[en] The production of proteins in plant cell cultures and whole plants represents great opportunities to develop products for commercial use. The main objective of this industrial thesis was to develop economic and efficient plant production systems to bring proteins of interest to the market. We explored two different systems, Daucus carota cell cultures and Nicotiana benthamiana leaves, each having advantages and drawbacks depending on the intended use of the products. As a proof of concept, both systems were applied in the production of the human insulin-like growth factor 1 (IGF1), a high value peptide for the cosmetic and therapeutic industries. Innovative strategies to enhance gene expression and to facilitate product purification were used to improve yields and to reduce costs. Moreover, the biological activity of the produced IGF1 and derivatives was evaluated and compared to the chemically synthesized peptides to demonstrate the usefulness of production systems. Our first approach to enhance gene expression and improve peptide yields was with RNA silencing suppressors (RSSs). Using transient expression assays and the green fluorescent protein (GFP) as reporter, we selected the P1b from the Cucumber vein yellowing virus (CVYV) Ipomovirus as the RSSs to enhance gene expression in carrot cell cultures. Our results demonstrated that transgenic lines overexpressing IGF1 or the derivative CPP-IGF1 (a variant tailored to enhance the delivery to human cells) reached up to 4-fold higher peptide yields in combination with P1b than without. The IGF1 or CPP-IGF1 was targeted to the culture media being easily purified by simple clarification of suspensions. Moreover, we found that the media containing the produced IGF1 or CPP-IGF1 stimulated the division of human fibroblasts. A cryopreservation process was applied to the transgenic lines to avoid the reduction in peptide production found over successive propagation cycles. This allowed us to recover the original yields, opening up the possibility of establishing master cell banks. We also developed a transient production system of IGF1 and CPP-IGF1 using N. benthamiana leaves and a derived tobacco mosaic virus vector. This system resulted in similar yields of active peptides to cell cultures with the main advantage of shortening production times, although requiring more complex downstream purification. Our innovative strategy to facilitate the purification of IGF1 from plant matrices was the use of oleosin fusion technology for lipid droplet (LDs) targeting. This technology has been previously used in LD-rich seeds, but unexplored in plant cell cultures or LD-poor tissues such as leaves. Our work showed that model cell cultures from Nicotiana tabacum or Arabidopsis thaliana were an exception, as many other plant cell cultures, including D. carota cells, do contain a large number of LDs and are susceptible to produce oleosin fusion proteins. However, as the stable expression of oleosin fusions severely affected callus cell growth, we tested the technology in transient expression in leaves. Due to the low level of LDs in leaves, oleosin fusion proteins production was in combination with triacylglycerol (TAG) induction to increase LD content simultaneously. For this purpose, key components of the TAG biosynthetic pathway, A. thaliana derived elements such as the enzyme DGAT1 and the regulatory factor WRI1 were co-expressed with the IGF1 oleosin fusion proteins in N. benthamiana leaves. Using this strategy, we obtained yields up to 1 μg/g of IGF1 bound to LDs, easily purified and fully active. Our work provides evidence of the potential of plant matrices to produce valuable peptides. Also, the oleosin technology, the use of RSSs and viral vectors explored will serve to overcome some of the known limitations of plant systems to produce active products of industrial interest.

[es] La producción de proteínas recombinantes en plantas representa una oportunidad para su obtención y uso comercial. El objetivo principal de esta tesis industrial ha sido el desarrollo de sistemas vegetales de producción de proteínas, eficientes y competitivos a nivel económico, con posibilidades de llevarlas al mercado. Para ello hemos explorado dos sistemas: los cultivos celulares de Daucus carota y las hojas de Nicotiana benthamiana, cada uno con sus ventajas y limitaciones. Como prueba de concepto, ambos sistemas fueron utilizados para la producción de "'insulin-like growth factor 1" (IGF1), un péptido de alto valor añadido para las industrias cosmética y farmacéutica. Se ensayaron varias estrategias innovadoras para mejorar los rendimientos de producción aumentando la expresión génica y para reducir costes de purificación del producto. Además, la actividad biológica de IGF1 y sus derivados producidos en plantas se evaluó en comparación con péptidos sintéticos. Como primera estrategia se ensayaron supresores del silenciamiento de ARN de origen viral para incrementar la expresión génica. En ensayos de expresión transitoria con la proteína verde fluorescente como marcadora, seleccionamos la proteína P1b del ipomovirus Cucumber vein yellowing virus (CVYV). Nuestros resultados con líneas celulares de zanahoria sobreexpresoras de IGF1 o su péptido derivado CPP-IGF1 (variante diseñada para mejorar su penetración en células humanas) mostraron que en combinación con P1b alcanzaban rendimientos de producción 4 veces mayores que las líneas sin el supresor del silencing. Además, los péptidos fueron dirigidos al medio de cultivo para facilitar su aislamiento por simple clarificación. En ensayos de actividad, las fracciones obtenidas confirmaron ser capaces de incrementar la división de fibroblastos humanos. En relación a la estabilidad de la producción, se observó una reducción cercana al 33% después de veintiún ciclos de propagación sucesivos, por lo que se implementó la criopreservación de las líneas transgénicas para mantener los rendimientos de producción originales, y así establecer bancos de líneas celulares para usos futuros. También se desarrolló un sistema de producción transitoria de IGF1 y CPP-IGF1 en hojas de N. benthamiana utilizando un vector derivado del virus del mosaico del tabaco, Tobacco mosaic virus (TMV). Este sistema permitió reducir el tiempo de obtención del péptido activo, aunque en comparación con la producción en líneas celulares la obtención del producto no fue tan sencilla. Con el fin de facilitar la purificación de IGF1 desde matrices vegetales, aplicamos una estrategia innovadora basada en fusiones a oleosina para dirigir la producción a cuerpos lipídicos. Esta tecnología ya había sido utilizada en semillas, pero no en cultivos celulares, y escasamente en hojas. Nuestras observaciones mostraron la presencia de abundantes cuerpos lipídicos en numerosos cultivos celulares, incluyendo los de D. carota, con la excepción de las dos especies modelo analizadas, Nicotiana tabacum y Arabidopsis thaliana. Desafortunadamente, la expresión estable de fusiones a oleosina pareció afectar gravemente el crecimiento de los callos celulares, por lo que se exploró la alternativa de su aplicación a la producción en hojas. Para aumentar la cantidad de cuerpos lipídicos, la producción de las fusiones a oleosina se realizó simultáneamente con inductores de la acumulación de triacilgliceroles, usando elementos clave de su ruta biosintética en A. thaliana: la enzima DGAT1 y el factor de transcripción WRI1. Cuando ambos inductores fueron co-expresados en combinación con fusiones de oleosina e IGF1 en plantas de N. benthamiana, se obtuvo hasta 1 μg/g de IGF1 unida a los cuerpos lipídicos, fácilmente aislable y activo. Nuestro trabajo proporciona evidencias de que la utilización de supresores del silenciamiento de ARN, los vectores virales y la tecnología de oleosinas contribuyen al potencial de las matrices vegetales para la producción de proteínas de interés.