[ca] Saccharomyces cerevisiae és un dels microorganismes que més s'utilitzen en el mon, degut al seu gran poder com a fermentador que no necessita gaires exigències en quant a nutrients al medi. Per obtenir bons resultats cal tenir un control de tots els paràmetres que participen durant la seva cinètica de creixement. Aquest treball experimental té com objectiu principal és veure quins efectes té l'aplicació de diferents concentracions inicials de glucosa , 150, 200 i 250 g/L en la cinètica de creixement del llevat. S 'ha fet un estudi de tres repeticions per a cada concentració durant 43,5h, partint de la preparació del precultiu i la inoculació de 100µL d'aquest en 600 mL de medi MGP i la incubació a l'estufa a 27°C. Al llarg de les 43,5h de cinètica de creixement del llevat s'ha analitzat cada 1,5 h la població viable per dos mètodes, recompte en placa (ufc/mL) i recompte en càmera Neubauer ( cèl/mL), les cèl·lules mortes, en gemmació i nombre de gemmes per càmera Neubauer (cèl/mL) , la producció d'etanol (%, v/v) per cromatografia de gasos, el consum de glucosa (g/L) per part del llevat a través de cromatografia líquida d'alta resolució i l'esgotament de l'oxigen dissolt mitjançant oxímetre (mg O&#8322;/L). S'han obtingut valors bastant similars per a la majoria de variables estudiades entre les tres concentracions inicials de glucosa, 150, 200 i 250 g/L, tot i que en la concentració de 200 g/L de glucosa s'ha vist com els paràmetres de cèl·lules vives, cèl·lules mortes i cèl·lules gemmant han estat superiors. La disminució de l'oxigen dissolt, en canvi, ha estat més ràpida en el medi amb 150 g/L de glucosa i més lenta amb 250 g/L glucosa. La millor relació en quant a glucosa consumida i etanol produït és l´obtinguda en el medi amb 150g/L de glucosa, però en cap de les tres concentracions de glucosa estudiades s'aconsegueix obtenir la concentració d'etanol teòrica esperada. Per aconseguir-ho caldria allargar l'estudi. No s'ha detectat diferències significatives entre les durades de la fase lag o de latència, les velocitats específiques de creixement i les poblacions finals de llevat obtingudes corresponents a les tres concentracions inicials de glucosa assajades.

[en] Saccharomyces cerevisiae is one of the most useful microorganism in all the world for its great power as a fermenter as it requires many demands on nutrients in the medium terms. To obtain optimisms results you have to keep track of all the parameters involved throughout their growth kinetics. This experimental work has a main objective to see what effects produce the application of different initial concentration of glucose, 150, 200 and 250 g/Lin the growth kinetics of yeast. A study has been done with three replicates of each initial concentration of glucose during 43,5h, starting with the preparation of precultive and the inoculation with 100 µL of this in 600 mL of medium MGP and incubation in the baker at a 27°C. Throughout 43,5h of the growth kinetics of the yeast analysis has been done every 1,5h to get the viable population trough two methods, plate count (ufc/mL) and Neubauer counting chamber (cells/mL), death cells, budding cells and number of scars by Neubauer chamber (cells/mL) , ethanol production (%, v/v) by gas chromatography, glucose consumption (g/L) by high performance liquid chromatography and the depletion of dissolved oxygen ( mg O&#8322;/mL). We have obtained very similar values for the majority of the variables with the different initial concentrations of glucose, 150, 200 and 250 g/L, although the concentration of 200 g/L it has seen as the parameters of viable cells, death cells and budding cells were higher. Dissolved oxygen decreased, however, was faster in the concentration of 150 g/L of glucose and was slower in the concentration of 250 g/L. The best relationship in glucose consumption and ethanol production was obtained in concentration of 150 g/L. But in none of three initial glucose concentrations studied was the expected. In order to achieve this we should extend the study. No significant differences were detected between latency times or durations of the lag phase, specific growth rates and final yeast populations for the three initial glucose concentrations tested.