 de junio de 2019.
El Real Decreto 500/2020, de 28 de abril, por el que se desarrolla la estructura orgánica básica del Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico, y se modifica el Real Decreto 139/2020, de 28 de enero, por el que se establece la estructura orgánica básica de los departamentos ministeriales, asignó a la Dirección General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación del Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico las funciones que venía desarrollando la extinta Dirección General de Desarrollo Rural, Innovación y Política Forestal del Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación en las materias objeto del Convenio.
La vigencia del Convenio finaliza el 2 de febrero de 2022, conforme a lo que consta en el certificado de la inscripción en el Registro Electrónico estatal de Órganos e Instrumentos de Cooperación del sector público estatal (REOICO) de la adenda modificativa primera. Asimismo, la cláusula quinta dispone que las partes del convenio podrán acordar unánimemente su prórroga por un periodo de hasta cuatro años adicionales o su extinción. En caso de prórroga, esta debe ser comunicada al Registro Electrónico estatal de Órganos e Instrumentos de Cooperación.
Próxima a concluir la vigencia del Convenio, manteniéndose las circunstancias que dieron lugar a su firma y con el fin de continuar la ejecución del objeto del mismo, ambas partes consideran la conveniencia y necesidad de prorrogar el Convenio actualmente vigente hasta el transcurso del plazo máximo de cuatro años adicionales previsto en el artículo 49.h) de la Ley 40/2015, de 1 de octubre, de Régimen Jurídico del Sector Público, que se tramitará de conformidad con lo previsto en el artículo 50 de dicha Ley.
Ambas partes ponen de manifiesto la necesidad de modificar las actuaciones previstas para el logro de los objetivos, así como su previsión de ejecución temporal para el período de prórroga del Convenio, con objeto de adaptarlas a las necesidades actuales y al estado del conocimiento científico existente. Para hacer efectivas dichas modificaciones y una vez comprobado que los objetivos generales del Convenio no se ven modificados, se propone una nueva redacción del documento de Condiciones técnicas del anejo I.
El hecho de modificar las condiciones técnicas de las actuaciones previstas y su previsión de ejecución temporal, obliga a realizar un reajuste en la distribución de las aportaciones financieras del MITECO. Por todo ello, mediante esta adenda, se modifica la cláusula segunda del Convenio y se propone una nueva redacción del anejo IV.
Se pretende modificar los nombres de las entidades y órganos citados en el convenio para adaptarlos a las actuales denominaciones oficiales.
Por lo anteriormente expuesto y conforme a lo dispuesto en el Capítulo VI del Título Preliminar de la Ley 40/2015, de 1 de octubre, de Régimen Jurídico del Sector Público, las partes acuerdan suscribir la presente adenda modificativa del convenio, que se regirá por las siguientes
Las partes acuerdan prorrogar la vigencia del Convenio por un período de cuatro años adicionales.
La presente Adenda se perfeccionará con el consentimiento de las partes. Resultará eficaz una vez que sea inscrita en el Registro Electrónico Estatal de Órganos e Instrumentos de Cooperación; asimismo será publicado en el «Boletín Oficial del Estado», de acuerdo con lo establecido en el artículo 48.8 de la Ley 40/2015, de 1 de octubre.
La cláusula segunda queda redactada de la siguiente forma:
Para financiar las actuaciones objeto de este convenio ambas partes aportarán recursos materiales, humanos y económicos, conforme a lo expuesto en esta cláusula.
El MITECO aporta las infraestructuras, instalaciones, terrenos y medios materiales y humanos que se relacionan en el Anejo II. Además, se compromete a financiar el desarrollo de las actuaciones incluidas en el Anejo I con un máximo de un millón novecientos noventa y seis mil ochocientos ochenta y nueve euros con cincuenta y tres céntimos (1.996.889,53 euros), de los cuales un máximo de 1.273.017,08 euros podrán formar parte de la contribución del FEADER al Programa Nacional de Desarrollo Rural 2014-2020, con cargo a la aplicación presupuestaria 23.11.456C.640 conforme al siguiente desglose anual:
Anualidad 1 (convenio original): 82.595,50 euros.
Anualidad 2 (convenio original): 97.173,96 euros.
Anualidad 3 (convenio original): 271.797,24 euros.
Anualidad 4 (convenio original): 195.409,81 euros.
Anualidad 5 (convenio original): 181.677,73 euros.
Anualidad 6 (prórroga): 323.529,41 euros.
Anualidad 7 (prórroga): 372.352,94 euros.
Anualidad 8 (prórroga): 251.176,47 euros.
Anualidad 9 (prórroga): 221.176,47 euros.
Total convenio original: 828.654,24 euros.
Total prórroga: 1.168.235,29 euros.
Total: 1.996.889,53 euros.
La adenda también será susceptible de ser cofinanciada a través del Plan Estratégico de España para la PAC post 2020 (PEPAC).
La UPM aporta sus infraestructuras, instalaciones, medios materiales y humanos relacionados en el Anejo II. Además, la UPM se compromete a aportar adicionalmente los medios necesarios para la consecución de los objetivos y las actuaciones previstas en el Anejo I.
Ambas partes consideran que corresponde a la Universidad Politécnica de Madrid, al ser la entidad con naturaleza científica del Programa, ejecutar las actuaciones previstas en el Anejo I, aunque siempre con la participación del MITECO en las acciones y bajo la supervisión de la comisión de seguimiento. Por lo tanto, se hace necesario que la aportación financiera del MITECO se transfiera a la UPM para tal fin.
