[en] Saccharomyces cerevisiae is one of the most useful microorganism in all the world for its great power as a fermenter as it requires many demands on nutrients in the medium terms. To obtain optimisms results you have to keep track of all the parameters involved throughout their growth kinetics. This experimental work has a main objective to see what effects produce the application of different initial concentration of glucose, 150, 200 and 250 g/Lin the growth kinetics of yeast. A study has been done with three replicates of each initial concentration of glucose during 43,5h, starting with the preparation of precultive and the inoculation with 100 µL of this in 600 mL of medium MGP and incubation in the baker at a 27°C. Throughout 43,5h of the growth kinetics of the yeast analysis has been done every 1,5h to get the viable population trough two methods, plate count (ufc/mL) and Neubauer counting chamber (cells/mL), death cells, budding cells and number of scars by Neubauer chamber (cells/mL) , ethanol production (%, v/v) by gas chromatography, glucose consumption (g/L) by high performance liquid chromatography and the depletion of dissolved oxygen ( mg O&#8322;/mL). We have obtained very similar values for the majority of the variables with the different initial concentrations of glucose, 150, 200 and 250 g/L, although the concentration of 200 g/L it has seen as the parameters of viable cells, death cells and budding cells were higher. Dissolved oxygen decreased, however, was faster in the concentration of 150 g/L of glucose and was slower in the concentration of 250 g/L. The best relationship in glucose consumption and ethanol production was obtained in concentration of 150 g/L. But in none of three initial glucose concentrations studied was the expected. In order to achieve this we should extend the study. No significant differences were detected between latency times or durations of the lag phase, specific growth rates and final yeast populations for the three initial glucose concentrations tested.

[es] Saccharomyces cerevisiae es uno de los microorganismos que más usos tiene en el mundo por su gran poder como fermentador, ya que no necesita muchas exigencias en cuanto a nutrientes en el medio se refiere. Para obtener buenos resultados hay que llevar un control de todos los parámetros que participan a lo largo de su cinética de crecimiento. Este trabajo experimental tiene como objetivo principal ver qué efectos produce la aplicación de diferentes concentraciones iniciales de glucosa, 150, 200 i 250 g/L en la cinética de crecimiento de la levadura. Se ha hecho un estudio con tres repeticiones de cada una de las concentraciones durante 43,5h, partiendo de la preparación del precultivo i la inoculación de 100 µL de éste en 600 mL del medio MGP i la incubación a la estufa a una temperatura de 27°C. A lo largo de las 43,5h de cinética de crecimiento de la levadura se ha analizado cada 1,5h la población viable por dos métodos, recuento en placa ( ufc/mL) i recuento en cámara Neubauer (cél/mL), las células muertas, células en gemación y número de gemmas por cámara Neubauer (cél/mL), la producción de etanol (%, v/v) por cromatografía de gases , el consumo de glucosa (g/L) por cromatografía de alta resolución i el agotamiento del oxígeno disuelto (mg O&#8322;/ L). Se han obtenido valores bastante similares para la mayoría de variables estudiades entre las concentraciones iniciales 150, 200 i 250 g/L, aunque en la concentración de 200 g/L se ha visto como los parámetros de las células vivas, muertas i en gemación han sido superiores. La disminución del oxígeno disuelto, en cambio, ha sido más rápida en la concentración de 150 g/L i más lenta en la concentración de 250 g/L de glucosa. La mejor relación en cuanto a consumo de glucosa y etanol producido ha sido en la obtenida en el medio con 150 g/L, pero, en ninguna de las tres concentraciones de glucosa estudiadas se ha logrado obtener la concentración de etanol esperada. Para poder conseguirlo habría que alargar el estudio. No se han detectado diferencias significativas entre los tiempos de latencia o duraciones de la fase lag, les velocidades específicas de crecimiento y las poblaciones finales de levadura obtenidas correspondientes a las tres concentraciones iniciales de glucosa ensayadas.