La aportación financiera del MITECO se hará efectiva, mediante transferencia a la cuenta número ES36 2100-9194-1722-0060-0055 abierta a nombre de la UPM, de la siguiente manera:
– 82.595,50 euros (el 9,97 % de la aportación total) al inicio del convenio en concepto de anticipo por las operaciones preparatorias según lo establecido en el artículo 21.3 de la ley 47/2003, de 26 de noviembre, General Presupuestaria. Las operaciones preparatorias están identificadas como tales en el anejo IV del convenio original. Previamente al pago y como prestación de garantía, la UPM deberá presentar un aval bancario por la cantidad total entregada por este concepto, que podrá ser ejecutado por el MAPAMA en caso de incumplimiento.
– El resto de la aportación de cada anualidad se hará efectiva según se vaya justificando anualmente el uso de los fondos públicos, descontando en cada caso la cuantía de las operaciones consideradas como preparatorias, ya percibidas como anticipo. A efectos de este convenio se considerarán las anualidades presupuestarias, es decir, cada anualidad se inicia el 1 de diciembre del año anterior, finalizando el 30 de noviembre de ese año.
– A efectos del cálculo de la aportación anual se deberá añadir a los gastos justificados, el concepto del canon que tiene regulado la UPM para sufragar los costes de gestión de proyectos y para compensar los costes de utilización de medios propios de la Universidad, conforme al acuerdo del consejo de gobierno publicado en el "Boletín Oficial de la UPM" el 22 de diciembre de 2017. Actualmente este canon está fijado en el 15 % de los recursos ingresados, aunque se aplicará el porcentaje vigente en cada periodo.
– El último pago a efectuar por parte del MITECO a la UPM se hará al finalizar el plazo de ejecución de la prórroga del convenio, tras la constatación de que el objeto se ha realizado en los términos y a satisfacción de ambas partes, con ocasión de la liquidación del convenio, según se regula en el artículo 52.2 de la Ley 40/2015 de Régimen Jurídico del Sector Público.
A efectos de verificar la justificación del uso correcto de los fondos públicos, el representante de la UPM presentará anualmente los justificantes de los gastos derivados de la ejecución de las actuaciones del presente convenio de acuerdo a los certificados de los asientos contables, que serán comprobados y conformados por el representante de la Dirección General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación del MITECO, según se especifica en el documento de Condiciones Técnicas del Anejo I. Una vez que las actuaciones hayan sido concluidas, deberá comprobarse su correcta ejecución por parte de la Dirección General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación, y su conformidad previa será preceptiva al informe favorable de la Comisión de Seguimiento creada conforme a la cláusula tercera de este Convenio.
A efectos de fiscalización externa, este convenio debe remitirse electrónicamente al Tribunal de Cuentas dentro de los tres meses siguientes a su suscripción, según lo establecido en el artículo 53 de la Ley 40/2015 de Régimen Jurídico del Sector Público.
Los fondos destinados al presente convenio no financiarán, en ningún caso, las actuaciones previstas en el Programa LIFE13 BIO/ES/000556. IP/14/486. European Commission: 2014-2019. “Restauración de los Olmos Ibéricos(Ulmus minoryU. laevis)en la Cuenca del Tajo”.»
El primer párrafo de la cláusula cuarta queda redactado de la siguiente forma:
«La Universidad Politécnica de Madrid, dentro de su personal docente o investigador con experiencia en el objeto del convenio, designará a la persona responsable de las actividades de la presente colaboración, que podrán ser una o varias, especificando en su caso, el reparto de responsabilidades entre los designados.»
El documento denominado «Anejo I» queda redactado conforme a la versión que se adjunta como Anejo I en esta Adenda modificativa segunda y prórroga del Convenio.
El contenido del Anejo II, denominado «Aportaciones del Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación / Aportaciones de la Universidad Politécnica de Madrid», se modifica actualizándose las aportaciones que realizan los respectivos organismos en medios humanos y materiales, quedando redactado conforme a la versión que se adjunta como Anejo II de esta Adenda modificativa segunda y prórroga del Convenio.
El contenido del Anejo IV «Presupuesto», donde se valora la aportación del MITECO para hacer frente a los gastos originados por las actividades del Convenio, queda redactado conforme a la versión que se adjunta como Anejo III en esta Adenda modificativa segunda y prórroga del Convenio.
Todas las referencias al «Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación» deberán entenderse como «Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico».
Todas las referencias al «MAPA» deben entenderse como «MITECO».
Todas las referencias a la «Dirección General de Desarrollo Rural, Innovación y Política Forestal» deberán entenderse como «Dirección General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación».
Todas las referencias a la «DGDRIyPF» deberán entenderse como «DGBBD».
Todas las referencias al «Grupo de investigación «Genética, Fisiología e Historia Forestal"» deberán entenderse como «Departamento de Sistemas y Recursos Naturales».
Y, en prueba de conformidad, y para la debida constancia de cuanto queda convenido, las partes firman este documento, por cuadruplicado ejemplar y en todas sus hojas, en el lugar y la fecha al inicio indicados.–Por el Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico, P. D. (Orden TED/533/2021, de 20 de mayo), el Director General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación, Gallego Aguilar Rodríguez Moya.–Por la Universidad Politécnica de Madrid, el Rector, Guillermo Cruz Blanco Giménez varias décadas de actividad, la continuación del Programa Español de Conservación y Mejora de los Recursos Genéticos de los Olmos Ibéricos es clave para seguir avanzando en la línea de trabajo que está haciendo posible la recuperación de los olmos en nuestro territorio.
Como objetivos, para los próximos años se plantean actividades encaminadas a facilitar el proceso de selección de individuos resistentes, conocer la estructura genómica de los olmos, comprender la evolución del hongo patógeno en las últimas décadas, y evaluar interacciones entre el genotipo de olmo y el ambiente donde se desarrolla, y entre el genotipo de olmo y la cepa del patógeno que le infecta. El estudio de estas interacciones ayudará a predecir el comportamiento de los clones seleccionados bajo diferentes escenarios. Asimismo, se plantea estudiar la utilidad de incorporar microrganismos simbiontes beneficiosos en el proceso de producción de planta, con el fin de mejorar su crecimiento y tolerancia al estrés. Para avanzar en la selección de individuos resistentes, se propone obtener réplicas clonales de individuos procedentes de cruces entre genotipos resistentes, para que su resistencia al patógeno pueda ser evaluada con suficiente rigor estadístico, como paso previo a su utilización como materiales de base.
En concreto, se plantean las siguientes actividades:
1. Detección precoz de la resistencia.
El alto número de nuevos ejemplares deUlmus minorno afectados por la grafiosis localizados durante la fase previa del convenio, ha generado la necesidad de desarrollar una metodología para la detección precoz de la resistencia a la enfermedad que permita acortar tiempos y costes en el proceso de selección de genotipos de olmos resistentes. En la fase anterior del convenio se ha ensayado una metodología que permite descartar genotipos altamente susceptibles, con la que se podría optimizar los recursos empleados en el proceso de selección.
Para el desarrollo de esta metodología, en los últimos 4 años se ha realizado una serie de pruebas en plántulas deU. minorpropagadas mediante cultivoin vitroe inoculadas mediante inmersión de la raíz en solución de esporas deOphiostoma novo-ulmi. Tras este proceso, se han evaluado parámetros biométricos y bioquímicos que han permitido conocer el nivel de afectación por grafiosis en genotipos con distinto grado de resistencia a la enfermedad. Estos parámetros están relacionados con (i) el crecimiento y desarrollo, (ii) el incremento de estrés oxidativo, y (iii) la producción de metabolitos de defensa en presencia del patógeno. Como resultado de estos análisis, se ha observado que los genotipos susceptibles y aquellos con grados medios de resistencia manifiestan los siguientes síntomas:
1) Interrupción del crecimiento del tallo y ausencia de formación de nuevas raíces.
2) Aparición de zonas necróticas en las raíces y en la base del tallo, clorosis y, en ocasiones, pigmentación rojiza en las hojas.
3) Incremento de estrés oxidativo en la parte aérea.
4) Acumulación de compuestos fenólicos en el tallo y la raíz.
5) Disminución del contenido en clorofilas y, en ocasiones, incremento de antocianinas.
Por su parte, los genotipos de olmo resistentes evaluados con esta metodología no han mostrado ninguno de estos síntomas. En la presente fase del convenio se propagarán mediante cultivoin vitrogenotipos candidatos, localizados por el Programa del olmo en años previos, y genotipos confirmados como resistentes a la grafiosis, los cuales servirán como control. Una vez las plántulas hayan formado la raíz, se inocularán conO. novo-ulmimediante la inmersión de la raíz en una suspensión esporal del patógeno y se trasplantarán a recipientes estériles donde se crecerán durante 28 días, tiempo en el cual se han obtenido los resultados más significativos en las comparaciones entre genotipos resistentes y susceptibles durante la puesta a punto de la metodología. Al término de este periodo, se evaluará el crecimiento, la aparición de raíces nuevas y de síntomas asociados a la enfermedad, y se recogerá el material vegetal para realizar distintos análisis bioquímicos indicadores de estrés asociados a la presencia del patógeno. El número de genotipos a evaluar cada año dependerá del éxito del proceso de propagaciónin vitro, aspecto muy variable y dependiente de cada genotipo. Se espera poder ensayar al menos 20 genotipos candidatos, para cuya elección se tendrá en cuenta su distribución geográfica. Se descartarán para el programa de mejora aquellos genotipos que muestren caracteres asociados a resistencia media o baja a la grafiosis. Así, el número final de genotipos a propagar y plantar en las parcelas de experimentación se reducirá sensiblemente, con el consiguiente ahorro económico, de tiempo y de espacio en el proceso de selección. Posteriormente, y una vez sean evaluados por el método tradicional los genotipos seleccionados, se podrá estimar el porcentaje de éxito de esta metodología de detección precoz.
2. Ampliación del catálogo de recursos genéticos de los olmos ibéricos: Construcción de un genoma de referencia deUlmus minore integración de los resultados del programa de mejora.
En los últimos años se ha progresado en el estudio de las bases moleculares de la resistencia deUlmus minora la grafiosis. El desarrollo de nuevas herramientas moleculares, especialmente las basadas en las técnicas de secuenciación masiva, ha permitido obtener una amplia información al respecto a nivel genético y transcripcional. Pese a ello, y debido a la complejidad de estos estudios, no se conocen con precisión todos los genes relacionados con la resistencia a la enfermedad, ni la implicación de aquellos ya identificados como candidatos. En este sentido, la obtención de un genoma de referencia de un ejemplar de olmo resistente permitiría avanzar en esta cuestión, al facilitar la identificación de las regiones genómicas implicadas en la resistencia a la enfermedad, lo que en el futuro simplificará la búsqueda de genotipos resistentes y el análisis de los elementos genómicos responsables de la resistencia. Así mismo, la obtención de un genoma de referencia permitirá incrementar las herramientas para los estudios de diversidad y estructura genética poblacional, lo que supondrá un importante avance para el programa de conservación y mejora de los olmos ibéricos.
En la presente fase del convenio se obtendrá un primer genoma de referencia deUlmus minormediante la secuenciaciónde novodel clon resistente a la grafiosis Ademuz (V-AD2), dado que es el genotipo con mayor difusión hasta la fecha, ha mostrado una excelente adaptación a diferentes condiciones ambientales y una activa respuesta molecular ante el patógeno. Esta actividad implica la secuenciación de librerías de ADN, tanto de lectura larga como de lectura corta de mayor fiabilidad. Mediante el uso de técnicas bioinformáticas se realizará el ensamblaje de las secuencias obtenidas y con ello un primer borrador del genoma del genotipo seleccionado. A partir de la información obtenida en anteriores trabajos realizados en el grupo de investigación y de los futuros análisis este genoma se irá montando en sucesivas versiones mejoradas hasta obtener un genoma ensamblado y anotado completamente.
Por otro lado, debido a la importancia que representan los clones de olmo catalogados como resistentes en los planes de restauración de olmedas, tanto en España como en otros países del continente europeo, se procederá a la resecuenciación de seis de los siete genotipos catalogados en España (además del Ademuz, usado para utilizado como genoma de referencia) y de otros seis con potencial de serlo en los próximos años, lo que facilitará la identificación, localización y validación de nuevos marcadores moleculares como SNPs (single nucleotide polymorphisms) asociados a genotipos resistentes y la creación de herramientas para futuros estudios de diversidad genética.
3. Caracterización del estado actual del patógeno de la grafiosis en España.
Los microorganismos están sometidos a procesos de selección y evolución más rápidos que sus plantas hospedantes. En el caso de la grafiosis, investigaciones recientes han demostrado que el patógeno ha variado sus características genéticas y fenotípicas en el trascurso de las últimas décadas, debido a procesos de hibridación, introgresión y selección natural. Por un lado, una vez la especie más agresiva de la grafiosis,Ophiostoma novo-ulmi, fue introducida en Europa a mitad del siglo pasado, ésta adquirió una serie de genes a partir de la especie menos agresiva,Ophiostoma ulmi, que ya estaba ampliamente distribuida en Europa desde comienzos del siglo XX. Aunque los híbridos entre ambas especies resultaron de vigor reducido, la adquisición de genes contribuyó de forma decisiva a la diversificación deO. novo-ulmien Europa en distintos grupos de apareamiento y de compatibilidad vegetativa. Así, el patógeno pasó de ser mayoritariamente clonal a genéticamente muy heterogéneo. Al diversificarse,O. novo-ulmiconsiguió que su tasa de infección por parte de una serie de virus que lo debilita (y que posiblemente causó la atenuación de la primera pandemia de grafiosis) disminuyera ostensiblemente. Ello se debe a que los virus solo pueden transmitirse entre cepas compatibles entre sí, mientras que, al aumentar la diversidad de grupos compatibles, esta transmisión se ve limitada. Por otra parte, se conoce queO. novo-ulmise divide en dos subespecies, una euroasiática y otra norteamericana, con características fenotípicas y reproductivas particulares. Esta última subespecie fue introducida en Europa en los años 70, y en consecuencia se produjo un solapamiento en la distribución de ambas subespecies. Este solapamiento ha conducido a una extensa hibridación entre las dos subespecies en varios lugares de Europa dando como resultado nuevos fenotipos del patógeno, localmente adaptados. La complejidad y dinámica de estos eventos ponen en evidencia la necesidad de realizar un análisis de los posibles cambios en la estructura del patógeno. En España, la última caracterización de las cepas de grafiosis se realizó en 2008, mediante un estudio de la diversidad genética del patógeno. Para avanzar en esta línea, durante esta fase del convenio, se aislarán al menos 20 nuevas cepas de grafiosis procedentes de distintas regiones del territorio español. Se estudiará su taxonomía, sus características fenotípicas y se estimará su grado de virulencia usando un método de inoculación del patógeno en manzanas, mediante el cual el área necrótica generada es una estimación de la virulencia de la cepa. Además, aprovechando la aparición de nuevas metodologías de secuenciación genética, estas cepas se caracterizarán mediante marcadores moleculares que permitirán conocer la estructura taxonómica actual del patógeno en España. La caracterización fenotípica permitirá conocer si se está produciendo una selección hacia una mayor o menor agresividad del patógeno, comparando su virulencia estimada con la de cepas aisladas hace más de 15 años. Este resultado será de utilidad para la evaluación del futuro comportamiento de los clones de olmo resistentes ya seleccionados ante estas nuevas cepas de hongos emergentes.
4. Interacción genotipo de olmo × cepa de grafiosis en olmos seleccionados por su resistencia.
El patógeno causante de la grafiosis está en continua evolución, por lo que nuevos fenotipos del patógeno localmente adaptados pueden haber emergido en los últimos años. De cara a la utilización de los genotipos resistentes seleccionados, es importante definir con la mayor precisión posible su comportamiento ante distintas cepas del patógeno, y comprobar si existe una interacción significativa entre el genotipo y la cepa. Cabe la posibilidad de que algunas cepas del patógeno sean más virulentas frente a algunos genotipos de olmo que frente a otros. Para el estudio de estas interacciones, el primer año se propagarán vegetativamente plantas deUlmus minorde cuatro genotipos catalogados como resistentes a la grafiosis (Ademuz, Dehesa de la Villa, Dehesa de Amaniel y Retiro). Se propagarán además un genotipo de tolerancia intermedia y otro susceptible, seleccionados de entre los usados habitualmente en el programa del olmo. Trascurrido un periodo vegetativo de cultivo en vivero, las plántulas se plantarán en una parcela de experimentación en las instalaciones del Ministerio, con una distribución de genotipos completamente aleatoria. En el tercer periodo vegetativo tras su plantación (4.º año del convenio), se hará un seguimiento de la fenología foliar y, transcurridos 40 días tras el inicio de la brotación de primavera, las plantas de cada genotipo se dividirán aleatoriamente en cinco grupos para su inoculación con cinco cepas diferentes deOphiostoma novo-ulmi. El número estimado de plantas necesarias para el ensayo será de 6 genotipos × 5 cepas × 6 réplicas/cepa = 180 plantas, que serán lo más homogéneas posible en cuanto a crecimiento. Tras la inoculación, se realizará un seguimiento del desarrollo de síntomas de marchitamiento foliar. El año de la inoculación se medirá sobre los árboles la conductancia estomática, como estimación del estado hídrico de la planta, y la temperatura mediante cámara térmica, ya que las hojas que transpiren menos por el bloqueo de los vasos se calentarán más. Como resultado, se conocerá si las cinco cepas de grafiosis se comportan de manera similar ante los seis genotipos.
5. Estudio de la adaptación hidráulica de los clones resistentes a distintos ambientes.
Dos de los mayores retos a los que se enfrentan los olmos son la enfermedad de la grafiosis y el calentamiento global. Para poder predecir el comportamiento de los clones resistentes bajo condiciones climáticas futuras es necesario entender su plasticidad fenotípica. Esta tarea estudiará cómo se adaptan los caracteres hidráulicos de los olmos resistentes a distintas condiciones ambientales. Los árboles tienen que encontrar un equilibrio entre la capacidad de transporte de agua desde el suelo a las hojas y la capacidad fotosintética de sus hojas. Este equilibrio les permite aprovechar la disponibilidad de agua en el suelo, maximizando su fotosíntesis sin llegar a niveles elevados de estrés hídrico causados por la pérdida de agua a través de sus hojas debido a la demanda evapotranspirativa de la atmósfera. Dado el vínculo existente entre la susceptibilidad a la grafiosis y el tamaño de los vasos del xilema (a mayor diámetro mayor susceptibilidad a la enfermedad y mayor capacidad de transporte hídrico) es importante conocer cómo van a variar estos caracteres bajo condiciones climáticas futuras. Para ello, se estudiará la relación entre la inversión realizada por el árbol en su capacidad fotosintética, la relación de área foliar respecto al diámetro de los tallos y la capacidad de transporte de los tallos de los genotipos resistentes seleccionados. Se ha establecido una hipótesis de cómo han de variar estos parámetros en función de las condiciones ambientales (humedad del suelo, radiación, temperatura y humedad relativa) y el coste de producción de hojas, la cual establece que las plantas maximizarán su capacidad de asimilación fotosintética sin alcanzar estrés hídrico significativo manteniendo una homeostasis de ratio de 0,7 entre la concentración de CO2intercelular de las hojas y concentración de CO2ambiental. Se seleccionarán 10 localidades con climas contrastados donde se han plantado clones resistentes a la grafiosis en los últimos años (ya sea en parcelas de ensayo, bancos de conservación o a través de donaciones a distintas entidades). En cada uno de los ejemplares seleccionados se medirá una curva de respuesta asimilación versus concentración intracelular de CO2, se medirá la capacidad de transporte hídrico, la relación entre área foliar y área basal de los clones, se tomará una muestra de hojas para evaluar su coste de producción y se tomará una muestra de suelo para determinar su estructura y contenido en macronutrientes.
6. Incorporación de endófitos beneficiosos a la producción de planta.
En los últimos años se han seleccionado una serie de hongos endófitos que, inoculados en plantas de olmo, han demostrado un efecto positivo en la resistencia de la planta ante la grafiosis o en la supervivencia ante situaciones de estrés abiótico. En la naturaleza, los endófitos se adquieren gradualmente por parte de la planta durante su proceso de desarrollo, especialmente durante los estadios iniciales de crecimiento. Los endófitos que están presentes en las semillas o en el suelo van a ser los primeros colonizadores de la planta. Por otra parte, se conoce que el orden de llegada de estos microorganismos a la planta puede influir en las asociaciones que se establezcan a largo plazo debido a un «efecto de prioridad», pudiendo conducir a asociaciones de tipo beneficioso o perjudicial. Una vez la planta adquiere un mayor desarrollo, la flora endófita y las asociaciones que se establecen entre los distintos microorganismos son más estables y resilientes ante cambios en su entorno, por lo que su modificación por métodos artificiales resulta más compleja. En la presente fase del convenio se inocularán semillas y plántulas jóvenes con endófitos beneficiosos para comprobar su influencia en el desarrollo de las plantas y la persistencia de los endófitos inoculados a largo plazo en el interior de sus tejidos. Esta utilización de los endófitos podría dar lugar a un mejor desarrollo de las plantas, una mayor supervivencia o incluso a una mayor tolerancia al estrés biótico.
Para ello, durante el primer año, se recogerán semillas de polinización abierta de tres individuos deUlmus minordel banco clonal de conservación de Puerta de Hierro, las cuales se tratarán mediante inmersión en una suspensión esporal de endófitos clasificados como beneficiosos para la planta, bien sea por estimular su desarrollo o incrementar la resistencia a la grafiosis. Asimismo, se tratarán plántulas de un genotipo deU. minorobtenidas por cultivoin vitromediante inmersión de su sistema radical en una suspensión esporal de los mismos endófitos beneficiosos, seleccionados en fases previas del convenio. Los genotipos seleccionados (tanto para la recogida de semillas como para su propagación vegetativa) serán de resistencia moderada o baja a la grafiosis. Las plántulas obtenidas (40 por árbol madre u ortet, en total 160 plantas) serán aviveradas durante un año en un Centro del Ministerio y plantadas en su segundo año de vida en dos parcelas experimentales. Como controles, la mitad de los brinzales y réplicas clonales obtenidos no se tratarán con los endófitos. Una vez establecidas las parcelas, se medirá la tasa de crecimiento radial y apical y parámetros de intercambio gaseoso de las plantas durante tres años. Cuando las plantas tengan cuatro savias, en cada parcela se realizará uno de los siguientes ensayos: i) tolerancia a la sequía estival sometiendo a las plantas de la parcela a carencia de riego durante los meses estivales, y ii) resistencia a la grafiosis mediante la inoculación artificial del patógeno. Al segundo y cuarto año de edad se tomarán muestras en árboles tratados y control para estudiar, mediante PCR cuantitativa, la cantidad existente en los tejidos de floema y xilema de los endófitos inoculados. De esta forma, se podrá evaluar la persistencia de los endófitos en la planta y su efecto sobre la supervivencia, el desarrollo y la tolerancia al estrés biótico de las plantas.
7. Propagación de ejemplares seleccionados a partir de cruces R × R.
En el pasado se realizaron una serie de cruces controlados entre algunos de los genotipos resistentes a la grafiosis catalogados. Como resultado, se obtuvieron siete progenies que fueron plantadas en una parcela experimental e inoculadas durante dos años consecutivos (2017 y 2018) con una cepa de grafiosis. Un número elevado de individuos de esa parcela mostraron una alta resistencia a la enfermedad. Sin embargo, para que su resistencia pueda evaluarse con suficiente rigor estadístico, cada individuo debe ser replicado, plantado e inoculado de nuevo, en un número de réplicas clonales no inferior a seis. Una vez su resistencia se confirme, podrían ser propuestos como materiales de base para actuaciones de recuperación de la especie.
Esta tarea tiene el objetivo de propagar por cultivoin vitro50 nuevos genotipos procedentes de cruces R × R, si la adaptación de estos clones a las condiciones del cultivoin vitroasí lo permiten. De cada genotipo propagado se obtendrán 40 réplicas clonales que serán entregadas en el CNRGF Puerta de Hierro. Este número de réplicas es el que se estima conveniente para incluir cada genotipo en dos parcelas de ensayo en distintos ambientes y evaluar su resistencia como clon. La propagación se realizará durante los tres últimos años, a razón de 20 nuevos clones el segundo y tercer año, y de 10 nuevos clones el cuarto año.
Corresponde a la UPM la realización de los trabajos descritos en el apartado primero del presente documento, aportando el personal científico, técnico y auxiliar para la buena ejecución de aquellos, así como el material de laboratorio, instrumental y medios precisos.
Su realización en líneas generales comprende:
– La ejecución práctica de todas las labores de laboratorio, en instalaciones propias y de la Dirección General de Biodiversidad, Bosques y Desertificación (en adelante, DGBBD) con personal especializado.
– La detección precoz de la resistencia a la grafiosis de genotipos seleccionados deUlmus minor(Actividad 1).
• De cada uno de los cinco genotipos de olmo candidatos que se ensayen cada año, así como del genotipo que se utilice como control de resistencia, se obtendrá material adecuado para su multiplicación mediante cultivoin vitro.Se propagarán seis réplicas de cada genotipo para la realización de los ensayos (1A).
• Se evaluarán los resultados de los ensayos mediante la estimación de parámetros biométricos y bioquímicos (1B).
– La ampliación del catálogo de recursos genéticos de los olmos ibéricos (Actividad 2).
• Se obtendrá un primer genoma de referencia deUlmus minormediante la secuenciaciónde novode un clon de olmo catalogado como resistente a la grafiosis mediante la generación de diversas librerías de ADN y su posterior ensamblaje mediante técnicas bioinformáticas (2A).
• Se resecuenciarán otros 6 genotipos de olmo catalogados como resistentes y otros 6 genotipos de interés para el programa de mejora (2B).
– La caracterización del estado actual del patógeno de la grafiosis en España (Actividad 3).
• Se aislarán al menos 20 nuevas cepas de grafiosis a partir de olmos infectados en distintas regiones del territorio español (3A).
• Se realizará la caracterización fenotípica de cada cepa mediante la evaluación de su crecimiento y de las características morfológicas de la colonia (3B).
• Se caracterizará la virulencia de cada cepa mediante el método de inoculación en manzanas y se comparará con la de cepas ya empleadas en los ensayos de resistencia (3C).
• Se realizará una caracterización taxonómica de cada cepa mediante el empleo de marcadores moleculares específicos (3D).
– El estudio de la interacción genotipo de olmo × cepa de grafiosis en olmos seleccionados por su resistencia (Actividad 4).
• Se propagará la planta necesaria para la realización del ensayo (al menos 180 plantas de seis genotipos) (4A).
• Se hará el diseño y se plantará una parcela experimental (4B).
• Los árboles plantados se inocularán con una cepa de grafiosis y se hará un seguimiento de la fenología y los síntomas mostrados (4C).
– Estudio de la adaptación hidráulica de los clones resistentes a distintos ambientes (Actividad 5).
• Se seleccionarán 10 plantaciones de clones resistentes a la grafiosis establecidas en los últimos años en localidades que presenten condiciones ambientales contrastadas (5A).
• Se realizarán mediciones fisiológicas y biométricas relacionadas con las características hidráulicas de los clones antes del comienzo del periodo vegetativo y al final del mismo, y se obtendrán los parámetros ambientales de las distintas localidades (5B).
• Se evaluará la plasticidad fenotípica de las características hidráulicas de los clones de olmo a los distintos ambientes analizados (5C).
– La incorporación de endófitos beneficiosos a la producción de planta (Actividad 6).
• Se propagarán tres ejemplares por semilla y otro más por cultivoin vitro,la mitad de los cuales serán tratados con endófitos beneficiosos (6A).
• Las plantas propagadas se plantarán en dos parcelas experimentales (6B).
• Se realizará un seguimiento de la tasa de crecimiento y parámetros de intercambio gaseoso (6C).
• Se estimará la tolerancia a la sequía y la resistencia aOphiostoma novo-ulmide las plantas tratadas con endófitos y las no tratadas (6D).
– La propagación de ejemplares seleccionados a partir de cruces R × R (Actividad 7).
• Se propagarán unos 50 genotipos mediante cultivoin vitrocon 40 réplicas por genotipo (2000 plantas en total) (7A).
– El asesoramiento de los trabajos de propagación relacionados con los olmos que se realizan en la Red de Centros Nacionales de Recursos Genéticos Forestales.
– El asesoramiento de los trabajos necesarios para la conservación de las plantaciones existentes, tanto en terrenos gestionados directamente por la DGBBD, como en otros que tengan relación con las plantaciones establecidas con este convenio o con los suscritos anteriormente.
– La UPM adoptará las medidas de protección y seguridad necesarias durante la ejecución de su trabajo en cumplimiento con la legislación de riesgos laborales.
– La presentación, con carácter anual, a la DGBBD de un certificado de los asientos contables que realiza la UPM en relación con este convenio (especificando fechas, código del asiento, concepto, beneficiario, factura, DNI/NIF, partida e importes) agrupando según la tipología de los diferentes gastos (gestión, personal, material fungible, material inventariable y gastos por desplazamientos), para que la DGBBD pueda comprobar el uso correcto de los fondos públicos. Las anualidades se considerarán según lo establecido en la cláusula segunda del texto del convenio.
– La redacción de los informes técnicos necesarios para la comprobación de la correcta ejecución de las actividades previstas. Al menos se deberá presentar un informe completo con todas las actuaciones por cada año de ejecución. El informe del último año contendrá toda la información generada durante la ejecución, a modo de informe final de esta prórroga.
Por otro lado, corresponde a la DGBBD:
– Poner a disposición del Convenio los terrenos e instalaciones necesarias (relacionadas en el anejo II) para la correcta ejecución de los trabajos, fundamentalmente de la Red de Centros Nacionales de Recursos Genéticos Forestales, constituido por:
• Centro Nacional de Recursos Genéticos Forestales «Puerta de Hierro» (Madrid).
• Centro Nacional de Recursos Genéticos Forestales «El Serranillo» (Guadalajara).
• Centro Nacional de Recursos Genéticos Forestales «Valsaín» (Segovia).
• Centro Nacional de Recursos Genéticos Forestales «Alaquàs» (Valencia).
– El establecimiento y mantenimiento de las plantaciones instaladas en sus propios terrenos o en aquellos que gestione y la colaboración en aquellas tareas específicas que lo requieran, concretamente la realización de plantación, reposición de marras, escardas, podas, riegos, tratamientos fitosanitarios y técnicas de cultivo en vivero en general, así como el apoyo en la toma de datos de los ensayos.
– Promover los acuerdos con otros organismos, en caso de ser necesarios, para la consecución de los objetivos del convenio, concretamente para el apoyo de las Comunidades autónomas u otras administraciones en los trabajos de campo que se ejecutarán por todo el territorio español y en el suministro de datos ya existentes.
– La tramitación de las solicitudes para la autorización de nuevos materiales de base que se obtengan del programa.
– A efectos de verificar la justificación del uso correcto de los fondos públicos:
• La comprobación y conformidad de certificados de los asientos contables presentados por la UPM. En este sentido, se considerarán válidos aquellos certificados oficiales emitidos por la UPM que acrediten los gastos en personal, material fungible, material inventariable y gastos por desplazamientos.
• Comprobar la correcta ejecución de las actividades concluidas y su conformidad previa y preceptiva al informe favorable de la Comisión de Seguimiento. Para tal fin se revisarán los informes técnicos presentados por la UPM.
Al tratarse de una actuación cofinanciada al 75% por el FEADER, deberá darse cumplimiento a las normas establecidas en materia de información y publicidad, detalladas en el Anejo III del Reglamento de Ejecución (UE) 808/2014, de la Comisión.
En todas las actividades se deberá incorporar de modo visible el logotipo oficial del Ministerio para la Transición Ecológica y el Reto Demográfico y el logo del FEADER, tal como se muestra a continuación:
En caso de que las actuaciones fueran objeto de cofinanciación a través del PEPAC, las mismas deberían asumir las obligaciones de información y publicidad que les fueran de aplicación en cumplimiento de los requisitos reglamentarios que se establezcan.
Las actuaciones citadas en el presente documento tienen una duración prevista de 4 años (48 meses) desde la firma de la prórroga, según el cronograma que se presenta a continuación y resultará eficaz una vez que sea inscrita en el Registro Electrónico Estatal de Órganos e Instrumentos de Cooperación (REOICO). No obstante, la duración podría ser menor si los objetivos y actuaciones previstas se lograran finalizar antes del citado plano, aunque esto no es probable debido a la complejidad de las actuaciones y los largos plazos requeridos para algunas de ellas.
En concreto y según la metodología establecida, los ensayos de resistencia tienen una duración mínima de 4 años para poder obtener resultados concluyentes. Además, hay actividades con acciones dependientes de fases previas y no pueden iniciarse de manera simultánea. Por tanto, no se considera aconsejable establecer un plazo de duración menor que pudiera comprometer la consecución de los objetivos previstos.
La comisión de seguimiento podrá proponer las modificaciones necesarias para cumplir con los objetivos del presente convenio a propuesta de las partes. Las propuestas de modificación de las actividades previstas, así como su ejecución en el tiempo, serán debidamente justificadas y no supondrá un incremento de la aportación dineraria total de la DGBBD ni una desviación sustancial respecto de los objetivos generales del convenio.
Cronograma de trabajos previstos. La codificación se corresponde con la asignación del apartado anterior:
1. Personal funcionario y laboral:
1.1 Personal funcionario:
– Felipe Pérez Martín. Jefe de Servicio Técnico. Subdirección General de Silvicultura y Montes.
– David León Carbonero. Coordinador de Zona. Subdirección General de Silvicultura y Montes.
– Laura Prieto Estévez. Jefa de Sección de Producción de Material Genético. Subdirección General de Silvicultura y Montes.
– Juan Martínez Benítez Vega. Coordinador de Zona. Subdirección General de Silvicultura y Montes.
– Cástor Rodrigo García. Agente Medioambiental. Subdirección General de Silvicultura y Montes
1.2 Personal laboral:
– Sonia Méndez Santiago. Técnico superior de actividades técnicas y profesionales. Grupo 3.
– Enrique Sastre Callejo. Ayudante de actividades técnicas y profesionales. Grupo 5.
– Juan Rivera Diez Gutiérrez superior de actividades técnicas y profesionales. Grupo 3.
La estimación de la dedicación del personal del MITECO a lo largo de los 4 años sería la siguiente:
2. Instalaciones y terrenos utilizados para el Convenio en la Red de Centros Nacionales de Recursos Genéticos Forestales.
1. Personal funcionario y contratado permanente:
– María Núñez Vázquez. Profesora Contratado Doctor. Departamento Sistemas y Recursos Naturales-UPM. Coordinadora 1 del Proyecto. Responsable de los temas relacionados con la Detección precoz de la resistencia, la caracterización del patógeno de la grafiosis y la construcción de un genoma de referencia.
– Juan Romero Vidal Mora. Profesor Titular de Universidad. Departamento Sistemas y Recursos Naturales-UPM. Coordinador 2 del proyecto. Responsable de los temas relacionados con el estudio de los endófitos en la resistencia a la grafiosis, la interacción genotipo × cepa, y la propagación de genotipos resistentes.
– Jesús Rodríguez Cabrera Crespo Contratado Doctor I3. Departamento Sistemas y Recursos Naturales-UPM. Responsable del estudio de la adaptación hidráulica de los clones resistentes a distintos ambientes. Participará además en la evaluación de parámetros fisiológicos de los olmos en distintas actividades (1, 4, 6).
– Rosana López Vicente Alonso Titular de Universidad. Departamento Sistemas y Recursos Naturales-UPM. Participará en los estudios relacionados con la evaluación de parámetros fisiológicos y bioquímicos de los olmos en distintas actividades (1, 4, 5, 6).
La estimación de la dedicación del personal de la UPM a lo largo de los 4 años sería la siguiente:
2. Uso de laboratorios.
La utilización de los laboratorios necesarios para cumplir los objetivos previstos en el convenio, tanto el general como los relacionados con la producción de planta (todos las actividades excepto la 2, 3 y 5), el análisis molecular (actividades 2, 3, y 6), los estudios de fisiología (actividades 1, 4 y 6), o los de cultivo de hongos (actividades 1, 3, 4 y 6), serán los relacionados a continuación:
La dedicación de este material al Convenio se estima como media en 35 semanas al año.